Page 69 - 《中国药房》2022年20期
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2 方法 2.5 细胞增殖能力的检测
2.1 柴胡陷胸汤的制备 采用 MTT 法进行检测。将 ECV304 细胞以 5 000
分别称取组方药材柴胡 10 g、法半夏 10 g、黄芩 10 个/孔接种在 96 孔板中,按照“2.3”项下方法分组、处理、
g、黄连4 g、瓜蒌10 g、木香6 g、九香虫6 g、丹参15 g、甘 培养。24 h 后,每孔加入 5 mg/mL 的 MTT 溶液 10 μL,
草6 g,加8倍量的水充分浸泡30 min,煎煮1 h×2次,过 继续孵育 4 h;然后,弃去上清液,每孔加入二甲基亚砜
滤,合并 2 次提取液,煎煮浓缩得柴胡陷胸汤药液(每 1 150 μL,使用酶标仪在490 nm波长处检测各孔的光密度
mL相当于生药2.0 g)。 (optical density,OD)值。以培养基为空白孔,按下式计
2.2 正常血清和高脂血清的制备 算细胞增殖率:细胞增殖率=(实验组 OD 值-空白孔
将12只新西兰兔随机分为正常组和高脂血症组,每
OD值)/(对照组OD值-空白孔OD值)×100%。
[13]
组 6 只。参考相关文献方法 ,正常组兔给予普通饲料
2.6 细胞中炎症因子和血管内皮功能指标的检测
喂养,高脂血症组兔给予1%高脂饲料(含胆固醇1 g、猪
采用酶联免疫吸附测定法进行检测。收集“2.5”项
油 5 g、蛋黄粉 15 g,其余为普通饲料)喂养,每天约 100
下各组细胞的上清液,按相应试剂盒说明书操作,使用
g,连续喂养12周。第13周,各组兔经麻醉后,于腹主动
酶标仪检测各组细胞上清液中炎症因子(TNF-α、IL-6)
脉采血 40 mL,使用全自动生化分析仪检测其血清中三
和血管内皮功能指标(eNOS、NO、ET-1)水平。
酰甘油(triacylglycerol,TG)、总胆固醇(total cholesterol,
2.7 细胞中ICAM-1、TGF-β1 mRNA表达的检测
TC)、低密度脂蛋白(low-density lipoprotein,LDL)和高
采用荧光定量PCR法进行检测。收集“2.5”项下各
密度脂蛋白(high density lipoprotein,HDL)水平,若 TC
[14]
水平高于正常组 3 倍则表示高脂血症模型复制成功 。 组细胞,采用 Trizol 试剂提取其总 RNA,并反转录为
检测结果显示,正常组兔血清中 TG、TC、LDL、HDL 水 cDNA,以 cDNA 为模板进行 PCR 扩增。反应体系(20
平 分 别 为(1.25±0.13)、(1.67±0.21)、(1.85±0.13) μL)包含:SYBR Green Mix(10 μL)、无菌双蒸水(7.4
(1.34±0.15)mmol/L,高脂血症组兔上述指标分别为 μL)、上游引物(0.8 μL)、下游引物(0.8 μL)和 cDNA 模
(2.48±0.19)、(7.14±0.28)、(5.93±0.16)、(0.65±0.11) 板(1.0 μL)。反应条件如下:95 ℃预变性5 min;95 ℃变
mmol/L。可见,高脂血症组兔血清 TC 水平约为正常组 性15 s,60 ℃退火20 s,72 ℃延伸20 s,共40个循环。以
的 4.3 倍,表明高脂血症模型复制成功。收集兔血清 GAPDH 为内参,采用 2 -ΔΔCt 法计算目标 mRNA 表达水
于-80 ℃冰箱中保存,备用。 平,以各组细胞中 ICAM-1、TGF-β1 mRNA 的表达水平
2.3 柴胡陷胸汤含药血清的制备 与对照组的比值作为评价结果。
将 24 只大鼠随机分为空白组和柴胡陷胸汤低、中、 2.8 细胞中TLR4/NF-κB通路相关蛋白表达的检测
高剂量组,每组6只。按照人(体质量70 kg)与大鼠体表
采用Western blot法进行检测。收集“2.5”项下各组
面积换算公式,以人等效剂量的 6.3 倍换算得柴胡陷胸 细胞,采用 RIPA 裂解液提取其总蛋白,测定浓度后,加
汤中剂量为 6.94 g/kg(以生药量计,下同),同时设置该
热变性。取变性蛋白,经电泳分离后转移至聚偏二氟乙
方低、高剂量分别为3.47、13.88 g/kg。各组大鼠每天早、
烯膜上,用 5% 脱脂奶粉封闭 1 h,分别加入兔源 TLR4、
晚灌胃相应剂量的药液1次,空白组灌胃等量生理盐水,
NF-κB p65、p-NF-κB p65、IκBα、p-IκBα、β-actin一抗(除
连续给药7 d。末次给药1 h后,大鼠经戊巴比妥钠麻醉
β-actin 的稀释比例为 1∶2 000 外,其余均为 1∶1 000),
后,于腹主动脉取血,分离血清,于 56 ℃水浴灭活 30
4 ℃孵育过夜;洗涤 3 次后,加入二抗(稀释比例为 1∶
min,再于-80 ℃冰箱中保存,备用。
5 000),室温孵育 1 h;洗涤后,使用化学发光试剂显
2.4 细胞分组与处理
影,并采用Image J V1.8.0软件分析各条带的灰度值,以
将ECV304细胞接种于DMEM培养基中,分为对照
β-actin 为内参,计算目标蛋白的相对表达量,并计算
组、模型组和柴胡陷胸汤低、中、高浓度组,每组设3个复
孔。在预实验结果的基础上,对照组细胞用含20%正常 p-NF-κB p65/NF-κB p65比值。
兔血清的 DMEM 培养基培养,其余各组细胞用含 20% 2.9 统计学分析
高脂兔血清的 DMEM 培养基培养;24 h 后,对照组和模 采用 GraphPad Prism 8.0 软件对数据进行统计分
型组细胞用含20%正常大鼠血清的DMEM培养基继续 析。实验数据以x±s表示,多组间比较采用单因素方差
培养24 h,柴胡陷胸汤低、中、高浓度组细胞用含20%含 分 析 ,组 间 两 两 比 较 采 用 SNK-q 检 验 。 检 验 水 准
药大鼠血清的DMEM培养基继续培养24 h。 α=0.05。
中国药房 2022年第33卷第20期 China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 20 ·2495·