Page 27 - 《中国药房》2021年24期
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完全培养基”),在37 ℃、5%CO2细胞培养箱中无菌培养 净,记录各孔内形成的克隆数[细胞数大于 50 个的集落
(培养条件下同),每隔 24 h 换液 1 次,待细胞生长至 (直径大于 0.3~1.0 mm)计为 1 个克隆]并拍照,按下式
70%左右,用 0.25%胰蛋白酶-EDTA 消化液消化(消化 计算克隆形成率:克隆形成率(%)=克隆数/接种细胞
方法下同)传代,待细胞贴壁后,取对数生长期的细胞进 数×100%。
行后续实验。 2.7 细胞中Bcl-2、Bax、caspase-3 mRNA表达的检测
2.3 细胞存活率的检测和澳洲茄边碱作用浓度及时间 采用实时荧光定量 PCR 法进行检测。取对数生长
的筛选 期的 HepG2 细胞,按“2.4”项下方法接种、分组、给药。
采用 MTT 法检测细胞存活率。取对数生长期的 培养 24 h 后,弃去上清液,用 PBS 洗涤 2 次,每孔加入
HepG2 细胞,消化后计数,分别以每孔 10 000 个接种到 Trizol 试剂 1 mL,提取细胞总 RNA,使用超微量分光光
96 孔板中,每孔加入 DMEM 完全培养基 100 μL,培养 度计测定 RNA 浓度后,按试剂盒说明书方法将总 RNA
24 h 后,弃去培养基,分别加入含澳洲茄边碱 0(空白 反转录成 cDNA。以上述 cDNA 为模板,按试剂盒说明
组)、1、2、4、6、8、10、12 μmol/L 的 DMEM 完全培养基 书方法进行扩增。反应体系(共 10 µL)如下:2×SYBR
100 μL,每个浓度设置 3 个复孔。分别培养 24、48 h 后, Green Pro Taq HS Premix(ROX plus)5 μL,cDNA 模板 1
每孔加入5 mg/mL的MTT试剂10 μL,培养4 h后,弃去 μL,上、下游引物各0.2 μL,RNase-free水3.6 μL。反应程
培养基,每孔加入 DMSO 150 μL,振荡 5 min,使用酶标 序采用两步法,具体条件如下:95 ℃预变性 30 s;95 ℃
仪于570 nm波长处检测各孔的吸光度(A),按下式计算 变性 5 s,60 ℃退火与延伸 30 s,40 个循环。使用 2 -ΔΔCt
细胞存活率:细胞存活率(%)=实验组 A 值/空白组 A 法以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)为内参计算细胞中
值×100%。实验重复 3 次,取平均值。使用 GraphPad Bcl-2、Bcl-2 相关 X 蛋白(Bax)、caspase-3 mRNA 的表达
Prism 7软件计算半数抑制浓度,以筛选后续实验的药物 量。PCR 引物均委托美国 Thermo Fisher Scientific 公司
作用浓度和作用时间。 设计、合成,引物序列及产物长度见表1。
2.4 分组与给药 表1 Bcl-2等基因的PCR引物序列及产物长度
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取对数生长期的 HepG2 细胞,以每孔 2×10 个接种 Tab 1 Sequence and product length of PCR primers
到6孔板中,每孔加入DMEM完全培养基2 mL,待细胞 such as Bcl-2
贴壁后,弃去培养基,分别加入含澳洲茄边碱 0(空白 基因名称 引物序列(5′→3′) 产物长度,bp
组)、4、6、8 μmol/L(浓度根据“2.3”项下结果设置)的 Bcl-2 上游:TGCGGCCTCTGTTTGATTTC 57
下游:GGGCCAAACTGAGCAGAGTCT
DMEM完全培养基2 mL,每个浓度设置3个复孔。
Bax 上游:TCAGGATGCGTCCACCAAGAAG 103
2.5 细胞凋亡率的检测 下游:TGTGTCCACGGCGGCAATCATC
采用Annexin Ⅴ-FITC/PI双染色法结合流式细胞仪 caspase-3 上游:CTGGACTGTGGCATTGAGAC 159
下游:GCAAAGGGACTGGATGAACC
进行检测。取对数生长期的 HepG2 细胞,按“2.4”项下 GAPDH 上游:AAGCCTGCCGGTGACTAAC 150
方法接种、分组、给药。培养 24 h 后,消化并收集细胞, 下游:GCGCCCAATACGACCAAATC
用预冷的磷酸盐缓冲液(PBS,pH 7.2)离心(100×g,5 2.8 细胞中 p-AMPKα、AMPKα、Bcl-2、cleaved cas-
min)洗涤 2 次,弃去上清液;用水稀释 5×binding buffer pase-3蛋白表达的检测
得 1×binding buffer,取 1×binding buffer 500 μL 重悬细 采用 Western blot 法进行检测。取对数生长期的
胞,加入 Annexin Ⅴ-FITC 试剂 5 μL 和 PI 试剂 10 μL,轻 HepG2 细胞,按“2.4”项下方法接种、分组、给药。培养
柔涡旋混匀后,室温避光孵育5 min,使用流式细胞仪分 24 h后,收集细胞,提取总蛋白,用BCA蛋白定量试剂盒
析细胞凋亡情况,记录细胞凋亡率(含早期凋亡率和晚 测定蛋白浓度后,煮沸 5 min 使其变性。取变性蛋白 30
期凋亡率)。实验重复3次。 μg 进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,用半干
2.6 细胞克隆形成率的检测 转印法转移到 PVDF 膜上,用 TBST 缓冲液(含 0.5%吐
采用结晶紫染色法进行检测。取对数生长期的 温 20,下同)洗涤 3 次后,用 5%脱脂牛奶室温封闭 1 h;
HepG2 细胞,以每孔 500 个接种到 6 孔板中,每孔加入 加入 p-AMPKα(T172)(稀释比例 1 ∶ 1 000)、AMPKα(稀
DMEM完全培养基2 mL。培养次日,弃去培养基,分别 释比例 1 ∶ 1 000)、Bcl-2(稀释比例 1 ∶ 1 000)、caspase-3
加入含澳洲茄边碱0(空白组)、6 μmol/L(浓度根据“2.5” (稀释比例1∶1 000)、cleaved caspase-3(稀释比例1∶1 000)、
项下结果设置)的DMEM完全培养基2 mL,每个浓度设 β-actin(稀释比例1 ∶ 5 000)一抗,4 ℃孵育过夜;用TBST
置 3 个复孔。培养 10 d 后,用 4%多聚甲醛固定液固定 缓冲液洗涤 3 次,加入相应二抗(稀释比例 1 ∶ 3 000),室
30 min,以结晶紫染色液染色30 min,再用ddH2O冲洗干 温孵育1 h;用TBST缓冲液洗涤3次,将显色液A液和B
中国药房 2021年第32卷第24期 China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 24 ·2965 ·