Page 37 - 《中国药房》2022年23期
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2 h后,以3 000 r/min离心15 min,取上清液,置于-80 ℃ 标准为≥36 分(满分 60 分);<36 分视为定性结果不准
冰箱中保存备用。 确,则排除 ],最后将正负离子数据合并为一个数据矩
[7]
2.2 大鼠心脏组织病理学形态观察 阵表,后续研究则以此表为基础进行分析。
将“2.1”项下假手术组、模型组和清热活血汤各剂量 2.4.4 药效成分分析 基于“2.4.3”项下鉴定所得化合
组大鼠心脏组织使用预冷0.9%氯化钠溶液清洗后固定 物,以 P<0.05、差异倍数(fold change,FC)≥1.2 为筛选
于4%多聚甲醛中24 h,然后进行梯度乙醇脱水、二甲苯 条件,筛选清热活血汤含药血清相对于空白血清含量较
透明、石蜡包埋及切片。根据试剂盒说明书方法操作, 高的化合物,然后与黄芩、毛冬青、川芎、赤芍、降香、红
取上述部分切片(剩余部分进行细胞凋亡水平检测)以 花、丹参在 TCMSP(https://old.tcmsp-e.com/tcmsp.php)、
二甲苯脱蜡、梯度乙醇水化后,进行 HE 染色,采用数字 SYMMAP(http://www.symmap.org/)、HERB(http://herb.
病理切片扫描仪观察大鼠心脏组织的病理学形态变化。 ac.cn/)数据库中收录的化学成分进行交集,以确认清热
2.3 大鼠心脏组织中细胞凋亡水平的检测 活血汤含药血清中的主要药效成分。
取“2.2”项下剩余切片按TUNEL试剂盒说明书方法 2.4.5 差异代谢物及代谢通路分析 基于“2.4.3”项下
操作后,采用数字病理切片扫描仪扫描观察,并随机选取 鉴定所得化合物,采用主成分分析(principal component
6个视野使用Image J软件计算心脏组织细胞凋亡率,细胞 analysis,PCA)、偏最小二乘分析(partial least squares dis‐
凋亡率(%)=绿色荧光细胞数/蓝色荧光细胞数×100%。 crimination analysis,PLS-DA)及正交偏最小二乘判别分
2.4 大鼠清热活血汤含药血清和空白血清的 UPLC-
析(orthogonal partial least-squares discrimination analysis,
MS分析
OPLS-DA)来区分清热活血汤含药血清组与空白血清组
2.4.1 血清样本的预处理 将“2.1”项下空白血清组和 [7]
之间代谢轮廓的总体差异 。采用 OPLS-DA 中变量重
清热活血汤含药血清组的血清样本取出解冻,移取样本
要性投影(variable importance in projection,VIP)值及 t
100 μL,加入内标(0.06 mg/mL L-2-氯苯丙氨酸)20 μL,
检验筛选组间差异代谢物(筛选标准为 VIP 值>1,P<
涡旋震荡10 s;加入蛋白沉淀剂300 μL涡旋震荡1 min, [8]
0.05) 。 采 用 HMDB、METLIN、KEGG(https://www.
再于冰水浴中超声(功率 360 W,频率 40 kHz,下同)提
kegg.jp/)数据库对差异代谢物进行指认并基于KEGG数
取10 min后,于-20 ℃条件下静置30 min;静置后,将样 据库进行代谢通路富集分析。
本于 4 ℃条件下以 13 000 r/min 离心 10 min,取上清液
2.5 大鼠血清中氧化应激指标水平的检测
200 μL装入UPLC-MS进样小瓶中挥干溶剂。样本残渣
取假手术组、模型组和清热活血汤低、中、高剂量组
以 300 μL 甲醇复溶(涡旋 30 s,超声 3 min)后,离心 10
大鼠的全血样本适量,于 4 ℃下以 3 000 r/min 离心 15
min,吸取上清液 150 μL,以 0.22 μm 微孔滤膜过滤后,
min。取上清液,根据试剂盒说明书方法操作后,采用比
进行UPLC-MS分析。每组平行6份样本。
色法检测大鼠血清中SOD、MDA、GSH-Px水平。
2.4.2 UPLC-MS 条 件 (1)色 谱 条 件 :色 谱 柱 为
2.6 统计学方法
ACQUITYUPLC HSS T3(100 mm×2.1 mm,1.8 μm);柱
实验数据采用 SPSS 24.0 进行统计学分析,计量资
温为 45 ℃;流动相为 0.1% 甲酸(A)-乙腈(B,含 0.1% 甲
料符合正态分布以 x±s 表示。多组间比较采用单因素
酸),梯度洗脱(0~2 min,5%B;2~4 min,5%B→30%B;
4~8 min,30%B→50%B;8~10 min,50%B→80%B; 方差分析,组间两两比较采用 LSD-t 检验(方差齐时)或
Dunnett’s T3检验(方差不齐时)。检验水准α=0.05。
10~14 min,80%B→100%B;14~15 min,100%B;15~
16 min,100%B→5%B);流速为 0.35 mL/min;进样体积 3 结果
为2 μL。(2)质谱条件:离子源为ESI;质荷比扫描范围为 3.1 大鼠心脏组织病理形态学观察结果
100~1 200;一级全扫描分辨率为 7×10 ;喷雾电压(V) 假手术组大鼠心肌细胞纤维排列整齐、肌节清晰紧
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为 3 500(+)、-3 000(-);鞘气流速(Arb)为 40(+)、35 密。模型组大鼠大部分心肌细胞肿胀变形、肌丝断裂,
(-);辅气流速(Arb)为 10(+)、8(-);毛细管温度为 组织间隙水肿、白细胞浸润较明显。清热活血汤各剂量
320 ℃;质谱信号采集分别采用正负离子扫描模式。 组心肌细胞紊乱、心肌纤维断裂有所改善,且随着给药
2.4.3 数据预处理 UPLC-MS原始数据采用Progenesis 剂量的增加,改善越明显。结果见图1。
QI v2.3 软件进行基线过滤、峰识别、积分、保留时间校 3.2 大鼠心脏组织中细胞凋亡水平的检测结果
正、峰对齐和归一化。化合物的鉴定基于精确质量数、 与假手术组[(1.25±0.34)%]比较,模型组大鼠心脏
二级碎片及同位素分布,并使用 HMDB(http://www. 组 织 中 细 胞 凋 亡 率 [(38.62±5.75)% ] 显 著 升 高(P<
hmdb.ca/)、Lipidmapsv2.3(https://dev.lipidmaps.org/)和 0.05)。与模型组比较,清热活血汤低、中、高剂量组大鼠
METLIN(http://enigma.lbl.gov/metlin/)数据库进行定性 心 脏 组 织 中 细 胞 凋 亡 率 [ 分 别 为(24.59±1.17)% 、
分析。笔者基于提取出的数据,将组内缺失值(即离子 (21.41±3.03)% 、(15.86±3.06)% ] 均 显 著 降 低(P<
峰值为0)>50%的化合物的所有离子峰以极小值的1/2 0.05),且清热活血汤高剂量组细胞凋亡率显著低于中、
进行替换,并根据化合物定性结果打分进行筛选[筛选 低剂量组(P<0.05)。结果见图2。
中国药房 2022年第33卷第23期 China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 23 · 2847 ·