Page 58 - 《中国药房》2022年7期
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物技术有限公司。 8 min,滴加山羊血清封闭液,室温孵育 30 min;倾去液
2 方法 体,分别滴加 Notch1、Jagged1、Hes1 抗体(稀释度均为
2.1 动物分组、造模与给药 1 ∶ 100),4 ℃孵育过夜;滴加生物素标记的羊抗兔二抗,
根据人鼠换算公式 S 大鼠/200 g=0.018×S 人/70 kg,复方丹 37 ℃孵育 20 min;DAB 显色 10 min,自来水冲洗,苏木
参片的人口服剂量为每天5.4 g,换算得大鼠灌胃剂量为 精复染 3 min,盐酸乙醇分化,自来水冲洗,经乙醇梯度
每天 0.5 g/kg,故复方丹参片中剂量按 0.5 g/kg 给药,复 脱水、二甲苯透明、中性树胶封片后,置于光学显微镜下
方丹参片低、高剂量分别按 0.25 g/kg(中剂量的 1/2)、1 观察。每组选取5张切片,采用Image-Pro Plus 6.0软件进
g/kg(中剂量的2倍)给药。辛伐他汀人口服剂量为每天 行图片分析,检测每个视野中的积分光密度(integrated
0.02 g,换算得大鼠灌胃剂量为每天 0.002 g/kg,故辛伐 optical density,IOD)值。
他汀按0.002 g/kg给药。60只雄性SD大鼠适应性饲养1 2.3.5 肾脏组织中 Notch1、Jagged1、Hes1 mRNA 表达
周后,按体质量均一原则分为正常组、模型组、辛伐他汀 水平检测 采用 qRT-PCR 法检测。根据 GenBank 数据
联合 DAPT 组和复方丹参片低、中、高剂量组,每组 10 库(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank)已 发 表 的 大
只。正常组大鼠常规饲养;其余5组大鼠按10 mL/kg腹 鼠 Notch1(登 录 号 NM001105721)、Jagged1(登 录 号
腔注射75%蛋黄乳液,禁食、自由饮水,16 h后饲喂高脂 NM019147.1)、Hes1(登录号NM024360.3)、甘油醛-3-磷
[7]
饲料,连续喂养4周造模 。辛伐他汀联合DAPT组在造 酸脱氢酶(GAPDH,登录号 NM017008.4)基因序列设计
[7]
模同时灌胃辛伐他汀 0.002 g/kg 和 DAPT 0.012 g/kg , 特异性引物,采用DNAstar软件包中的PrimerSelect程序
复方丹参片低、中、高剂量组在造模同时分别灌胃复方 设计,并由武汉赛维尔生物科技有限公司合成,PCR 引
丹参片0.25、0.5、1 g/kg,正常组、模型组灌胃等体积蒸馏 物序列及产物长度见表 1。然后取肾脏组织 100 mg,加
水,每日1次,连续4周。 入 1 mL TriQuick 试剂充分研磨匀浆后提取总 RNA,检
2.2 样本采集 测 RNA 浓度及纯度。在 20 μL 反应体系内合成 cDNA,
末次给药 24 h 后,各组大鼠称体质量后腹腔注射 1 以2 μL cDNA为模板,加入靶基因上下游引物进行PCR
g/kg 氨基甲酸乙酯麻醉,腹主动脉取血,以 3 000 r/min 扩增。反应结束后,根据扩增曲线及溶解曲线判断PCR
离心10 min,取上层血清于-80 ℃储存。然后解剖取肾 反应特异性,所得结果以 GAPDH 为内参、以 2 -ΔΔCt 法计
脏,去除肾脏周围结缔组织,生理盐水洗涤,滤纸吸尽脏 算目的基因的mRNA表达水平。
器表面液体后用电子天平称量并记录。再将肾脏组织 表1 PCR引物序列及产物长度
一分为二,其中一份用4%多聚甲醛固定,另一份用液氮 基因 引物序列 产物长度/bp
速冻后于-80 ℃储存。 Notch1 上游:5′-CGCCCGTGGATTCATCTGTA-3′ 267
下游:5′-GGGCATAGACAGCGGTAGAAAG-3′
2.3 指标检测 Jagged1 上游:5′-GAGACCTCCTCGGGCTTTGA-3′ 144
2.3.1 血清生化指标检测 按试剂盒说明书,采用生化 下游:5′-GCACACGCACTTGAATCCAT-3′
Hes1 上游:5′-CAAGCTGGAGAAGGCAGACAT-3′ 143
法检测大鼠血清中TC、TG、Cr、BUN水平。
下游:5′-CCTCGTTCATGCACTCGCTG-3′
2.3.2 肾脏系数计算 计算大鼠肾脏系数(肾脏系数= GAPDH 上游:5′-CTGGAGAAACCTGCCAAGTATG-3′ 138
肾脏质量/体质量),用以评价肾脏病变程度。若肾脏系 下游:5′-GGTGGAAGAATGGGAGTTGCT-3′
数明显升高,则提示肾脏存在纤维化病变。 2.4 统计学处理
2.3.3 肾脏组织病理形态学观察 取4%多聚甲醛固定 采用 SPSS 22.0 软件进行统计分析。实验结果满
的大鼠肾脏组织,经乙醇梯度脱水、二甲苯透明、石蜡包 足正态分布以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差
埋、4 μm切片等过程制作病理切片;切片经二甲苯脱蜡、 分析,进一步两两比较采用 LSD-t 检验,检验水准α=
苏木精-伊红(HE)染色,乙醇梯度脱水、二甲苯透明、中 0.05。
性树胶封片后,置于光学显微镜下观察。每组选取5张 3 结果
切片,根据肾皮质区肾小管损伤和肾小球硬化程度进行 3.1 大鼠血清中TC、TG、Cr、BUN水平检测结果
肾损伤评分:正常 0 分,轻度染色(≤25%)1 分,中度染 与正常组比较,模型组大鼠血清中 TC、TG、Cr、
色(>25%~50%)2 分,重度染色(>50%~75%)3 分, BUN水平显著升高(P<0.05);与模型组比较,辛伐他汀
极重度染色(>75%)4分。 联合 DAPT 组和复方丹参片低、中、高剂量组大鼠血清
2.3.4 肾脏组织中Notch1、Jagged1、Hes1蛋白表达水平 中 TC、TG、Cr、BUN 水平均显著降低(P<0.05);与辛伐
检测 采用免疫组化法检测。石蜡切片经二甲苯脱蜡、 他汀联合 DAPT 组比较,复方丹参片低、中剂量组大鼠
脱水后,H2O2封闭,PBS 清洗,柠檬酸盐缓冲液热修复 血清中 TC、TG、Cr、BUN 水平均显著升高(P<0.05);与
·820 · China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 7 中国药房 2022年第33卷第7期