Page 26 - 中国药房2021年11期
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1.2 主要药品与试剂 15 min,收集上层血清,备用。取血后,快速剖取大鼠肝
本研究所用主要药品与试剂有:4-羟基-苯并噁 组织,以生理盐水洗去其表面的血迹,以吸水纸吸干后,
唑-2-酮(广西医科大学药化合成实验室,纯度>99%), 于肝大叶相同地方切取约 1 cm 的肝组织,固定于 10%
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水飞蓟宾胶囊(天津天士力圣特制药有限公司,批号 甲醛溶液中,备用;剩余的肝组织分装到 1.5 mL 离心管
950701001,规格 35 mg),白蛋白(ALB)、总蛋白(TP)试 中,进行后续检测。
剂 盒(深 圳 迈 瑞 生 物 医 疗 有 限 公 司 ,批 号 分 别 为 2.3 大鼠血清中ALB、TP、GLB和FFA水平检测
140918006、140818007),游离脂肪酸(FFA)试剂盒(南京 取“2.2”项下血清样品,采用全自动生化检测仪进行
建成生物工程研究所,批号 20190826),TUNEL 细胞凋 分析,检测各组大鼠血清中肝功能指标(ALB、TP、GLB)
亡 检 测 试 剂 盒(碧 云 天 生 物 技 术 有 限 公 司 ,批 号 水平,并计算ALB/GLB比值。另外,参照相应试剂盒说
031819190506),RIPA 裂解液(北京索莱宝科技有限公 明书方法操作,测定各组大鼠血清中脂质代谢指标FFA
司,批号 20200903),PVDF 膜(美国 Millipore 公司,批号 水平。
R0JB89871),兔源 TLR4 多克隆抗体、鼠源 Bcl-2 单克隆 2.4 大鼠肝细胞凋亡情况观察
抗体、鼠源 Bax 单克隆抗体(美国 Proteintech 公司,批号 取“2.2”项下固定于 10%甲醛溶液中的肝组织,经
分 别 为 19811-1-AP、60178-1-Ig、60267-2-Ig),兔 源 常规石蜡包埋处理后,切片(4 µm)并贴附于防脱载玻片
MyD88 多克隆抗体、兔源磷酸化 NF-κB p65(p-NF-κB 上,待烘干后,依次置于二甲苯、无水乙醇、90%乙醇、
p65)多克隆抗体、兔源NF-κB p65多克隆抗体、兔源磷酸 70%乙醇中进行脱蜡、脱水;再将切片按TUNEL细胞凋
化IκBα(p-IκBα)多克隆抗体、兔源IκBα单克隆抗体、兔 亡检测试剂盒说明书方法操作后,置于显微镜下观察,
源 caspase-3 多克隆抗体、兔源β-actin 多克隆抗体(美国 切片中出现的棕褐色斑点即为凋亡细胞。
CST 公 司 ,批 号 分 别 为 4283S、3033S、8242S、2859T、 2.5 大鼠肝组织中TLR4/MyD88/NF-κB通路相关蛋白
4812S、9662S、4970S),荧光标记的山羊抗兔免疫球蛋白 和凋亡相关蛋白的表达水平或磷酸化检测
G(IgG)二抗(美国 Licor 公司,批号 D00804-07),荧光标 采用Western blot法进行检测。取“2.2”项下各组大
记 的 山 羊 抗 鼠 IgG 二 抗(美 国 Invitrogen 公 司 ,批 号 鼠肝组织适量,加入RIPA裂解液和液氮进行研磨,提取
Tl268740);其余试剂为实验室常用规格,水为纯净水。 肝组织中的蛋白质,然后于 4 °C 条件下以 12 000 r/min
1.3 动物与饲料 离心 20 min,取上清液,采用蛋白分析仪测定其蛋白浓
本研究所用动物为 SPF 级 SD 大鼠,雄性,体质量 度。蛋白经变性后,取适量进行十二烷基硫酸钠-聚丙
114~138 g,购自广西医科大学实验动物中心,动物生产 烯酰胺凝胶电泳,转膜;以TBST清洗5 min×3次,放入封
许可证号为SCXK(桂)2014-0002。大鼠分笼饲养,饲养 闭液中室温孵育 1 h;以 TBST 清洗 5 min×3 次,加入
房间温度为21~25 ℃、湿度为40%~60%、每日光照明 TLR4、MyD88、NF-κB p65、p-NF-κB p65、IκBα、p-IκBα、
暗交替,大鼠自由饮水和摄食。高脂饲料购自北京博爱 caspase-3、Bcl-2、Bax一抗(除Bax一抗稀释度为1∶6 000、
港生物技术有限公司,基础饲料购自北京科澳协力饲料 Bcl-2一抗稀释度为1∶2 000外,其余抗体的稀释度均为
有限公司。 1 ∶ 1 000),于 4 ℃条件下孵育过夜;次日以 TBST 清洗 5
2 方法 min×3次,加入相对应的二抗(稀释度均为1∶10 000),于
2.1 分组、造模与给药 室温在摇床上孵育1 h;再以TBST清洗5 min×3次,采用
大鼠适应性饲养一段时间后,随机分为正常对照组 Odyssey Clx型双色红外荧光成像仪进行扫描,并保留图
(10只)、造模组(50只),正常对照组大鼠给予基础饲料, 片。采用 Image J 2×软件对图片进行分析,以 p-NF-κB
造模组大鼠给予高脂饲料,持续喂养 8 周后,分别挑选 p65蛋白与NF-κB p65蛋白灰度值的比值、p-IκBα蛋白与
1、3 只大鼠进行肝组织病理学检查,当造模组大鼠出现 IκBα蛋白灰度值的比值分别表示 NF-κB p65 和 IκBα的
显著的肝细胞脂肪变性和脂肪空泡时,表明 NAFLD 造 磷酸化水平;以 Bcl-2 蛋白与 Bax 蛋白灰度值的比值表
[16]
模成功 。将造模成功的大鼠分为模型组、水飞蓟宾组 示凋亡水平;以 TLR4、MyD88、caspase-3 蛋白灰度值分
(阳性对照,26.25 mg/kg,剂量参考文献[15]设置)和4-羟 别 与 内 参(β-actin)蛋 白 灰 度 值 的 比 值 表 示 其 表 达
基-苯并噁唑-2-酮高、中、低剂量组(100、50、25 mg/kg,剂 水平。
[17]
量参考课题组前期研究结果设置 ),每组8只。各给药 2.6 统计学方法
组大鼠灌胃相应药物(临用时以 0.6%羧甲基纤维素钠 采用 SPSS 24.0 软件对数据进行统计分析,数据均
溶液为溶剂),正常对照组与模型组大鼠灌胃等体积溶 以 x±s 表示。组间比较采用单因素方差分析,P<0.05
剂,灌胃体积为10 mL/kg,每天1次,连续4周。 表示差异具有统计学意义。
2.2 标本收集 3 结果
各组大鼠给药结束后禁食、不禁水,于次日上午称 3.1 4-羟基-苯并噁唑-2-酮对 NAFLD 模型大鼠血清中
其体质量,然后腹腔注射水合氯醛(3 mL/kg)进行麻醉, 肝功能指标水平的影响
以真空采血管收集全血,静置1 h后,以3 500 r/min离心 与正常对照组比较,模型组大鼠血清中TP、GLB水
·1300 · China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 11 中国药房 2021年第32卷第11期