Page 60 - 《中国药房》2022年12期
P. 60
用。使用时,将上述浸膏用水稀释成质量浓度分别为 表1 HIF-1α等基因的引物序列和扩增产物长度
0.6、0.3、0.15 g/mL(以生药量计)的混悬液。 基因 引物序列 扩增产物长度/pb
2.2 造模与给药 HIF-1α 上游引物:5′-ACTCACCTCTTCAGAACGAATTG-3′ 98
下游引物:5′-CCATCTTTGGAAGGTTCAGGTTG-3′
90 只大鼠适应性喂养 1 周后,称定其体质量(记为
STAT5 上游引物:5′-CCCTTGCCCTCCTAAACCAC-3′ 136
W1 )。按体质量均衡和随机数字表法分为正常对照组 下游引物:5′-AAGGAACCCTTAGAGTGCTTACT-3′
(15只)和造模组(75只)。除正常对照组外,其余大鼠每 β-actin 上游引物:5′-AAATGGTGAAGGTCGGTGTGAAC-3′ 102
下游引物:5′-CAACAATCTCCACTTTGCCACTG-3′
天上午灌胃腺嘌呤 250 mg/kg 建立肾阳虚大鼠模型,连
[9]
续给药14 d 。根据中医理论观察大鼠是否出现如下症 2.7 大鼠肾组织中HIF-1α、STAT5蛋白表达检测
状:(1)精神萎靡、畏寒;(2)活动减少、蜷缩抱团;(3)大 采用 Western blot 法进行检测。取大鼠肾组织适
便溏稀、小便清长、肛周污秽;(4)体毛疏松、黯淡无光 量,经 RIPA 蛋白裂解液提取总蛋白后,按 BCA 法定量,
等。根据上述症状对各组大鼠肾阳虚症候进行评分:未 然后加热变性,取变性后的蛋白样品 50 μg 进行电泳分
出现以上症状记 0 分,出现 1 项症状记 1 分,出现 2 项症 离,随后转移至聚偏氟乙烯膜上,用脱脂牛奶于室温下
状记2分,出现3项症状记3分,出现4项症状记4分;以 封闭 2 h 后,置于 4 ℃冰箱中,加入 HIF-1α、STAT5、
大鼠肾阳虚症候评分大于 0 分并伴有血清 T 水平降低、 p-STAT5、GAPDH 一抗(稀释比例均为 1 ∶ 500),孵育过
[10]
COR水平升高视为造模成功 。造模完成后,将造模组 夜;使用 PBST 缓冲液清洗 3 次,共 15 min,加入相应二
大鼠随机分为模型组、阳性对照组和盐炙杜仲低、中、高 抗(稀释比例为1 ∶ 1 000),室温孵育1 h,用PBST缓冲液
剂量组,每组15只。阳性对照组大鼠灌胃桂附地黄片混 清洗 3 次,以 ECL 显色后,于凝胶成像仪上成像并使用
[9]
悬液2.5 g/kg(溶剂为水) ,盐炙杜仲低、中、高剂量组大 Image J 1.52v 软件分析蛋白灰度值,以目标蛋白与内参
[11]
鼠分别灌胃盐炙杜仲混悬液1.5、3、6 g/kg ,正常对照组
蛋白(GAPDH)的灰度值比值为该蛋白的相对表达量,
和模型组大鼠灌胃生理盐水,每天 1 次,连续给药 8
以p-STAT5与STAT5的灰度值比值(p-STAT5/STAT5)评
[10]
周 。给药结束后,对各组大鼠的肾阳虚症候进行评分
价STAT5蛋白的磷酸化水平。
并再次称定其体质量(记为W2 )。
2.8 统计学方法
2.3 大鼠血清中BUN、SCR、T、COR水平测定
应用SPSS 20.0软件对数据进行统计分析。计量资
取材前,大鼠禁食不禁水12 h。末次给药1 h后,取
料(符合正态分布)以x±s表示,多组间比较采用单因素
大鼠眼眶静脉丛血,于 4 ℃下静置 4 h 后,以 3 500 r/min
离心 10 min,取上清液,用全自动生化分析仪测定血清 方差分析,组间两两比较采用LSD-t检验。检验水准α=
中 BUN、SCR 水平;严格按照 ELISA 试剂盒说明书方法 0.05。
操作,检测血清中T、COR水平。 3 结果
2.4 大鼠肾组织病理学检查 3.1 大鼠体质量变化及肾阳虚症候评分
取血后,大鼠颈椎脱臼处死,取肾组织适量,用中性 盐炙杜仲对大鼠体质量及肾阳虚症候评分的影响
甲醛固定后,浸蜡、切片(厚度5 μm),常规HE染色后,使 见表 2。由表 2 可见,造模前,各组大鼠体质量比较,差
用倒置显微镜观察其肾组织病理学变化。 异均无统计学意义(P>0.05)。给药结束后,模型组大
2.5 大鼠肾组织中SOD活性、MDA水平检测 鼠的体质量较正常对照组显著降低(P<0.05),肾阳虚
取大鼠肾组织适量,严格按照试剂盒说明书方法操 症候评分显著升高(P<0.05);盐炙杜仲各剂量组和阳
作,以WST-8法检测各组大鼠肾组织中SOD活性,显色 性对照组大鼠的体质量均较模型组显著升高(P<
法检测肾组织中MDA水平。 0.05),肾阳虚症候评分均显著降低(P<0.05),且盐炙杜
2.6 大鼠肾组织中HIF-1α、STAT5 mRNA表达检测
仲的上述作用有剂量依赖性(P<0.05)。
取大鼠肾组织适量,提取总 RNA 后,逆转录成
表2 盐炙杜仲对大鼠体质量及肾阳虚症候评分的影响
cDNA,采用荧光定量 PCR 法检测其 HIF-1α、STAT5
(x±±s,n=15)
mRNA 的表达水平。PCR 反应体系(20 μL)包含 cDNA
组别 W1/g W2/g 肾阳虚症候评分/分
模版2 μL,PCR Master Mix 10 μL,上、下游引物各1 μL,
正常对照组 190.64±6.76 387.09±6.09 0
用无菌水补足 20 μL。反应条件如下:94 ℃预变性 3 模型组 193.66±5.17 263.14±6.73 a 3.46±0.26 a
min;94 ℃变性 30 s,55 ℃退火 30 s,72 ℃延伸 1 min,共 盐炙杜仲低剂量组 186.38±5.09 313.38±5.48 b 2.94±0.11 b
盐炙杜仲中剂量组 196.17±6.33 336.19±4.22 bc 2.48±0.24 bc
30个循环。引物由赛默飞世尔科技有限公司设计、合成,
盐炙杜仲高剂量组 192.60±5.83 351.70±5.36 bcd 2.13±0.17 bcd
其具体序列和扩增产物长度见表1。以β-肌动蛋白(β-ac- 阳性对照组 197.53±6.04 353.78±5.18 b 2.08±0.26 b
tin)为内参,采用 2 -ΔΔCt 法计算 HIF-1α、STAT5 mRNA 的 a:与正常对照组比较,P<0.05;b:与模型组比较,P<0.05;c:与盐
相对表达量。 炙杜仲低剂量组比较,P<0.05;d:与盐炙杜仲中剂量组比较,P<0.05
·1462 · China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 12 中国药房 2022年第33卷第12期