Page 27 - 《中国药房》2024年12期
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min,吸弃染料,用PBS洗涤3次。将玻底小皿水平置于                        束整体的入胞速度和入胞量均明显快/多于 PEG-PCL-
          激光共聚焦显微镜载物台上,采集选定细胞的明场图                            C6胶束。两种胶束入胞0、30 s以及3 min时的激光共聚
          像;设定488 nm绿色激发通道和555 nm橙色激发通道,                     焦实时显微镜图见图3。
          于小皿中加入200 μL的PEG-PCL-C6胶束或7pep-PEG-                  15                      20
          PCL-C6 胶束(用完全培养基稀释,C6 质量浓度为 150                      10                      15
          ng/mL,下同),利用 X-Y-t 程序每隔 3 s 对视野选定区域                 分布比例/%  5               分布比例/%  10 5
          进行图像采集,持续3 min。                                      0                       0
                                                                  1            10          100       1 000     10 000  1            10          100        1 000
          2.3.2 胶束在HeLa细胞内的分布考察                                           粒径/nm                  粒径/nm
                                                                      A. PEG-PCL-C6胶束       B. 7pep-PEG-PCL-C6胶束
                                      5
              将HeLa细胞以每孔1.0×10 个的密度接种到24孔
                                                                       图1 两种胶束的粒径检测结果
          板中,当细胞密度达 80% 左右时,加入 1 mL 的 PEG-
          PCL-C6 胶束或 7pep-PEG-PCL-C6 胶束作为实验组,同
          时设置空白对照组(加入 1 mL 完全培养基),分别于细
          胞培养箱中孵育 3、5、10、15、30、60 min。孵育结束后,
          迅速吸弃上清液,并用冰PBS洗涤细胞3次,加入4%组
          织细胞固定液 500 μL 固定细胞,加入含 0.2% 曲拉通 X-
                                                                   A. PEG-PCL-C6胶束       B. 7pep-PEG-PCL-C6胶束
          100 的磷酸缓冲盐溶液(TPBS)透化细胞 5 min,再加入                           图2 两种胶束的外观形态显微镜图
          含 3%BSA 的 TPBS 溶液,于 37 ℃孵育 1 h。然后,实验
          组分别加入用含 1% BSA 的 TPBS 溶液稀释的 Rab5、
          Rab11B、Rab7 抗体(稀释比例分别为 1∶100、1∶200、                 PEG-PCL-C6胶束

          1∶200),空白对照组加入含 1%BSA 的 TPBS 溶液,于
          4 ℃下孵育过夜;次日取出细胞,吸弃上清液,用PBS洗
          涤细胞3次,加入二抗(稀释比例为1∶200),于37 ℃下孵
          育 1 h,吸弃上清液,再用 PBS 洗涤细胞 3 次。通过激光
          共聚焦显微镜观察Rab5、Rab11B、Rab7在细胞内的荧光                     7pep-PEG-PCL-C6胶束
          染色情况,通过共聚焦分析软件计算皮尔森相关系数、
          信号重叠比率以及共定位比率来评价胶束与 EE、内吞
          循环室(endocytic recycling compartments,ERC)以及 LE              0 s            30 s           3 min
                                                                图3 两种胶束入胞的激光共聚焦实时显微镜图
          的共定位情况。按照时间先后,每个内吞体设定3个观
          测时间。                                               3.3 胶束在HeLa细胞内的分布情况
          2.4 统计学方法                                          3.3.1 胶束与EE的共定位情况
              采用 GraphPad Prism 9.0 软件进行统计分析。每个                  7pep-PEG-PCL-C6 胶束在入胞 5、10 min 时与 EE 的
          样品至少采集3个不同视野单细胞的数据,结果以平均                           皮尔森相关系数、信号重叠比率和共定位比率(入胞 10
          值或 x±s 表示,采用双尾 t 检验分析比较同一时间两组                      min 时除外)均显著高于 PEG-PCL-C6 胶束(P<0.05 或
          胶束的差异,采用单因素方差分析比较同组胶束不同时                           P<0.01),表明与 PEG-PCL-C6 胶束比较 ,7pep-PEG-
          间的差异。检验水准α=0.05。                                   PCL-C6胶束能够更快地进入EE。结果见图4和图5。
          3 结果                                               3.3.2 胶束与ERC的共定位情况
          3.1 胶束的粒径、PDI及外观形态                                     PEG-PCL-C6 胶束在入胞 5 min 时与 ERC 的共定位
              PEG-PCL-C6胶束和7pep-PEG-PCL-C6胶束的平均              比率最高,而7pep-PEG-PCL-C6胶束在入胞10 min时与
          粒径分别为(75.0±2.3)、(82.0±1.5)nm,PDI 分别为               ERC 的共定位比率最高,且入胞 10 min 时 7pep-PEG-
          0.17±0.20、0.17±0.32,外观均为规整的圆球形。结果                  PCL-C6胶束与ERC的皮尔森相关系数、信号重叠比率、
          见图1和图2。                                            共定位比率均显著高于其入胞 5 min 时(P<0.01)。在
          3.2 细胞对胶束的实时摄取情况                                   考察时间范围内,入胞5 min时,7pep-PEG-PCL-C6胶束
              PEG-PCL-C6胶束和7pep-PEG-PCL-C6胶束在考察              的皮尔森相关系数、信号重叠比率、共定位比率均显著
          时间段内均有明显的入胞行为。7pep-PEG-PCL-C6 胶                    低于PEG-PCL-C6胶束(P<0.01)。结果见图6和图7。


          中国药房  2024年第35卷第12期                                              China Pharmacy  2024 Vol. 35  No. 12    · 1433 ·
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