Page 62 - 《中国药房》2023年13期
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置于玻璃微量反应瓶中,室温下氮气吹干。加入 15
分分析。色谱条件:采用Agilent ZORBAX RRHDSB-C18
(100 mm×2.1 mm,1.8 μm)色谱柱,以 0.05% 甲酸溶 mg/mL的甲氧胺吡啶溶液80 μL,37 ℃孵育90 min。加
液(A)-乙腈(B)为流动相进行梯度洗脱(0~4 min, 入BSTFA 80 μL,70 ℃下孵育60 min,冷却至室温后,即
95%A→90%A;4~10 min,90%A→88%A;10~11 min, 可进样。
88%A;11~16 min,88%A→75%A;16~30 min,75%A→ 2.6.2 气相色谱-质谱分析条件
5%A;30~33 min,5%A→95%A);流速为 0.3 mL/min; 采用气相色谱-质谱联用仪对经前处理的血清样本
柱温为30 ℃,进样量为1 μL。质谱条件:采用Dual AJS 进行数据采集,血清代谢组学气相色谱-质谱分析条件
电喷雾离子源(ESI),在正、负离子模式下检测;干燥气 见参考文献[11]。
温度为 320 ℃,流速为 8 mL/min;雾化器压力为 35 psi; 2.6.3 数据处理与分析
鞘气温度为 350 ℃,流速为 11 mL/min;毛细管电压为 采用Agilent Masshunter Qualititative Analysis B.07.00
4 000 V;喷嘴电压为 1 000 V;碰撞能量为 10 eV;扫描 和NIST 14.0化学数据库对采集所得的质谱数据进行定
范围为质荷比(m/z)50~1 200 ;离子源温度为150 ℃。 性分析,再将定性数据结果导入SIMCA-P 14.1软件进行
2.3 分组、造模与给药 主成分分析(principal component analysis,PCA)、正交偏
将22只小鼠适应性喂养1周后,按照体质量分为对 最小二乘法-判别分析(orthogonal partial least squares-
照组(n=6)、造模组(n=16)。对照组小鼠给予普通饲 discriminant analysis,OPLS-DA)和置换检验分析。根据
料,自由饮水(纯水);造模组小鼠给予高脂饲料,自由饮 变 量 重 要 性 投 影(variable importance in projection,
[12]
水(浓度为12.5%的果葡糖浆),建立小鼠高胆固醇血症 VIP)>1且P<0.05筛选差异化合物 ,然后结合人类代
[9]
模型 。造模10周后,眼眶取血,制备血清,测定血清中 谢组数据库(HMDB,https://hmdb.ca)确证差异代谢物,
TC水平,若对照组和造模组小鼠血清中TC水平差异有 并将差异代谢物导入 HMDB 数据库进行化学分类及所
[9]
统计学意义(P<0.05),表示造模成功 。造模成功后, 处细胞位置分类。利用 MetaboAnalyst 5.0 数据库对已
造模组小鼠根据血清TC水平、体质量均衡随机分组,进 鉴定的差异代谢物进行通路富集分析,以 P<0.05 作为
一步分成模型组(n=8)和大蓟提取物组(n=8)。大蓟 筛选条件得到相关的信号通路。
提取物组小鼠灌胃 400 mg/(kg·d)大蓟提取物(给药剂 2.7 统计学、作图与制表方法
量参考文献[10],并结合课题组前期相关研究设定,以提 采用 SPSS 20.0、Graphpad Prism 8.0 软件进行数据
取物计),对照组和模型组小鼠同时给予等体积0.3%羧 统计分析。计量资料以x±s表示,多组间比较采用单因
甲基纤维素钠溶液。所有小鼠每日上午同一时间灌胃 素方差分析,进一步两两比较采用 LSD-t 检验。检验水
给药1次,连续给药6周。 准 α=0.05。使用 Graphpad Prism 8.0、Adobe Illustrator
2.4 样本采集与处理 2022软件作图,使用Excel 2019软件制表。
末次给药后,小鼠禁食 12 h,采用乙醚麻醉小鼠后 3 结果
眼眶取血。血液在室温静置 2 h 后,以 3 500 r/min 离心 3.1 大蓟提取物的成分分析结果
10 min,取上清液,于-80 ℃冰箱中保存。将小鼠处死, 本研究共鉴定出大蓟提取物的12种成分(见表1)。
快速分离肝脏组织,取小块肝左外叶置于包埋盒中,在 由结果可知,大蓟提取物中主要是酚酸类和黄酮类成
4%多聚甲醛中固定24~48 h用于后续实验。 分,如绿原酸、蒙花苷和柳穿鱼叶苷等。
2.5 血清生化指标测定及肝脏组织病理分析 表1 大蓟提取物成分鉴定结果
取“2.4”项下血清,按照对应试剂盒方法测定血清中 序号 保留 分子量 准分子离子峰(m/z) 主要碎片离子(m/z) 鉴定化合物
TC、TG 水平。取“2.4”项下肝脏组织,常规制备石蜡切 时间/min
1 3.073 154 153.046 8[M-H] - 137.017 9、109.024 5 原儿茶酸 [13]
片(厚度4 μm)后进行苏木素-伊红染色,中性树胶封片, 2 3.526 354 353.074 1[M-H] - 191.047 2、179.026 7、135.038 8 绿原酸 [14]
最后在显微镜下观察小鼠肝脏组织病理变化。 3 3.532 354 353.077 1[M-H] - 191.047 0 新绿原酸 [14]
4 3.559 354 353.076 0[M-H] - 191.047 5、179.026 5、173.037 5、161.016 9、隐绿原酸 [15]
2.6 血清代谢组学研究 135.038 8
2.6.1 血清样本前处理 5 6.003 286 287.175 5[M+H] + 259.139 9、230.115 6 木犀草素 [16]
6 12.359 593 593.185 2[M+H] + 447.126 9、285.074 2 蒙花苷 [16]
血清代谢组学研究的样本前处理方法参考文献[11]。
7 12.878 623 623.201 0[M+H] + 477.138 1、315.086 1 柳穿鱼叶苷 [16]
取小鼠血清 20 μL,精密加入质量浓度为 1 mg/mL 的十 8 14.612 314 315.087 0[M+H] + 300.061 4、285.074 2 柳穿鱼黄素 [16]
九烷酸甲醇溶液10 μL,再加入水-甲醇-氯仿溶液(2∶5∶2, 9 16.346 270 271.058 3[M+H] + 235.166 5、211.131 3 芹菜素 [17]
10 17.288 300 301.068 6[M+H] + 286.045 4、258.050 2 香叶木素 [16]
V/V/V)250 μL,涡旋混匀后在4 ℃下孵育20 min,然后再 11 18.428 180 181.120 8[M+H] + 163.110 3、135.115 5、107.084 1、91.053 0 咖啡酸 [15]
在室温下以14 000 r/min离心15 min,取上清液200 μL, 12 19.496 284 285.074 2[M+H] + 270.050 6、242.055 9 金合欢素 [16]
· 1592 · China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 13 中国药房 2023年第34卷第13期