Page 67 - 《中国药房》2023年8期
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模型组(IL-6 50 ng/mL )、给药组(IL-6 50 ng/mL+熊果 2.5 熊果酸对 IL-6 刺激后 231 细胞中 JAK2/STAT3 信
酸 20 µmol/L,熊果酸给药浓度参考“2.1”项下结果设 号通路与EMT相关标志物的蛋白表达影响的检测
置),每组设置 3 个复孔。对照组用完全培养基培养 24 同“2.2”项下方法进行细胞分组(每组设置 3 个复
h,给药组与模型组用相应浓度的IL-6刺激24 h,之后给 孔)及干预,于给药组给药 48 h 后收集各组细胞,采用
药组用含相应浓度药物的完全培养基培养48 h。用200 Western blot 法检测 JAK2/STAT3 通路中 JAK2、p-JAK2、
µL 枪头在 6 孔板内垂直划“一”字后,用 D-hanks 液清洗 STAT3、p-STAT3 4 种蛋白及 EMT 相关标志物 E-cad、
漂落的细胞。3 组细胞分别于给药组给药后 0 h 与 12 h MMP2、MMP9、Vim、CD44、ALDH1A1 蛋白的表达水
在同一位置拍照记录,采用 Image J 软件分析划痕面积 平。在细胞中加入RIPA裂解液(含1%蛋白酶抑制剂的
并计算细胞迁移率,细胞迁移率(%)=(0 h 划痕面积- 蛋白裂解液)后冰上裂解 30 min,离心后保留上清液,
12 h划痕面积)/0 h划痕面积×100%。 采用 BCA 法进行蛋白浓度测定,将蛋白浓度调整到
2.3 熊果酸对IL-6刺激后231细胞侵袭影响的检测 1 µg/µL 后进行高温变性。取 10 µL 变性蛋白样品进行
采用 Transwell 实验检测熊果酸对 231 细胞侵袭能 十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,起始浓缩胶电
力的影响。提前将基质胶于 4 ℃解冻,枪头预冷,基质 压调至80 V,待样本基本平齐后电压转至120 V,溴酚蓝
胶与无血清培养基以 1∶8 混合均匀后取 100 µL 加入小 抵达凝胶底部时停止电泳。将胶上蛋白转移到 PVDF
室,于孵育箱中放置 4 h。将细胞悬液用无血清培养基 膜,5%牛血清白蛋白封闭2 h,加入相对应的一抗,稀释
调整至 5×10 个/mL,分别取 100 µL 细胞悬液加入小室 比例均为 1∶1 000,4 ℃孵育过夜;次日用 TBST 洗涤后
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内,小室外加入 500 µL 血清浓度为 15% 的培养基,细胞 加入山羊抗兔/鼠二抗(稀释比例均为1∶5 000)室温孵育
分组及给药参考“2.2”项下,每组设置3个复孔。给药组 2 h,TBST洗涤3次后于化学发光成像系统上成像显影。
给药后各组细胞于37 ℃继续孵育48 h,采用4%多聚甲
用 Image J 软件分析图像灰度值,以目的蛋白与内参蛋
醛固定 15 min,1% 结晶紫染色 15 min,磷酸盐缓冲液清
白(GAPDH)的灰度值比值作为前者的相对表达量,以
洗小室,用棉签拭去小室内的细胞,充分晾干后在显微
p-JAK2 与 JAK2 灰度值的比值、p-STAT3 与 STAT3 灰度
镜下随机选择5个视野,采用Image J软件分析穿膜细胞
值的比值反映JAK2、STAT3的磷酸化水平。
数量并计算细胞侵袭率,细胞侵袭率(%)=模型组或给
2.6 统计学方法
药组穿膜细胞数/对照组穿膜细胞数×100%。
采用SPSS 25.0软件进行统计分析,计量资料以x±s
2.4 熊果酸对IL-6刺激后231细胞中EMT相关标志物
表示,多组资料比较采用单因素方差分析,两两间比较
mRNA表达影响的检测
采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
同“2.2”项下方法进行细胞分组(每组设置 3 个复 3 结果
孔)及干预,于给药组给药 48 h 后收集各组细胞,采用
3.1 熊果酸对231细胞增殖率的影响
TRIZOL-氯仿法提取 RNA,采用 q-PCR 法检测细胞中
随着药物浓度的升高,231细胞增殖率均逐渐降低,
EMT 相 关 标 志 物 E-cad、MMP2、MMP9、Vim、CD44、
呈现剂量依赖趋势。熊果酸在20~40 µmol/L时,231细
ALDH1A1 mRNA 的表达水平。PCR 扩增程序(反应体
胞的增殖率在85%以上,对细胞的增殖能力无明显的抑
系为20 µL)为:95 ℃预变性2 min;95 ℃变性10 s,62 ℃
制作用,结果见图1。本实验选取低浓度20 µmol/L作为
退火30 s,72 ℃延伸15 s,共40个循环。以GAPDH为内
后续实验中熊果酸的给药浓度。
参,以对照组为参照,计算 2 -ΔΔCt 值确定各目的基因
mRNA的相对表达量。各引物序列见表1。 150
表1 基因引物序列 100
基因名称 引物序列(5′-3′) 引物长度/bp 产物长度/bp 细胞增殖率/%
GAPDH 正向引物:TCTGACTTCAACAGCGACACC 21 119 50
反向引物:CTGTTGCTGTAGCCAAATTCGTT 23
CD44 正向引物:CAGCAACCCTACTGATGATGACG 23 110
反向引物:GCCAAGAGGGATGCCAAGATGA 23 0
MMP2 正向引物:TACAGGATCATTGGCTACACACC 23 156 正常组 20 μmol/L 40 μmol/L 80 μmol/L 160 μmol/L 320 mol/L
反向引物:GGTCACATCGCTCCAGACT 19 熊果酸浓度
Vim 正向引物:CGGGAGAAATTGCAGGAGGA 20 340 图1 不同浓度熊果酸对231细胞增殖率的影响(n=6)
反向引物:AAGGTCAAGACGTGCCAGAG 20
E-cad 正向引物:GACAACAAGCCCGAATT 17 156 3.2 熊果酸对IL-6刺激后231细胞迁移的影响
反向引物:GGAAACTCTCTCGGTCCA 18 与对照组细胞迁移率[(100.00±8.70)%]比较,模型
ALDH1A1 正向引物:AGGGCCAGTGTTGTATAGCC 20 92 组细胞迁移率[(142.40±18.12)%]显著升高(P<0.05);
反向引物:TCCACATTCCAGTTTGGCCC 20
MMP9 正向引物:GGGACGCAGACATCGTCATC 20 117 与模型组比较,给药组细胞迁移率[(104.98±14.06)%]
反向引物:TCGTCATCGTCGAAATGGGC 20 显著降低(P<0.05),结果见图2。
中国药房 2023年第34卷第8期 China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 8 · 957 ·