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茶芎古称抚芎,为伞形科植物茶芎 Ligusticum. si‐                 2 方法
          nense Oliv. cv. Chaxiong 的干燥根茎,具有活血行气、祛             2.1 不同方式加工样品制备

                      [1]
          风止痛的功效 。茶芎传统加工要求的浸润操作可能存                                选取长势相近的健康茶芎植株,除去地上部分作为
          在局限性,且加工过程中水洗、干燥次数、干燥方式等工                           待处理样品。将待处理样品分为“趁鲜切制”和“传统加
          艺也无定则,不能稳定地控制成品质量。趁鲜切制是指                            工”2类,去泥后,以水洗、浸润、干燥次数、干燥方式等处
          中药材不经浸润等二次处理,采收完直接在产地切制并                            理差异细分为13组样品(C1~C13),每组6个重复。切
                    [2]
          干燥成饮片 。趁鲜切制不改变药材性质,却能减少加                            片时茶芎厚片的厚度均为3~4 mm,均晾至表面无水汽
                                                             (约 3 h) 后再干燥。加工后饮片打粉过 4 号筛,备用。
                                                                     [8]
          工工序和成本,提高饮片生产效率,该切制方式已被证
                                                              茶芎样品的加工方式详见表1。
          实在细辛、人参等根及根茎类药材中有一定适用性                      [3―4] 。
                                                                          表1 茶芎样品的加工方式
          由此可见,研究茶芎产地趁鲜切制工艺并与传统加工模
                                                              编号     具体处理程序                            加工方式
          式进行对比,证实其生产适用性,对茶芎的质量控制具                            C1     抢水洗干净,切厚片,晾至表面无水汽,晒干              趁鲜切制
          有重要意义。                                              C2     抢水洗干净,切厚片,晾至表面无水汽,40 °C烘干         趁鲜切制
                                                              C3     抢水洗干净,切厚片,晾至表面无水汽,50 °C烘干         趁鲜切制
              非靶向代谢组学通过在特定条件下定量筛选代谢                           C4     抢水洗干净,切厚片,晾至表面无水汽,60 °C烘干         趁鲜切制
                                                              C5     不清洗,切厚片,晾至表面无水汽,晒干                趁鲜切制
          物的种类与含量,能够大范围地捕捉、鉴定样品中的小
                                                              C6     不清洗,切厚片,晾至表面无水汽,40 ℃烘干            趁鲜切制
          分子物质,已被广泛运用于中药材品质评价等领域                      [5—6] 。  C7    不清洗,切厚片,晾至表面无水汽,50 ℃烘干            趁鲜切制
                                                              C8     不清洗,切厚片,晾至表面无水汽,60 ℃烘干            趁鲜切制
          2008年版《江西省中药饮片炮制规范》只将总灰分、酸不
                                                              C9     不清洗,切厚片,晾至表面无水汽,常温[(25±5) ℃]真空干燥  趁鲜切制
          溶性灰分、阿魏酸含量等作为茶芎质控指标,不能较好                            C10    不清洗,晒至半干,切厚片,晾至表面无水汽,再晒干          趁鲜切制
                                                              C11    不清洗,晒至半干,浸润90 min后,切厚片,晾至表面无水汽,再晒干  传统加工
                            [7]
          地反映茶芎饮片质量 。而非靶向代谢组学则可以更加
                                                              C12    不清洗,炕至半干,浸润90 min后,切厚片,晾至表面无水汽,再炕干  传统加工
          全面、动态地反映茶芎在初加工过程中的生理变化。基                            C13    不清洗,切厚片,晾至表面无水汽,冷冻(-30 ℃)干燥       趁鲜切制
          于此,本研究拟通过超高效液相色谱-四极杆-静电场轨                           2.2 供试品溶液及质控样品溶液的制备

          道阱质谱联用(UHPLC-QE-MS)技术,对采用传统及趁                           精密称取样品 0.050 g,投入 5 mm 钨珠,加 200 μL
          鲜切制工艺制备的茶芎片进行代谢组学分析,通过解析                            预冷的甲醇-水(4∶1,V/V)溶液并混匀,在研磨机中(频
          其代谢差异物筛选出最佳的工艺流程,为江西特色药材                            率 65 Hz)研磨 1 min;再加 800 μL 预冷的甲醇-水(4∶1,
          茶芎的科学加工提供理论依据。                                      V/V)溶液并混匀,冰浴中超声(频率 40 kHz,功率 480
          1 材料                                                W)1 h,-20 ℃静置1 h,然后在4 ℃下以14 000×g离心
          1.1 主要仪器                                            20 min,回收上清液并浓缩至干燥。质谱测定时加入
                                                              200 μL 预冷的甲醇-水(1∶1,V/V)溶液复溶,4 ℃下以
              本研究所用主要仪器包括:Q-ExactivePlus 型质谱
                                                              20 000×g 离心 15 min,取上清液得质量浓度为 250
          仪、SuperModulyo 型冷冻干燥机(美国 Thermo Fisher
                                                              mg/mL 的供试品溶液。每份供试品溶液移取 50 μL 并
          Scientific 公司),NexeraX2LC-30AD 型超高压液相色谱
                                                              混匀,作为质控(quality control,QC)样品溶液。
          仪(日本 Shimadzu公司),GZX-9076MBE 型电热鼓风干
                                                              2.3 色谱条件
          燥机(上海博迅实业有限公司),LT-DHC160型高速冷冻
                                                                                     ®
                                                                  采用 ACQUITY UPLC HSS T3(2.1 mm×100 mm,
          离心机[立德泰勀(上海)科学仪器有限公司],350-8519
                                                              1.8 μm)色谱柱,以 0.1% 甲酸水溶液(A)-乙腈(B)为
          型万分之一分析天平(长沙湘平科技发展有限公司),
                                                              流动相进行梯度洗脱(0~2 min,100%A;2~6 min,
          KQ-200KDB 型高功率数控超声清洗器(昆山市超声仪
                                                              100%A→52%A;6~10 min,52%A;10~12 min,100%B;
          器有限公司)。                                             12~12.1 min,100%B→100%A;12.1~15 min,100%A);
          1.2 主要药品与试剂                                         柱温为40 ℃;流速为0.3 mL/min;进样量为2 μL。
              新鲜茶芎植株于2023年7月6日采自江西省武宁县鲁                       2.4 质谱条件
          溪镇北屏村(东经115°11′35.246″,北纬29°28′43.957″),                采用加热电喷雾电离(heated electrospray ioniza‐

          本研究所用样品经江西中医药大学中药资源与民族药                             tion,HESI)离子源,在正、负离子模式下检测,喷雾电压
          研究中心慕泽泾副研究员鉴定为真品。乙腈、甲醇、甲                            为正离子 3.8 kV、负离子 3.2 kV;毛细管温度为 320 ℃;
          酸均为质谱纯,水为超纯水。                                       鞘气流速为30 arb,辅助气流速为5 arb;探针加热器温度


          · 1318 ·    China Pharmacy  2025 Vol. 36  No. 11                            中国药房  2025年第36卷第11期
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