Page 83 - 《中国药房》2023年3期
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美国Abcam公司。 进行腹腔注射麻醉后,经腹主动脉采血,以 3 000 r/min
1.3 动物 离心 10 min,取上清液存于-80 ℃条件下,备用。取血
SPF级健康SD大鼠80只,雄性,约12周龄,体质量 后将大鼠处死,迅速取其肝组织适量,以生理盐水清洗
(238.56±17.17) g,由海南省药品检验所提供,实验动物 多次 ,之后置于液氮中冻存约 30 min,取出后冻存
使用许可证号为 SYXK(琼)2021-0009。大鼠饲养于温 于-80 ℃条件下,备用。另再取肝组织适量,以 4% 多
度 20~26 ℃、相对湿度(55±15)%的安静环境下,避免 聚甲醛固定处理 24 h,用于肝组织苏木素-伊红(HE)染
强光照射,按需饮水、摄食,均经1周基础饲料适应性喂 色及过碘酸-雪夫(periodic acid-Schiff,PAS)染色。
养,再进行后续实验。本研究经中南大学湘雅医学院附 2.5 血清脂代谢指标检测
属海口医院生物医学伦理委员会审核批准,伦理批件号 取“2.4”项下血清适量,常规解冻后与相应试剂盒工
为2020-(伦审)-252。 作液充分混匀,37 ℃孵育 5~10 min,用酶标仪进行测
2 方法 定。采用葡萄糖氧化酶法检测血清中 TG 水平,检测波
2.1 余甘子水提物的制备与给药剂量 长为510 nm;采用酶法检测血清中TC水平,检测波长为
取新鲜余甘子,以清水进行清洗,去核,以果肉10倍 510 nm;采用直接法检测血清中LDL-C、HDL-C水平,检
量(mL/g)的蒸馏水浸泡 0.5 h,再煎煮 2 次、每次 1 h,过 测波长为546 nm。
滤提取液,合并2次滤液,减压浓缩至约100 mL体积;加 2.6 血清胰岛素相关指标检测及计算
入适量4%明胶水溶液,边加热边搅拌,混匀后再次过滤 取“2.4”项下血清适量,常规解冻后采用 ELISA 法
去渣加入3倍体积的95%乙醇,作用24 h后,过滤,取滤
测定血清FINS水平,严格遵从试剂盒说明书进行操作,
液,浓缩至提取物相对密度为 2 g/mL,保存备用。使用
并计算胰岛素抵抗指数(insulin resistance index,IRI)及
前以蒸馏水进行稀释。参考文献[9],将余甘子的成人用
胰岛素敏感指数(insulin sensitivity index,ISI)。IRI=
量(3~9 g)换算为大鼠的给药剂量,采用 800、400、200
FBG×FINS/22.5,ISI=1/(FBG×FINS),其中ISI为非正
mg/kg 3 个剂量给药,分别相当于成人最低给药剂量的
态分布,以其自然对数为最终结果。
3、1.5、0.75 倍等效剂量;参考文献[10],由吡格列酮的成
2.7 肝组织病理形态观察
人剂量换算为大鼠的给药剂量(2.7 mg/kg)。按照大鼠
采用HE染色法进行观察。包埋切片:取“2.4”项下
5 mL/kg的体积进行灌胃。
经固定处理的肝脏,进行常规石蜡包埋切片,切片厚度
2.2 分组、造模与给药
4 μm。脱蜡:切片经温箱适当烤干后,投入二甲苯中脱
将80只SD大鼠按照体质量进行随机分组,其中10
蜡处理5~10 min,待蜡彻底溶解后,再移入100%、90%、
只为空白组,给予基础饲料喂养;其余70只根据参考文
80%、70%乙醇分别处理约2 min,之后清水洗去乙醇,最
献[11]建立 IR 模型:大鼠以高糖高脂饲料连续喂养 4 周
后以蒸馏水处理2 min。HE染色顺序:苏木素染液染色
后,提前禁食12 h,空腹称其体质量,于左腹下侧单次注
5 s,1% 盐酸-乙醇溶液分化 30 s,流水冲洗至返蓝(约 5
射 STZ(溶剂为 0.1 mol/L 的柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液),
min);伊红染液染色5 s,再经80%、90%、100%乙醇梯度
剂量为 35 mg/kg。3 d 后经尾部取血检测其空腹血糖
脱水后,移入二甲苯中透明处理约5 min。封固:迅速擦
(fasting plasma glucose,FPG)水平 ,测得 FPG 水平>
16.7 mmol/L并持续至少10 d则认为造模成功。最终有 去组织外围的二甲苯,滴入树胶,以干净的盖玻片盖在
树胶上,调整盖玻片位置,待封固并晾干后,于显微镜下
62 只大鼠造模成功,取造模成功的大鼠 50 只随机分为
模型组、阳性对照组和余甘子水提物高、中、低剂量组, 观察肝组织的病理形态变化并拍照。
2.8 肝组织中糖原表达情况观察
每组各 10 只。余甘子水提物各剂量组大鼠给予相应浓
度的余甘子水提物稀释液,阳性对照组大鼠给予配制好 采用 PAS 染色法进行观察。取“2.7”项下脱蜡后的
的吡格列酮溶液,空白组及模型组大鼠则给予等体积的 肝组织切片,以蒸馏水冲洗1~2 min后,用0.5%过碘酸
生理盐水。所有大鼠每日灌胃1次,连续4周。 浸泡氧化处理 10 min,蒸馏水再冲洗 3 次,每次至少 5
2.3 大鼠一般状态观察及体质量测定 min;置于雪夫试剂中显色处理15 min,经流水冲洗3次,
于实验开始时及开始后的每一周均观察并记录大 每次约5 min;苏木素复染2 min,1%盐酸-乙醇溶液分化
鼠的精神状态、毛发光泽度、摄食、饮水、尿量及体质量 30 s,流水冲洗至返蓝(约5 min),再通过乙醇梯度洗脱,
变化情况。称体质量时,大鼠需在空腹条件下至少禁食 透明和封固处理同“2.7”项下。最后,经显微镜观察并拍
12 h,但不禁水。 照后,用Image-Pro Plus 6.0软件分析肝组织中糖原染色
2.4 标本采集 面积(以像素点计)。肝组织糖原经PAS染为紫红色,染
末次灌胃后第 2 天,以 2% 戊巴比妥钠溶液对大鼠 色面积数值越大,提示糖原密度越大、含量越高。
中国药房 2023年第34卷第3期 China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 3 · 329 ·