Page 60 - 《中国药房》2021年23期
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试剂盒、天冬氨酸转氨酶(AST)检测试剂盒、兔抗鼠p62 r/min 离心 5 min,收集上层血清,备用。将大鼠处死,摘
多克隆抗体(南京建成生物工程研究所,批号分别为 取其肝组织并称定质量,然后于冰盒上取一小块肝组织
20180103、20171220、20171216、20200113),PrimeScript 并置于4%甲醛溶液中固定24 h,用于病理组织学检查;
RT Reagent Kit反转录试剂盒[宝生物工程(大连)有限公 将一部分肝组织置于液氮中快速冻存,用于Western blot
司,批号AJ10935A],细胞核蛋白与细胞浆蛋白抽提试剂 和PCR实验相关指标检测;剩余肝组织直接用于Hyp水
盒、兔抗鼠Akt多克隆抗体、兔抗鼠磷酸化Akt(p-Akt)多 平测定。
克隆抗体(上海碧云天生物技术有限公司,批号分别为 2.3 肝指数测定
052720200827、033018200921、033018200921),TRIzol 根据大鼠体质量和肝组织质量计算大鼠肝指数:肝
试剂(美国Ambion公司,批号229009),兔抗鼠微管相关 指数(%)=肝组织质量/体质量×100%。
蛋白 1 轻链 3(LC3)多克隆抗体(美国 Abcam 公司,批号 2.4 血清中AST、ALT和HA水平测定
GR219724-1),兔抗鼠α-SMA 多克隆抗体、兔抗鼠 PI3K 取“2.2”项下血清适量,分别按相应试剂盒说明书方
多克隆抗体、兔抗鼠磷酸化 PI3K(p-PI3K)多克隆抗体、 法操作,测定大鼠血清中AST、ALT和HA水平。
兔 抗 鼠 mTOR 多 克 隆 抗 体 、兔 抗 鼠 磷 酸 化 TOR 2.5 肝组织中Hyp水平测定
(p-mTOR)多克隆抗体、兔抗鼠 3-磷酸甘油醛脱氢酶 取“2.2”项下肝组织,参照文献[14]方法进行处理
(GAPDH)多克隆抗体(美国Cell Signaling公司,批号分 后,按相应试剂盒说明书方法操作,测定大鼠肝组织中
别为19245、4257、4228、2983、2974、2118S),生物素标记 Hyp水平。
的山羊抗兔免疫球蛋白 G(IgG)二抗、ECL 超敏发光检 2.6 肝组织中胶原纤维蛋白表达情况观察
测试剂盒(北京康为世纪生物科技有限公司,批号分别 取“2.2”项下于甲醛溶液中固定24 h后的肝组织,常
为00051405、40532),欧丽薇兰橄榄油(益海嘉里食品营 规制备石蜡切片(厚度约3 μm),经二甲苯及梯度乙醇脱
销有限公司,批号 F20160814);PCR 实验中引物均由生 蜡至水后,按照 VG 染色试剂盒说明书方法对切片进行
工生物工程(上海)股份有限公司合成;其余试剂均为分 染色(VG阳性染色呈鲜红色)。将切片置于倒置显微镜
析纯,水为自制双蒸水。 下观察、拍照,利用 Image-Pro Plus 6.0 软件计算胶原纤
1.3 动物 维蛋白阳性染色面积和染色总面积,并计算胶原纤维蛋
本研究所用动物为 SPF 级雄性 Wistar 大鼠,共 48 白阳性染色面积百分比(胶原纤维蛋白阳性染色面积/染
只,5~6 周龄,体质量为(180±10)g,由齐齐哈尔医学 色总面积×100%)。结果处理时,以正常对照组数据为
院动物实验中心提供,动物生产许可证号为SCXK(黑)- 标准(100%)计算其余各组结果的相对值。
2016-001。全部大鼠饲养于 SPF 级动物实验室中,实验 2.7 肝组织中α-SMA、LC3-ⅡⅡ、p62 的蛋白表达水平和
室温度为 20~25 ℃,12 h 照明/12 h 黑暗交替。大鼠饲 PI3K、Akt、mTOR的蛋白磷酸化水平测定
养期间常规进食、饮水,适应性饲养1周后进行正式实验。 采用Western blot法进行测定。取“2.2”项下冻存的
2 方法 肝组织,于冰上常规解冻后,按细胞核蛋白与细胞浆蛋
2.1 分组、造模与给药 白抽提试剂盒说明书方法提取肝组织中的总蛋白。采
将48只大鼠按随机数字表法随机分为正常对照组, 用BCA法测定总蛋白浓度后,煮沸5 min使其变性。取
模型组,白屈菜碱低、中、高剂量组(0.125、0.25、0.50 变性后的蛋白进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电
mg/kg,剂量根据前期预实验结果设定)和阳性对照组 泳分离(浓缩胶电压75 V、电泳时间30 min,分离胶电压
[12]
(护肝片,0.42 g/kg ),每组 8 只。除正常对照组外,其 110 V、电泳时间 90 min),然后电转至硝酸纤维素膜上
余各组大鼠均采用腹腔注射CCl4-橄榄油溶液诱导建立 (电流 350 mA,转膜时间 2 h),加入含 5%脱脂奶粉的
肝纤维化模型(造模前禁食 12 h)。本研究所用的造模 TBST 溶液,于 4 ℃封闭过夜;分别加入α-SMA、LC3、
方法是在文献[13]的基础上加以改进后得到,具体为:造 p62、p-PI3K、PI3K、p-Akt、Akt、p-mTOR、mTOR、GAPGH
模大鼠首次按 8 mL/kg 的剂量腹腔注射 50%CCl4-橄榄 一抗(稀释比例均为1∶1 000),于37 ℃孵育4 h;以TBST
油溶液,之后均继续以5 mL/kg的剂量注射,每3天1次, 洗膜3次、每次10 min,然后加入生物素标记的IgG二抗
持续 8 周。于造模第 5 周开始,各给药组大鼠灌胃相应 (稀释比例 1 ∶ 1 000),于 37 ℃孵育 2 h;以 TBST 洗膜 3
药物(均以水溶解),正常对照组和模型组大鼠灌胃水, 次、每次10 min,然后加入ECL荧光检测剂,采用一体式
灌胃体积均为1 mL,每天1次,连续10周。 化学发光图像分析系统测定各蛋白条带的灰度值。以
2.2 样本采集与处理 α-SMA、LC3-Ⅱ、p62与内参GAPDH的蛋白条带灰度值
于第 14 周末次灌胃后,大鼠禁食不禁水 24 h,称其 的比值表示这 3 种蛋白的表达水平,以 p-PI3K 与 PI3K、
体质量后以乙醚麻醉,于股动脉取血。将血液以 3 000 p-Akt 与 Akt、p-mTOR 与 mTOR 的蛋白条带灰度值的比
·2870 · China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 23 中国药房 2021年第32卷第23期