Page 35 - 《中国药房》2023年14期
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2.2 Cur-SLN-FL的肺部刺激性研究 变化。
取大鼠 18 只,采用随机数字表法分为 3 组,即空气 2.3.5 肺组织胶原纤维沉积情况的检测
对照组、空白 SLN-FL 组和 Cur-SLN-FL 组,每组 6 只(5 采用 Masson 染色进行检测。取固定于 4% 多聚甲
只正式+1只备用)。空白SLN-FL组和Cur-SLN-FL组大 醛的各组小鼠右肺组织适量,常规脱蜡至水,染色,冲
鼠均采用大鼠干粉定量雾化器将吸入微粉按 50 mg/kg 洗,吹干后,封片,于光学显微镜下观察各组小鼠肺组织
经气管给药(依据单次雾化最大给药剂量,参考前期细 胶原纤维沉积情况。
胞毒性实验、细胞药效学实验结果设置),每日1次,连续 2.3.6 肺组织中 NLRP3、caspase-1 和 IL-1β 阳性表达的
7 d;空气对照组大鼠给予等体积空气。末次给药 24 h 检测
后,处死各组动物,迅速取出气管及肺组织,进行苏木 采用免疫组织化学法进行检测。取各组小鼠左肺
精-伊红(HE)病理检查。 组织,分离直径为 100 μm 左右的肺动脉,4% 多聚甲醛
2.3 肺部吸入 Cur-SLN-FL 对 COPD 模型小鼠炎症反 固定,石蜡包埋,制成厚度为 5 μm 的切片,免疫组织化
应的实验研究 学染色;切片脱蜡,分别加入一抗 NLRP3、caspase-1、
2.3.1 COPD动物模型的建立 IL-1β(稀释比例均为1∶200)后,4 ℃过夜,再分别加入相
参照相关文献 [11―13] 并结合课题组前期预实验结果 应的二抗(稀释比例为 1∶200),脱水封片。在显微镜下
采用气管内滴注猪胰蛋白酶(1 000 U/kg)复制COPD模 观察 5 个不同视野中 NLRP3、caspase-1、IL-1β 的阳性细
型:60 只小鼠经盐酸替来他明-盐酸唑拉西泮肌内注射 胞数。
50 mg/kg 麻醉后,固定于操作台上呈仰卧状态,从颈部 2.3.7 肺组织中NLRP3、caspase-1和NF-κB蛋白表达的
开始做皮肤消毒、备皮,切开皮肤、皮下组织,充分暴露 检测
气管后,选择5号针头插入气管内。其中随机选用12只 采用 Western blot 法进行检测。取各组小鼠(5 只)
小鼠按 1.0 mL/kg 注入生理盐水,其余小鼠均滴注猪胰 新鲜肺组织适量,加RIPA蛋白裂解液于冰上研磨裂解,
蛋白酶溶液(质量浓度为 33.3 mg/mL、给药剂量为 1.0 在EP管中反复冻融,离心后取上清液,采用BCA蛋白浓
mL/kg)。滴注完毕后,先消毒皮肤并缝合。小鼠苏醒后 度测定试剂盒测定蛋白浓度,高温使蛋白变性。变性蛋
24 h,无死亡,正常喂养28 d,待分组。 白样品经十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,转至
2.3.2 分组及给药 0.45 μm 聚偏二氟乙烯膜上,5% 脱脂奶粉封闭 1~2 h
除“2.3.1”项下 12 只滴注生理盐水的小鼠作为假手 后,分别加入一抗 NLRP3、caspase-1、NF-κB(稀释比例
术组外,造模成功的模型小鼠按体重随机分为模型组、 均为 1∶200),4 ℃振荡过夜;磷酸盐缓冲液洗涤 3 次后,
布地奈德组(依据临床一次吸入的剂量换算成小鼠的 分别加入相应的二抗(稀释比例为 1∶200),室温孵育 2
剂量为 20 mg/kg)和 Cur-SLN-FL 高、低剂量组(100、50 h;加入 ECL 发光试剂显影,分析各蛋白条带的灰度值,
mg/kg,参考前期预实验结果设置),每组 12 只(10 只正 以β-actin为内参计算目的蛋白条带的相对比值。
式+2只备用)。Cur-SLN-FL高、低剂量组小鼠均采用小 2.4 统计学方法
鼠干粉定量雾化器经气管给药;布地奈德组小鼠采用液 采用GraphPad Prism 5.0软件和SPSS21.0软件对数
体定量雾化器经气管给药;假手术组和模型组小鼠经气 据进行统计分析。数据均以 x±s 表示。多组间比较采
管给予等体积生理盐水,每日1次,连续14 d。 用单因素方差分析,组间两两比较采用 Bonferroni 法检
2.3.3 支气管肺泡灌洗液的白细胞分类计数 验,检验水准α=0.05。
末次给药 24 h 后,处死小鼠,打开胸腔,暴露双肺, 3 结果
取出右肺(每组6只),暴露气管,在气管下段作小T形切 3.1 Cur-SLN-FL粒径和载药量的检测结果
口,插入钝钢针头,手术线固定,注射器注入 8 mL 生理 经测定,Cur-SLN-FL 的平均粒径为(4.95±0.57)
盐水,反复抽吸 3 次回收支气管肺泡灌洗液(bronchoal‐ μm、空气动力学粒径为(4.03±0.40)μm,在 1~5 μm 的
veolar lavage fluid,BALF),收集 BALF 5~8 mL,3 000 范 围 内 ,适 合 肺 部 吸 入 微 粒 的 要 求 [9―10] ;载 药 量 为
r/min 离心 10 min,取沉淀细胞加 200 μL 磷酸盐缓冲液 (4.43±0.08)%。
重悬,混匀,采用全自动血细胞分析仪进行细胞分类计 3.2 Cur-SLN-FL的肺部刺激性结果
数,分别计数白细胞、中性粒细胞、淋巴细胞、嗜酸性粒 如图1所示,空气对照组大鼠气管有轻度组织水肿、
细胞,得到各类细胞的比例,根据总细胞数量计算出各 中度嗜酸性粒细胞浸润,肺泡壁未见明显增厚,有轻微
类细胞的绝对数量。 炎症细胞浸润。与空气对照组比较,空白 SLN-FL 组大
2.3.4 气管及肺组织形态变化的观察 鼠气管出现组织水肿,少量嗜酸性粒细胞及淋巴细胞浸
取各组小鼠气管及部分右肺组织,于 4% 多聚甲醛 润,肺泡壁增厚、间隔增宽,炎症细胞浸润(以淋巴细胞
固定,常规脱水,石蜡包埋,二甲苯脱去切片中的石蜡, 为主),偶见肺泡断裂;Cur-SLN-FL 组大鼠气管和肺部
再经常规乙醇梯度洗脱、石蜡包埋后,切片(4 μm 厚 未见明显炎症反应。与空白 SLN-FL 组比较,Cur-SLN-
度),进行HE染色以评估各组小鼠气管及肺组织的形态 FL组大鼠气管嗜酸性粒细胞及淋巴细胞浸润均减轻,肺
中国药房 2023年第34卷第14期 China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 14 · 1693 ·