Page 36 - 《中国药房》2022年12期
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2.3 ARC对LPS刺激的NP-69细胞迁移影响的检测 Western blot 法检测细胞中 ZO-1、BD3、JAK1、STAT3 蛋
取对数生长期的 NP-69 细胞,制成细胞悬液,计数 白的表达情况:于各组细胞中加入细胞裂解液(含 1%
并调整细胞密度至 4×10 个/mL,接种于 6 孔培养板中, 蛋白酶抑制剂的裂解液)100 μL,冰上裂解 5 min 后,以
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每孔 2 mL。同条件培养至细胞铺满孔板底部。将细胞 14 000 r/min离心5 min,取上清液采用BCA法检测细胞
[11]
分为正常组、LPS 组(1.0 μg/mL )和不同浓度(0.01、 总蛋白浓度后进行高温变性。取变性蛋白 30 μg 进行
0.1、1.0 μmol/L,浓度参考“2.1”项下结果设置)ARC 组, 10%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(分离胶电
每组设置 3 个复孔。ARC 组细胞用含相应浓度药物的 压为70 V,浓缩胶电压为110 V,电泳时间为90 min),然
完全培养基培养24 h,正常组和LPS组用完全培养基培 后转移到聚偏二氟乙烯膜(电流为200 mA;转膜时间根
养 24 h;随后,ARC 组和 LPS 组细胞用相应浓度的 LPS 据蛋白分子量决定,一般 1 kDa 蛋白转膜 1 min)上,用
刺激24 h。用无菌枪头在皿底作等宽的直线划痕,并用 5%脱脂奶粉于室温摇床上封闭 2 h,加入相应一抗
无菌PBS清洗3次。分别在刺激0、24 h时于倒置显微镜 (目的蛋白的稀释比例均为 1 ∶ 500,β-actin 的稀释比例
下观察、拍照并采集图片,采用Image J V1.8.0软件分析 为 1∶2 000),4 ℃孵育过夜;用TBST缓冲液洗膜5 min×4
划痕宽度并按“2.2”项下方法计算细胞迁移率。 次,加入二抗(稀释比例为1∶2 000),室温下摇床孵育2 h;
2.4 ARC 对 LPS 刺 激 的 NP-69 细 胞 上 清 液 中 NO、 用 TBST 缓冲液洗膜 5 min×4 次,以 ECL 显色后于凝胶
TNF-α、IL-6、IL-1β水平影响的检测 成像系统上成像并拍照,利用 Image J V1.8.0 软件进行
取对数生长期的 NP-69 细胞,制成细胞悬液,计数 图像灰度值处理,以目的蛋白与内参蛋白(β-actin)的灰
并调整细胞密度至 4×10 个/mL,接种于 6 孔培养板中, 度值比值作为前者的相对表达量。
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每孔2 mL。将细胞分为正常组、LPS组(1.0 μg/mL )和 2.7 统计学方法
[11]
不同浓度(0.1、1.0 μmol/L,浓度参考“2.1”项下结果设 分别采用 SPSS 23.0、Graphpad Prism 8.0 软件进行
置)ARC 组,每组设置 6 个复孔。ARC 组细胞用含相应 统计分析、绘图。数据以 x±s表示,多组间比较采用单
浓度药物的完全培养基培养24 h,正常组和LPS组用完 因素方差分析,组间两两比较采用 LSD-t检验(方差齐)
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全培养基培养 24 h;随后,ARC 组和 LPS 组用相应浓度 或Tamhane’s T 分析(方差不齐)。检验水准α=0.05。
的LPS刺激24 h。收集各组细胞上清液,检测其中NO、 3 结果
TNF-α、IL-6、IL-1β水平,严格按照各试剂盒说明书方法 3.1 ARC对NP-69细胞增殖率的影响
操作。 在 0.000 1、0.001、0.01、0.1、1.0、10 μmol/L 浓度下,
2.5 ARC 对 LPS 刺 激 的 NP-69 细 胞 中 ZO-1、BD3、 ARC对NP-69细胞均无明显毒性;ARC组细胞增殖率与
JAK1、STAT3 mRNA表达影响的检测 正常组比较,差异均无统计学意义(P>0.05)。结果见
同“2.4”项下方法进行细胞分组(每组设置 6 个复 图2。
孔)及干预,于 LPS 刺激 24 h 后收集各组细胞,采用 150
TRIZOL 法提取 RNA,采用 q-PCR 法检测细胞中 ZO-1、
BD3、JAK1、STAT3 mRNA 的表达水平:PCR 扩增体系
包括上/下游引物各0.6 μL、cDNA 1.0 μL、ddH2O 7.8 μL。 100
扩增程序为 95 ℃预变性 15 min;95 ℃变性 10 s,60 ℃ 细胞增殖率/%
退火 30 s,共 45 个循环。随后,进行溶解曲线分析,以 50
β-actin为内参,以正常组为参照,运用 2 -ΔΔCt 法确定各目
的基因 mRNA 的相对表达量。目的基因的引物信息如
表1所示(内参略)。 0
正常组 0.000 1 0.001 0.01 0.1 1.0 10
表1 目的基因的引物信息 μmol/L μmol/L μmol/L μmol/L μmol/L μmol/L
ARC组 ARC组 ARC组 ARC组 ARC组 ARC组
目的基因 引物序列(5′→3′) 引物长度/bp 产物长度/bp 图2 ARC对NP-69细胞增殖率影响的检测结果(x±±s,
ZO-1 上游引物:CAACATACAGTGACGCTTCACA 22 105
下游引物:CACTATTGACGTTTCCCCACTC 22 n=6)
BD3 上游引物:CTTCCTGTTTTTGGTGCCTGT 21 128 3.2 ARC对NP-69细胞迁移的影响
下游引物:TGCCGATCTGTTCCTCCTTTG 21
JAK1 上游引物:TCAGTGTGGCGTCATTCTCC 20 93 与正常组比较,经0.1、1.0 μmol/L ARC干预后,细胞
下游引物:CAGTGAGCTGGCATCAAGGA 20 的迁移率均显著升高(P<0.05)。结果见表2、图3。
STAT3 上游引物:CAGCAGCTTGACACACGGTA 20 150 表2 ARC对NP-69细胞迁移率影响的检测结果(x±±s,
下游引物:AAACACCAAAGTGGCATGTGA 21
n=3)
2.6 ARC 对 LPS 刺 激 的 NP-69 细 胞 中 ZO-1、BD3、
组别 细胞迁移率/% 组别 细胞迁移率/%
JAK1、STAT3蛋白表达影响的检测 正常组 28.85±0.77 0.1 μmol/L ARC 组 40.82±1.64 a
同“2.4”项下方法进行细胞分组(每组设置 6 个复 0.01 μmol/L ARC组 31.50±0.70 1.0 μmol/L ARC 组 41.86±0.33 a
孔)及干预,于 LPS 刺激 24 h 后收集各组细胞,采用 a:与正常组比较,P<0.05
·1438 · China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 12 中国药房 2022年第33卷第12期