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程(上海)股份有限公司合成(序列和产物长度信息见表 型)的完全培养基,给药组加入含相应药物和 1 mmol/L
1);其余试剂为实验室常用规格,水为纯净水。 游离脂肪酸的完全培养基,然后培养24 h。
表1 PCR引物序列和产物长度 2.4 细胞中脂质蓄积情况观察和脂质水平测定
Tab 1 Primer sequence and product length of PCR 取对数生长期的细胞,按 2×10 个/孔接种于 6 孔板
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基因名称 引物序列(5′→3′) 产物长度,bp 中,按“2.3”项下方法分组、造模与给药,每组设 3 个复
PPARα 上游:TGGTGAGCATTTTGGTTTC 141 孔。细胞培养结束后,以 PBS 洗涤 2~3 次,加入固定液
下游:TGCCTGATTTCCTTCCC
CPT-1 上游:GAGCACGGCAAGATGAG 100 固定 20~30 min;弃去固定液,水洗后加入 60%异丙醇
下游:GCAGCGATGTCTGGAAG 浸染 5 min;弃去异丙醇,加入油红 O 染色液(临用时配
SIRT1 上游:CCATACCCCATGAAGTGC 57
下游:GCAGATGAGGCAAAGGTT 制)浸染 10~20 min;弃去染色液,水洗直至无多余染
PGC-1α 上游:CAGTAAATCTGCGGGATGA 150 液,再加入苏木素染色液复染 1~2 min;弃去苏木素染
下游:AAAATTGCTTGCGTCCAC
SREBP-1c 上游:CAAGTGGTGGGCCTCTCT 132 色液,水洗,取部分于显微镜下观察细胞中脂质蓄积情
下游:CTGGGCAGGGGTCTCTC 况,并拍照记录。观察结束后,每孔加入异丙醇200 μL,
FAS 上游:CGAGCTGCACCATCATCC 115 振摇15 min以充分洗脱;将洗脱液依次加入96孔板中,
下游:AAGGCATTGGGGTTGGC
GAPDH 上游:CCTTCCGTGTCCCCACT 100 采用酶标仪于 490 nm 波长下检测 A 值(A 值越大,则表
下游:GCCTGCTTCACCACCTTC
示细胞中脂质水平越高)。
1.3 细胞株
2.5 细胞中TG含量的测定
本研究所用人肝癌HepG2细胞株,受赠于广州中医 取对数生长期细胞,按2×10 个/孔接种于6孔板中,
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药大学中药学院药剂课题组。
按“2.3”项下方法分组、造模与给药,每组设 3 个复孔。
2 方法 细胞培养结束后,采用超声波细胞破碎仪破碎细胞,然
2.1 细胞培养 后收集细胞均浆液,采用BCA法测定细胞中蛋白浓度,
将 HepG2 细胞复苏后,以含 10%FBS 和 1%青链霉 并按照TG试剂盒说明书相关方法检测细胞中TG含量。
素的 DMEM 培养基(以下简称“完全培养基”)于 37 ℃、 2.6 细胞中PPARα通路相关基因的mRNA表达水平的
5%CO2的恒温培养箱中培养。待细胞融合度达80%~ 检测
90%时,以胰酶消化传代,进行后续实验。 采用实时荧光定量 PCR 法进行检测。取对数生长
2.2 细胞存活率的检测 期细胞,按2×10 个/孔接种于6孔板中,按“2.3”项下方法
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取对数生长期的细胞,按 1.5×10 个/孔接种于 96 孔 分组、造模与给药,每组设3个复孔。细胞培养结束后,
板中,然后分为桑根酮 C 不同浓度组(2、4、8、16、32 采用 TRIzol 法提取各组细胞的总 RNA,然后根据试剂
μmol/L,浓度根据预实验结果设置),加入含相应药物的 盒说明书相关方法,将其逆转录为 cDNA。以 cDNA 为
完全培养基。另设不加药物只加细胞的对照组、不加细 模板,进行PCR扩增。反应体系为:cDNA模板2 μL,2×
胞和药物的调零孔,每组设6个复孔;培养24 h后,每孔 SYBR Green Pro Taq HS Premix 10 μL,上、下游引物各
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加入 MTT 试剂 20 μL,孵育 4 h,弃去上清液;每孔加入 0.5 μL,RNase free water 7 μL。反应条件为:95 ℃,30 s;
二甲基亚砜(DMSO)150 μL,振摇15 min,采用酶标仪于 95 ℃,5 s,60 ℃,30 s,共40个循环。以GADPH为内参,
490 nm 波长下检测各孔的吸光度(A),计算细胞存活 采 用 2 - Δ Δ Ct 法 计 算 PPAR α 、CPT-1、SREBP-1c、FAS、
率[细胞存活率=(A 实 验 组-A 调 零 孔)/(A 对 照 组-A 调 零 孔)× SIRT1、PGC-1α的mRNA表达水平。
100%]。 2.7 细胞中PPARα通路相关蛋白表达水平的检测
2.3 细胞分组、造模与给药 采用Western blot法进行检测。取对数生长期细胞,
取对数生长期细胞,按2 ×10 个/孔接种于6孔板中, 按2×10 个/孔接种于6孔板中,按“2.3”项下方法分组、造
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然后分为对照组、模型组、非诺贝特组(10 μmol/L,浓度 模与给药,每组设3个复孔。细胞培养结束后,弃去培养
参考文献[18]设置)和桑根酮 C 低、中、高浓度组(2、4、8 液,以 PBS 洗涤 2~3 次,加入适量 RIPA 裂解液提取总
μmol/L,浓度根据预实验结果设置)。参照文献[19]方 蛋白,并置于冰上充分裂解 30 min 后于 4 ℃条件下以
法,对照组加入含1%BSA的完全培养基,模型组加入含 12 000 r/min 离心 15 min;取上清液采用 BCA 法测定蛋
1 mmol/L 游离脂肪酸(将适量油酸和棕榈酸以含 1% 白浓度。蛋白经煮沸变性后,进行十二烷基硫酸钠-聚
BSA 的完全培养基溶解配制而成,以诱导脂质蓄积模 丙烯酰胺凝胶电泳;转膜,以5%脱脂奶粉封闭2 h;加入
·1870 · China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 15 中国药房 2021年第32卷第15期