Page 59 - 《中国药房》2023年24期
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min后吸弃上清液,将细胞分为阳性对照组、阴性对照组 下培养过夜,使其贴壁生长。次日,吸弃培养基,加入
和不同浓度 IVQKIKHCF 组,每组设 3 个复孔。阳性对 pH7.4 且含 5 ng/mL Fluo-3 AM 的钙成像缓冲溶液(cal‐
照组加入 3 μmol/L 的 SP 溶液 100 μL;阴性对照组加入 cium imaging buffer,CIB),于37 ℃下孵育30 min。吸弃
台式缓冲液 100 μL;不同浓度 IVQKIKHCF 组加入 25、 上清液,细胞以 CIB 清洗 2 次后,将 MRGPRX2/HEK293
50、100 μmol/L的IVQKIKHCF溶液各100 μL。于37 ℃ 细 胞 分 为 阳 性 对 照 组 、空 白 对 照 组 、不 同 浓 度
下培养30 min后,以1 500 r/min离心5 min,取上清液50 IVQKIKHCF组,将HEK293细胞作为阴性对照组,每组
μL,加入氘代组胺(内标)溶液100 μL,振荡10 s;于4 ℃ 设置 3 个复孔。阳性对照组加入 3 μmol/L 的 SP 溶液
下以 12 000 r/min 离心 10 min,吸取上清液 50 μL,采用 100 μL;空 白 对 照 组 加 入 CIB 100 μL;不 同 浓 度
液相色谱-串联质谱法定量分析各组细胞的组胺释放 IVQKIKHCF 组加入 25、50、100 μmol/L 的 IVQKIKHCF
量,具体检测条件和计算方法见已发表文献[16]。 溶 液 各 100 μL;阴 性 对 照 组 加 入 100 μmol/L 的
2.4 炎症因子释放量的测定 IVQKIKHCF 溶液 100 μL。随后,立即使用倒置荧光显
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将LAD2细胞按1×10 个/孔均匀接种于96孔板(每 微镜观察各组细胞荧光强度的动态变化情况(每秒拍照
孔100 μL)中,于37 ℃下培养过夜;以1 500 r/min离心5 1 张,共拍照 120 s),以反映细胞内钙离子浓度的变化
min后吸弃上清液,将细胞分为阳性对照组、阴性对照组 情况。
和不同浓度 IVQKIKHCF 组,每组设 3 个复孔。阳性对 2.7 统计学方法
照组加入 3 μmol/L 的 SP 溶液 100 μL;阴性对照组加入 采用SPSS 18.0软件对数据进行统计分析。所有数
台式缓冲液 100 μL;不同浓度 IVQKIKHCF 组加入 25、 据均采用 x±s 表示,两组样本的比较采用独立样本 t 检
50、100 μmol/L的IVQKIKHCF溶液各100 μL。于37 ℃ 验;多组样本的比较采用单因素方差分析(one-way
下孵育8 h后,以1 500 r/min离心5 min,取上清液,严格 ANOVA),进一步两两比较采 Dunnett’s(方差不齐)或
按照相应试剂盒说明书操作,采用ELISA法以酶标仪检 LSD-t(方差齐)检验。检验水准α=0.05。
测各组细胞上清液中炎症因子(TNF-α、IL-8、MIP-1β、 3 结果
MCP-1)的含量。 3.1 IVQKIKHCF激活LAD2细胞引发脱颗粒反应
2.5 敲低 MrgprX2 对细胞 β-氨基己糖苷酶释放率的 SP 和 25~100 μmol/L 的 IVQKIKHCF 均可显著提
影响 高 LAD2 细胞的 β-氨基己糖苷酶释放率和组胺释放量
取 MrgprX2 siRNA 片 段 75 pmol 和 Lipofectamine (P<0.05),其中 β-氨基己糖苷酶的平均释放率由 25
2000 转染试剂 7.5 μL,分别稀释于 Opti-MEM 培养基 μmol/L IVQKIKHCF 组 的 19.92% 升 高 至 100 μmol/L
100 μL中,静置2 min后,将上述两者混匀,室温静置15 IVQKIKHCF 组 的 60.69%,组 胺 的 平 均 释 放 量 由 25
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min;将 LAD2 细胞以 1×10 个/孔接种于 6 孔板中,加入 μmol/L IVQKIKHCF组的71.23 ng/mL升高至100 μmol/L
MrgprX2 siRNA 和 Lipofectamine 2000 转染试剂的混合 IVQKIKHCF 组的 146.87 ng/mL,均有一定的剂量依赖
液,混匀,得转染 MrgprX2 siRNA 片段的 LAD2 细胞 趋势。结果见图1。
(KD-LAD2 细胞),备用。取无序 siRNA 片段、Lipo‐ 100 400
β-氨基己糖苷酶
fectamine 2000转染试剂和LAD2细胞,同法处理得转染 80 组胺 a a
无序 siRNA 片段的 LAD2 细胞(NC-LAD2 细胞),备用。 60 a 300 ( ng/mL )
将上述两种细胞按1×10 个/孔接种于96孔板(每孔100 β-氨基己糖苷酶释放率/% 40 a a 200
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μL)中,于37 ℃下培养过夜;以1 500 r/min离心5 min后 a a a 100 组胺释放量/
吸弃上清液,将两种细胞均分为阳性对照组、阴性对照 20
组和不同浓度 IVQKIKHCF 组,每组设 3 个复孔。阳性 0 0
阴性对照组 25 50 100 阳性对照组
对照组加入 3 μmol/L 的 SP 溶液 100 μL;阴性对照组加 IVQKIKHCF浓度/(μmol/L)
入台式缓冲液 100 μL;不同浓度 IVQKIKHCF 组加入 a:与阴性对照组比较,P<0.05。
图1 各组LAD2细胞的β-氨基己糖苷酶、组胺释放情况
25、50、100 μmol/L 的 IVQKIKHCF 溶液各 100 μL。于
(n=3)
37 ℃下培养 30 min 后,按“2.2”项下方法测定并计算各
组细胞的β-氨基己糖苷酶释放率。 3.2 IVQKIKHCF激活LAD2细胞释放炎症因子
2.6 细胞内钙离子浓度的检测 与阴性对照组比较,100 μmol/L IVQKIKHCF 组和
将 MRGPRX2/HEK293 细胞和 HEK293 细胞按 1× 阳性对照组细胞上清液中 TNF-α、IL-8 含量,50、100
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10 个/孔分别接种于 96 孔板(每孔 100 μL)中,于 37 ℃ μmol/L IVQKIKHCF 组和阳性对照组细胞上清液中
中国药房 2023年第34卷第24期 China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 24 · 2997 ·