Page 37 - 《中国药房》2021年10期
P. 37
究将细胞分为 4 组,即空白组、模型组(Aβ 1-42,2 μmol/L) 平。严格按照相应试剂盒说明书进行操作,实验重复
和芥子酸低、高剂量组(50、100 μmol/L,以 DMSO 为溶 3次。
剂)。 2.6 芥子酸对Aβ 1-42诱导的PC12细胞中TrkB、ERK1/2、
2.3 芥子酸对 Aβ 1-42诱导的 PC12 细胞形态及细胞活性 p-ERK1/2蛋白表达影响的检测
影响的检测 采用Western blot法进行检测。按“2.3”项下方法接
采用 MTT 法进行检测。收集对数期的 PC12 细胞, 种、分组、造模、给药,每组设置 3 个复孔。于给药培养
接种至 96 孔板中,每孔 100 μL,使细胞密度为 5×10 4 24 h后,收集细胞,按照RIPA细胞裂解液-PMSF蛋白酶
-1
mL ,按“2.2”项下方法分为4组,每组设置8个复孔,并 抑制剂-磷酸酶抑制剂体积比100∶1∶1配制细胞裂解液,
设置不含细胞的凋零组。各组细胞置于培养箱中继续 每孔加入细胞裂解液100 μL提取细胞总蛋白,冰上裂解
培养24 h后,除空白组外,模型组和芥子酸低、高剂量组 15 min后,以12 000 r/min离心15 min,吸取上清液,采用
分别用终浓度为2 μmol/L的Aβ1-42作用24 h以诱导PC12 BCA法测定总蛋白含量,加入5×Loading buffer于95 ℃
细胞损伤;然后,芥子酸低、高剂量组加入相应浓度的芥 下煮沸5 min使蛋白变性。将变性后的蛋白样品加至丙
子酸继续培养 24 h。将各组细胞置于倒置显微镜下观
烯酰胺(用 SDS、APS、TEMED、水等配制)凝胶中,以恒
察并拍照,采用 MTT 法以酶标仪于 570 nm 波长处检测
流(电流 60 mA)电泳分离,再以恒压(电压 75 V,2 h)转
各孔的光密度(OD)值,计算细胞存活率:存活率(%)=
膜 ;用 5% 脱 脂 奶 粉 于 37 ℃ 下 封 闭 1 h,加 入 TrkB、
(实验组 OD 值-调零组 OD 值)/(空白组 OD 值-调零
ERK1/2、p-ERK1/2、β-actin一抗(稀释比例均为1 ∶ 400),
组OD值)×100%。实验重复3次。
于 4 ℃过夜,用 TBST 溶液清洗 3 次,每次 5 min;加入相
2.4 芥子酸对 Aβ 1-42诱导的 PC12 细胞中 BDNF mRNA
应二抗(稀释比例均为 1 ∶ 1 000),于 37 ℃下反应 1 h,用
表达影响的检测
TBST溶液清洗3次,每次5 min;以ECL显色后,置于凝
采用实时定量PCR法进行检测。按“2.3”项下方法
胶成像系统上曝光成像。采用Image Lab 4.0.1图像分析
接种、分组、造模、给药,每组设置3个复孔。于给药培养
软件检测蛋白条带灰度值,以目的蛋白与内参蛋白
24 h后,收集细胞,使用RNAiso Plus快速提取各组细胞
(β-actin)条带灰度值的比值表示目标蛋白的相对表达
总 RNA;以 RNA 为模板,将 PrimeScrip TM RT reagent Kit
量,以p-ERK1/2与ERK1/2的比值(简写“p-ERK/ERK”)
TM
和SYBR Premix Ex Taq 配合使用以逆转录成cDNA,
®
表示ERK1/2磷酸化水平。以空白组结果为“1”,计算其
以β-actin为内参基因,进行扩增。反应体系(25 μL)包括
他各组的比值。实验重复3次。
SYBR Premix Ex Taq (Tli RNaseH Plus)(2×)12.5 μL,
TM
®
2.7 统计学方法
上游引物(10 μmol/L)0.5 μL,下游引物0.5 μL,cDNA模
采用SPSS 22.0软件对数据进行统计分析。数据均
板 2 μL,ddH2O 9.5 μL。反应条件为:95 ℃预变性 30 s;
以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两
95 ℃变性5 s,60 ℃延伸34 s,40 个循环。BDNF上游引
两比较采用LSD检验。P<0.05表示差异有统计学意义。
物为 5′-AGGCTTGACATCATTGGCTGACAC-3′,下游
3 结果
引物为 5′-GGCACTTGACTACTGAGCATCACC-3′,产
物片段长度为 135 bp;β-actin 上游引物为 5′-AGAG- 3.1 芥子酸对 Aβ 1-42诱导的 PC12 细胞形态及细胞活性
GCATCCTGACCCTGAAG-3′,下游引物为 5′-GGTTG- 的影响
GCCTTAGGGTTCAGAG-3′,产物片段长度为 128 bp。 倒置显微镜下,空白组细胞连接紧密,可见长短不
按2 -ΔΔCT 法计算其相对表达量,以空白组结果为“1”,计 一的突触,部分突触相互连结,细胞周围有光圈且有立
算其他各组的比值。实验重复3次。 体感(图 1A);模型组细胞突触变短,细胞连接较松,贴
2.5 芥子酸对 Aβ 1-42诱导的 PC12 细胞中 BDNF 蛋白水 壁性差,胞质较暗淡,胞浆中有较多颗粒(图1B);芥子酸
平影响的检测 低剂量组细胞突触有轻微损毁,突触较模型组增多,细
采用 ELISA 法进行检测。收集对数期的 PC12 细 胞圆润性增强,细胞碎片变少(图1C);芥子酸高剂量组
胞,接种至 6 孔板中,每孔 1.5 mL,使细胞密度为 10×10 4 细胞突触相对模型组增多变长,细胞密集且光圈变明显
mL ,按“2.2”项下方法分为 4 组,每组设置 4 个复孔。 (图1D)。
-1
按“2.3”项下方法造模、给药。于给药培养 24 h 后,收集 MTT 实验结果显示,与空白组比较,模型组细胞的
细胞,反复冻融使细胞破坏并释放出胞内成分,于 4 ℃ OD值和存活率均显著降低(P<0.05)。与模型组比较,
下以 2 000 r/min离心20 min,取上清液,于-80 ℃保存, 芥子酸低、高剂量组细胞的OD值和存活率均有所升高,
备用。采用 ELISA 法以酶标仪检测细胞中 BDNF 水 其中高剂量组显著升高(P<0.01),详见表1。
中国药房 2021年第32卷第10期 China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 10 ·1183 ·