Page 41 - 《中国药房》2024年21期
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标记的羊抗兔IgG二抗(批号分别为JD59900、JD59014、 2.2 血清性激素指标测定
JD67265、JD58001、JD40288、JD58930、JD72933、JD54920、 末次给药结束 24 h 后,各组大鼠吸入乙醚麻醉,采
JD59880)均购自天津俊达生物科技有限公司。 集其尾静脉血,于4 ℃下以4 400 r/min离心14 min,取上
1.3 实验动物 层血清,按相应 ELISA 试剂盒说明书方法操作,以酶标
SPF级10周龄雌性SD大鼠,体重249~267 g,购自 仪检测大鼠血清中E2、AMH、FSH水平。
贵州医科大学实验动物中心,动物生产许可证号为 2.3 卵巢组织样本采集及制备
SCXK(贵)2023-0002。所有大鼠均分笼饲养在维持屏 取血后,各组大鼠断头处死,开腹取出卵巢,其中左
障环境的动物房中,温度为(24±2) ℃,相对湿度为 侧卵巢组织存于-70 ℃备用;右侧卵巢组织置于4%多
(55±5)%,每 12 h 明暗交替。本研究经贵阳市妇幼保 聚甲醛溶液中固定,以不同浓度乙醇梯度脱水后浸入热
健院科研伦理委员会批准,批准号为(2020-49)号。 石蜡中包埋,将冷却后的石蜡组织块固定在切片机中连
2 方法 续切片,得到约5 µm厚的组织薄片,备用。
2.4 卵巢组织病理改变和卵巢颗粒细胞凋亡情况观察
2.1 造模、分组与给药
取“2.3”项下各组大鼠卵巢组织切片,浸入二甲苯中
[8]
取64只大鼠用于构建POF大鼠模型 :第1天,大鼠
脱蜡,以不同浓度乙醇梯度脱水后,根据相应试剂盒说
腹腔注射环磷酰胺60 mg/kg(用生理盐水配制成质量浓
明书方法分别进行HE、TUNEL染色,使用显微镜观察。
度为 6 mg/mL 的药液,以 10 mL/kg 体积注射);随后,大
其中,HE 染色用于观察卵巢组织病理改变,并使用
鼠腹腔注射环磷酰胺10 mg/kg(用生理盐水配制成质量
Image J软件计数闭锁卵泡数量(闭锁卵泡指有异常结构
浓度为 1 mg/mL 的药液,以 10 mL/kg 体积注射),每天 1
的卵泡,如卵泡液浓缩、卵泡变性、颗粒层增厚或腔内充
次,连续 14 d。造模期间,每天固定时间刮取大鼠阴道
满组织纤维物质)。TUNEL 染色用于观察卵巢颗粒细
分泌物制备阴道涂片,以观察大鼠动情周期。大鼠动情
胞的凋亡情况(凋亡细胞呈黄色或棕黄色,正常细胞呈
周期分为:动情前期(持续17~21 h,涂片上全是有核上
蓝色),并使用 Image J 软件计算卵巢颗粒细胞凋亡率。
皮细胞,可能伴随少量角化细胞)、动情期(持续9~15 h,
卵巢颗粒细胞凋亡率(%)=凋亡卵巢颗粒细胞数/卵巢
涂片上全是无核角化细胞或有少量上皮细胞)、动情后
颗粒细胞总数×100%。
期(持续 10~14 h,涂片上有核上皮细胞、角化细胞、白
2.5 卵巢组织中氧化应激指标水平检测
细胞均可见)、动情间期(持续 60~70 h,涂片上可见大
取“2.3”项下冻存的各组大鼠卵巢组织适量,解冻
量白细胞及少量上皮细胞和黏膜)。若大鼠动情周期紊
后研碎匀浆,取部分匀浆于 4 ℃下以 5 600 r/min 离心
[8]
乱或延长或长时间停留在某一时期则表示造模成功 。
15 min,取上清液,按相应 ELISA 试剂盒说明书方法操
取造模成功的POF大鼠60只,随机分为模型组、胎盘多
作,以酶标仪检测MDA、SOD、CAT、ROS水平。
肽低剂量组、胎盘多肽高剂量组、胎盘多肽+空载质粒
2.6 卵巢组织中凋亡和RUNX3/Notch信号通路相关蛋
组、胎盘多肽+RUNX3沉默组,每组12只。另取12只健
白表达检测
康大鼠作为对照组。
采用Western blot法检测。取“2.5”项下各组剩余的
胎盘多肽低、高剂量组大鼠分别尾静脉注射胎盘多 卵巢组织匀浆,与RIPA裂解液混合,以BCA法测出其总
肽注射液 1、2 mg/kg(用生理盐水配制成质量浓度分别 蛋白浓度后煮沸变性处理。取变性蛋白适量,进行十二
为 0.1、0.2 mg/mL 的胎盘多肽药液,以 10 mL/kg 体积注 烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离并转移至聚偏二
[9]
射,每天1次) ;胎盘多肽+空载质粒组大鼠尾静脉注射 氟乙烯膜上,以 3% 牛血清白蛋白溶液在 25 ℃下封闭
胎盘多肽注射液 2 mg/kg(用生理盐水配制成质量浓度 2 h;洗 膜 后 ,加 入 cleaved-caspase-3、caspase-3、Bcl-2、
为 0.2 mg/mL 的胎盘多肽药液,以 10 mL/kg 体积注射, Bax、β-actin、RUNX3、Notch1、GAPDH一抗(稀释比例均
每天1次)和空载质粒1 μg(剂量根据其说明书设置,每 为 1∶750),4 ℃下孵育 12 h;洗膜后,加入相应二抗(稀
2 d 注射 1 次);胎盘多肽+RUNX3 沉默组大鼠尾静脉注 释比例为 1∶3 400),25 ℃下孵育 2 h;洗膜后,经化学
射胎盘多肽注射液 2 mg/kg(用生理盐水配制成质量浓 发光法显色后,于凝胶成像系统下成像,采用 Image J
度为 0.2 mg/mL 的胎盘多肽药液,以 10 mL/kg 体积注 软件定量分析各蛋白的条带灰度值,以cleaved-caspase-3、
射,每天 1 次)和 RUNX3 siRNA 质粒 1 μg(剂量根据其 caspase-3、Bcl-2、Bax 与内参 β-actin,RUNX3、Notch1 与
说明书设置,每2 d注射1次);对照组、模型组大鼠尾静 内参 GAPDH 的条带灰度值比值表示上述蛋白的表达
脉注射生理盐水10 mL/kg。所有大鼠连续给药4周。 水平。
中国药房 2024年第35卷第21期 China Pharmacy 2024 Vol. 35 No. 21 · 2611 ·