Page 65 - 中国药房2021年11期
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min。收集细胞沉淀,加入含有 20%胎牛血清和 1%青-                      每孔300 μL,按“2.2”项下方法分组、造模、给药,每组设
        链霉素双抗的 DMEM 培养液,混匀后培养,传至第 2 代                      置复孔6个。细胞培养24 h后,按相应试剂盒说明书进行
        后用于后续研究。                                           染色处理后在荧光显微镜下观察,用Image J 6.0软件处
        2.2 Pue 对缺氧 PASMCs 中焦亡相关蛋白表达的影响                    理分析并计算焦亡阳性细胞比例:焦亡阳性细胞比例=
        考察                                                 焦亡阳性细胞数/细胞总数×100%(Hoechst 33342 染料
            采 用 Western blot 法 进 行 检 测 。 取 对 数 生 长 期       可将活细胞的细胞核染成蓝色,而PI染料只能将细胞膜
                           -1
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        PASMCs,按 3×10 mL 的密度接种于培养瓶内,每瓶 3                   破裂的焦亡细胞的细胞核染成红色)。实验重复4次。
        mL。实验设常氧组、缺氧组和缺氧+Pue 组(Pue 终浓度                     2.5 NLRP3过表达质粒构建合格性考察
        为 0.2 mmol/L,参考文献[15]并结合前期预实验结果设                       采 用 Western blot 法 进 行 检 测 。 取 对 数 生 长 期
        置),每组设复孔6个。常氧组和缺氧组细胞加入等体积                          PASMCs,按 3×10 mL 的密度接种至培养瓶内,每瓶 3
                                                                              -1
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        DMSO(体积分数为0.1%),缺氧+Pue组细胞按 1 μL/mL                 mL。试验设常氧+对照质粒组和常氧+过表达质粒组,
        加入相应药液(Pue 终浓度为 0.2 mmol/L)。随后,常氧                  每组设置复孔 6 个。细胞培养至融合度达 70%时,以
        组细胞于37 ℃、5%CO2条件下培养24 h,其余各组细胞                     X-treme 为转染载体对常氧+过表达质粒组细胞进行转
        均于 37 ℃、5%CO2、3%O2条件下培养 24 h 以建立缺氧                 染:首先,弃去瓶内培养液,将DMEM培养液(100 μL)分
        模型。取出细胞,用 pH 7.3 的磷酸盐缓冲液(PBS)冲洗                    别与 X-treme(7.5 μL)、对照质粒(3 mg)、NLRP3 过表达
        后匀浆,加入细胞裂解液适量,于冰上裂解;刮取细胞,                          质粒(3 mg)混合 5 min;然后,再将含 X-treme 的 DMEM
        收集裂解后的细胞液,于 4 ℃下以 13 500 r/min 离心 20               培养液分别与含对照质粒和 NLRP3 过表达质粒的
        min;取上清液,采用 BCA 法测定蛋白含量后,于 100 ℃                   DMEM培养液混合15 min;最后,加至含有DMEM培养
        下加热变性 5 min。取变性后蛋白样品适量,行十二烷                        液 2.8 mL 的培养瓶内转染 6 h,转染结束后,弃去培养
        基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离(浓缩胶电泳80 V,                        液,加入“2.1”项下含血清、青-链霉素双抗的 DMEM 培
        分离胶电泳120 V),随后以湿转法将蛋白转移至硝酸纤                        养液适量。细胞培养 24 h 后取出,按“2.2”项下 Western
        维素膜上,再以10%脱脂奶粉室温封闭1 h;然后分别加                        blot实验操作检测细胞中NLRP3蛋白的表达水平,并以
        入NLRP3、caspase-1、IL-1β、ASC、β-actin一抗(稀释比例          P<0.05(常氧+过表达质粒组与常氧+对照质粒组相比)
        分别为1 ∶ 1 000、1 ∶ 1 000、1 ∶ 1 000、1 ∶ 500、1 ∶ 2 000),4 ℃  表示此过表达质粒构建合格。实验重复4次。
        孵育过夜;次日用TBST溶液洗膜,加入相应二抗(NLRP3、                     2.6  NLRP3炎症小体过表达时Pue对缺氧PASMCs中
        caspase-1、IL-1β、ASC 一抗加入 HRP 标记的山羊抗兔               焦亡相关蛋白表达的影响考察
        IgG 二抗,稀释比例分别为 1 ∶ 4 000、1 ∶ 6 000、1 ∶ 8 000、          采 用 Western blot 法 进 行 检 测 。 取 对 数 生 长 期
        1 ∶ 8 000;β-actin一抗加入HRP标记的山羊抗大鼠二抗,                PASMCs,设常氧+对照质粒组、缺氧+对照质粒组、缺
        稀释比例为1 ∶ 4 000),室温孵育1 h;用TBST溶液洗膜,                 氧+过表达质粒组、缺氧+过表达质粒+Pue组,每组设置
        以ECL发光显影后,置于化学发光成像系统中成像。使                          复孔 6 个。细胞按“2.2”项下方法接种、造模、给药,按
        用Quantity One 6.0软件分析,以目标蛋白与内参条带的                 “2.5”项下方法转染并培养 24 h 后,再按“2.2”项下 Wes-
        灰度值的比值作为目标蛋白的表达水平。实验重复4次。                          tern blot 实验操作检测细胞中 NLRP3、caspase-1、IL-1β、
        2.3  Pue对缺氧PASMCs中LDH释放的影响考察                       ASC蛋白的表达水平。实验重复4次。
            采用 LDH 释放实验进行检测。取对数生长期                         2.7 NLRP3炎症小体过表达时Pue对缺氧PASMCs中
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        PASMCs,按 1×10 mL 的密度接种于 96 孔板中,每孔                  LDH释放的影响考察
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        150 μL,按“2.2”项下方法分组、造模、给药,每组设置复                        采用 LDH 释放实验进行检测。取对数生长期
        孔6个。细胞培养24 h后,按相应试剂盒说明书方法操                         PASMCs,按“2.3”项下方法接种,按“2.6”项下方法分组,
        作,使用酶标仪于490 nm波长处检测各孔吸光度并计算                        再按“2.2”项下方法造模、给药,每组设置复孔 6 个。细
        细胞中 LDH 的释放量:LDH 释放量(%)=(样品吸光                      胞按“2.5”项下方法转染并培养 24 h 后,再按“2.3”项下
        度-对照孔吸光度)/(细胞最大酶活性的吸光度-对照                          方法检测和计算细胞中LDH释放量。实验重复4次。
        孔吸光度)×100%。实验重复4次。                                 2.8 NLRP3炎症小体过表达时Pue对PASMCs中焦亡
        2.4  Pue 对缺氧 PASMCs 中焦亡阳性细胞比例的影响                   阳性细胞比例的影响考察
        考察                                                     采用Hoechst 33342/PI双染法进行检测。取对数生
            采用Hoechst 33342/PI双染法进行检测。取对数生                 长期 PASMCs,按“2.4”项下方法接种,按“2.6”项下方法
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        长期 PASMCs,按 2×10 mL 的密度接种于 24 孔板中,                 分组,再按“2.2”项下方法造模、给药,每组设置复孔 6
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        中国药房    2021年第32卷第11期                                             China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 11  ·1339 ·
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