Page 98 - 《中国药房》2022年4期
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对数生长期的乳腺癌干细胞,用SFM重悬并制成密度为
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        3×10 mL 的单细胞悬液,按每孔 1 800 μL 接种于 6 孔
                 -1
        板中。培养 12 h 后,将细胞分为空白对照组和纳米雄
        黄、水飞雄黄不同质量浓度组(均为2.5、10 mg/L,浓度设
        置参考前期 Western blot 预实验结果),每组设置 3 个复
        孔。空白对照组加入PBS 200 µL,各给药组加入相应质
        量浓度的药液 200 μL。培养 24 h 后,收集并裂解细胞,                           A.血清培养3 d              B.无血清培养1 d
        提取总蛋白。采用 BCA 法检测蛋白浓度,加入上样缓
        冲液并煮沸使蛋白变性。根据蛋白浓度,计算电泳上样
        量。使用5%的浓缩胶和10%的分离胶进行十二烷基硫
        酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,电泳结束后将蛋白转移至
        聚偏氟乙烯膜上。用5%脱脂奶粉封闭2 h,加入上皮钙
        黏着蛋白、波形蛋白、GAPDH 一抗(稀释比例均为 1 ∶
                                                                  C.无血清培养3 d               D.无血清培养7 d
        1 000)中,4 ℃孵育过夜;用 PBST 洗膜 3 次,每次 10
        min,随后加入相应二抗(稀释比例为 1 ∶ 3 000),孵育 2
        h;再用PBST洗膜3次,每次10 min,最后加入ECL化学
        发光液反应 5 min,使用凝胶成像系统进行显影。采用
        Image J 1.8.0软件,以目标蛋白与内参GAPDH的灰度值
        比值表示目标蛋白的表达水平。实验重复3次。
        2.9  统计学分析                                                E.无血清培养14 d             F.无血清培养21 d
            采用 SPSS 20.0 软件对数据进行统计分析,采用                     图 1  MCF-7 亲本细胞及其干细胞形态观察的显微图
        Graphpad Prism 8.0 软件作图。计量资料满足正态分布                       (×200)
        以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,进一步
                                                            表 1   各组 MCF-7 亲本细胞及其干细胞存活率比较
        两两比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
                                                                 (x±±s,n=3,%%)
        3 结果
                                                             组别         MCF-7亲  乳腺癌  组别         MCF-7亲  乳腺癌
        3.1  细胞形态及生长方式观察结果                                              本细胞    干细胞              本细胞    干细胞
                                                                                                    a
            当使用 SSM 培养,MCF-7 亲本细胞呈类似多边形                      空白对照组     99.10±3.61 98.97±2.13  阿霉素1 mg/L组  61.83±2.82 69.43±2.79 a
                                                             水飞雄黄1 mg/L组 85.77±2.80 93.60±1.20  纳米雄黄1 mg/L组 80.40±3.13 91.40±2.00
                                                                                                    ab
                                                                            a
        单层贴壁生长。而使用 SFM 培养,部分 MCF-7 亲本细                       水飞雄黄5 mg/L组 73.77±1.70 80.60±1.82 a  纳米雄黄5 mg/L组 65.73±2.25 74.67±1.49 ab
                                                                                                    ab
                                                                            a
        胞可于培养1~3 d后形成若干体积、形态不等的细胞悬                           水飞雄黄10 mg/L组 65.20±3.53 72.67±1.76 a  纳米雄黄10 mg/L组 59.93±3.12 65.23±1.31 ab
                                                                            a
                                                                                                    ab
                                                                            a
                                                                                                    ab
        浮球,且培养液呈悬浮状态,细胞间连接较松散;培养                             水飞雄黄40 mg/L组 48.23±4.10 54.37±1.83 a  纳米雄黄40 mg/L组 41.63±3.24 47.30±1.07 ab
                                                                            a
                                                                                                    ab
                                                             水飞雄黄60 mg/L组 31.13±1.54 42.87±1.84 a  纳米雄黄60 mg/L组 27.70±1.56 37.80±1.53 ab
        5~7 d 后悬浮球体积逐渐增大,数量增多,球内细胞结                          水飞雄黄80 mg/L组 23.80±2.37 33.37±2.45 a  纳米雄黄80 mg/L组 15.63±1.51 24.30±2.51 ab
                                                                            a
                                                                                                    ab
        合紧密,折光性强。当7 d后进行传代,细胞可继续呈悬                             a:与空白对照组比较,P<0.01;b:与相同质量浓度的水飞雄黄组
        浮球状生长,表明在连续的无血清培养条件下,部分                             比较,P<0.01
        MCF-7 亲本细胞仍能存活并增殖形成具有自我更新能
                                                            浮球体积缩小;与相同质量浓度的水飞雄黄组比较,纳
        力的肿瘤干细胞悬浮球。结果见图1。
                                                            米雄黄组对细胞悬浮球形成能力的抑制作用更强(P<
        3.2  纳米雄黄对 MCF-7 亲本细胞及其干细胞增殖的
                                                            0.01)。结果见表2、图2。
        影响
                                                            表2   各组乳腺癌干细胞形成的多细胞悬浮球数量比较
            与空白对照组比较,水飞雄黄、纳米雄黄各给药组
                                                                 (x±±s,n=3,个)
        MCF-7亲本细胞及其干细胞(两者1 mg/L组乳腺癌干细
                                                             组别           多细胞悬浮球数量   组别          多细胞悬浮球数量
        胞除外)的存活率均显著降低(P<0.01),且有随药物质                         空白对照组         182.75±3.27  阿霉素1 mg/L组  30.25±1.92 a
        量浓度增加而降低的趋势;与相同质量浓度的水飞雄黄                             水飞雄黄1 mg/L组   121.75±2.86 a  纳米雄黄1 mg/L组  91.75±2.38 ab
        组比较,纳米雄黄 5~80 mg/L 组 MCF-7 亲本细胞及其                    水飞雄黄2.5 mg/L组  96.25±2.38 a  纳米雄黄2.5 mg/L组  79.52±2.96 ab
                                                             水飞雄黄5 mg/L组   44.51±2.92 a  纳米雄黄5 mg/L组  17.54±1.86 ab
        干细胞的存活率更低(P<0.01)。结果见表1。                             水飞雄黄10 mg/L组  16.51±1.12 a  纳米雄黄10 mg/L组  7.25±2.83 ab
        3.3  纳米雄黄对乳腺癌干细胞悬浮球形成及分化能力                             a:与空白对照组比较,P<0.01;b:与相同质量浓度的水飞雄黄组
        的影响                                                 比较,P<0.01
            与空白对照组比较,水飞雄黄、纳米雄黄各给药组                              对各组悬浮球细胞进行诱导分化,培养 24 h 后,可
        形成的多细胞悬浮球数量均显著减少(P<0.01),且悬                         见细胞开始贴壁,形态呈类似多边形,与 SSM 条件下培
        ·476 ·  China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 4                                    中国药房    2022年第33卷第4期
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