Page 31 - 《中国药房》2025年5期
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相应药物/生理盐水,每日 1 次,连续 7 d。在整个过程 30 min,加入二抗(1∶5 000)室温孵育 1.5 h;以 TBST 洗
中,使用激光散斑系统对大鼠梗死侧的脑灌注情况进行 膜后,使用 ECL 试剂盒显影,再使用 Image Lab 3.0 软件
监测,若造模大鼠出现明显缺血现象且肢体状态稳定, 分析各条带灰度值,以目的蛋白与内参蛋白 Vinculin 的
则表明造模成功。 灰度值比值表示目的蛋白的表达水平,然后以 Sham 组
2.3 大鼠体重和运动功能评价 为标准进行归一化处理。
术后第7天,测定大鼠体重,并采用Longa评分法评 2.8 统计学分析
估大鼠的神经功能损伤:0分,无神经功能缺损;1分,不 使用SPSS 21.0软件对数据进行统计分析。符合正
能完全伸展对侧前肢;2分,行走时向对侧转圈;3分,行 态分布的数据以x±s表示,多组间比较采用单因素方差
[8]
走时向对侧倾倒;4 分,无法自主行走,意识丧失 。随 分析,组间两两比较采用 LSD-t 或 Tamhane’s T2 检验。
后,使用小动物跑步机(刺激电流强度为 1.50 mA、跑道 检验水准α=0.05。
速度为 10 m/min)评估 5 min 内大鼠运动距离。待大鼠 3 结果
休息30 min后,采用握力仪检测其四肢握力(测试时,操 3.1 菊花水提物对大鼠体重及运动功能的影响
作者以恒定速度将大鼠向后拉,使其抓紧握力仪的拉 与 Sham 组比较,模型组大鼠体重、握力、运动距离
环,确保动物体位与仪器平行)。各组取5只大鼠参加检 均显著减小/缩短(P<0.01),Longa 评分显著升高(P<
测,每只大鼠检测3次,取平均值。 0.01)。与模型组比较,ATP组和菊花水提物各剂量组大鼠
2.4 大鼠骨骼肌电生理检测 体重、握力、运动距离均显著增大/增长(P<0.05 或 P<
术后第 1、3、5、7 天,将大鼠水平固定,使其后肢悬 0.01),Longa评分显著降低(P<0.01)。结果见表1。
空,使用针状电极刺入患侧后肢骨骼肌组织内,施加刺 表1 各组大鼠体重及运动功能比较(x±s,n=5)
激电流,获得响应电信号振幅,测量波峰-波谷差值(即 组别 体重/g Longa评分/分 握力/g 运动距离/m
峰间值),以评估骨骼肌组织对电刺激的反应。各组取3 Sham组 251.00±7.40 0 1 426.67±162.39 49.30±0.00
模型组 144.60±10.53 a 4.00±0.00 a 638.60±115.03 a 14.44±2.46 a
只大鼠参加检测,每只大鼠检测3次,取平均值。 ATP组 199.20±29.29 b 1.40±0.55 b 886.40±167.98 c 46.06±5.11 c
2.5 大鼠比目鱼肌病理形态学观察 菊花水提物高剂量组 190.80±24.01 b 1.50±0.58 b 1 014.80±187.73 b 45.64±2.84 b
末次行为学检测后,麻醉大鼠,剥离其皮肤和肌肉 菊花水提物低剂量组 205.00±23.34 b 1.50±0.58 b 1 091.60±181.15 b 41.20±3.60 b
组织,暴露并分离比目鱼肌。取各组大鼠比目鱼肌适 a:与Sham组比较,P<0.01;b:与模型组比较,P<0.01;c:与模型
组比较,P<0.05。
量,固定于4%多聚甲醛溶液中72 h,脱水后包埋在石蜡
3.2 菊花水提物对大鼠骨骼肌电生理的影响
中,切成 3 μm 薄片,脱蜡后按 HE 试剂盒说明书染色。
与Sham组比较,模型组大鼠第1、3、5、7天的骨骼肌
封片后,于显微镜下观察并拍照,采用病理切片扫描仪
电生理峰间值均显著降低(P<0.05 或 P<0.01)。与模
分析骨骼肌细胞横截面积。
型组比较,ATP 组(第 1 天除外)和菊花水提物各剂量组
2.6 大鼠血清和比目鱼肌中TNF-α水平的检测
大鼠第 1、3、5、7 天的骨骼肌电生理峰间值均显著升高
对大鼠剥离比目鱼肌后,再对其腹主动脉取血,待
(P<0.01)。结果见表2。
全血室温静置 30 min 后,以 3 500 r/min 离心 15 min,收
表2 各组大鼠骨骼肌电生理峰间值比较(x±s,n=3,
集血清,置于-80 ℃保存备用。取大鼠比目鱼肌 50
mV)
mg,加入200 μL组织匀浆缓冲液,匀浆后以2 500 r/min
组别 第1天 第3天 第5天 第7天
离心20 min,收集上清液。按照试剂盒说明书方法测定 Sham组 11.84±0.91 11.72±0.51 11.14±0.61 12.00±1.40
大鼠血清和比目鱼肌中 TNF-α 水平。各组分别取 4 只 模型组 6.29±1.03 a 4.96±1.34 a 5.90±0.57 b 5.61±1.32 a
大鼠的血清和比目鱼肌进行检测。 ATP组 6.00±1.58 7.89±0.69 c 9.39±0.21 c 10.32±1.70 c
菊花水提物高剂量组 7.39±0.86 c 8.83±0.65 c 8.12±0.23 c 10.85±1.33 c
2.7 大鼠比目鱼肌中 TNF-α/JNK/MAPK 信号通路相 菊花水提物低剂量组 9.22±0.15 c 8.47±0.64 c 9.75±1.50 c 11.21±1.23 c
关蛋白表达水平的检测 a:与Sham组比较,P<0.01;b:与Sham组比较,P<0.05;c:与模型
各组分别取 4 只大鼠的比目鱼肌 50 mg,加入 RIPA 组比较,P<0.01。
裂解液提取蛋白,采用 BCA 试剂盒测定蛋白浓度。蛋 3.3 菊花水提物对大鼠比目鱼肌病理形态学的影响
白样品经 10% 十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳 与 Sham 组[骨骼肌细胞横截面积为(2 361.71±
后,转至PVDF膜,加入5%牛血清白蛋白,室温封闭2 h; 158.35)μm ]比较,模型组大鼠比目鱼肌的骨骼肌细胞明
2
2
加入TNF-α(稀释度为1∶1 000)、JNK(稀释度为1∶2 000)、 显萎缩,横截面积[(1 397.40±66.36)μm ]显著减小(P<
p-JNK(稀释度为 1∶2 000)、MAPK(稀释度为 1∶1 000)、 0.01)。与模型组比较,ATP 组和菊花水提物高、低剂量
p-MAPK(稀释度为 1∶1 000)、MuRF-1(稀释度为 1∶ 组大鼠比目鱼肌的骨骼肌细胞明显增大,横截面积[分
5 000)、Atrogin-1(稀释度为 1∶2 000)、Vinculin(稀释度 别为(1 769.83±120.24)、(1 933.24±140.01)、(2 017.26±
2
为1∶3 000)一抗,4 ℃孵育过夜;以TBST洗膜5次,每次 164.95)μm ]显著增大(P<0.01)。结果见图1。
中国药房 2025年第36卷第5期 China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 5 · 537 ·