Page 52 - 《中国药房》2021年07期
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境中,昼夜每12 h交替,自由摄食饮水。 醉,迅速取出脑组织,以体积比1∶9添加生理盐水制备脑
2 方法 组织匀浆液,以 10 000 r/m 离心 15 min,分离上清液,参
2.1 分组、造模及给药 照 ELISA 试剂盒说明书,检测脑组织中 Ach、ChAT、
大鼠适应性喂养7天后,随机分为空白对照组(生理 AchE的含量。以上实验重复5次。
盐水)、模型组(生理盐水)和 ICA 低、中、高剂量组(15、 2.5 大鼠脑组织中 BDNF、ERK、CREB mRNA 表达水
30、60 mg/kg,给药剂量参考文献[10]设置),每组 10 只。 平检测
除 空 白 对 照 组 外 ,模 型 组 和 给 药 组 大 鼠 腹 腔 注 射 各组取 2 只大鼠,腹腔注射 10%水合氯醛进行麻
MK-801(0.2 mg/kg,剂量参考文献[11]设置,溶剂为生理 醉,迅速取出脑组织,加入Trizol试剂提取总RNA,再逆
盐水)复制精神分裂症模型大鼠,每天 1 次,连续 14 天; 转录合成 cDNA,然后以 cDNA 为模板进行 PCR 扩增。
第15天进行Morris水迷宫实验,若造模大鼠的平均逃避 BDNF 上游引物序列为 5′-TGCTTCAGCCGCTACCC-
潜伏期与空白对照组大鼠的差值占该大鼠平均逃避潜 3′,下游引物序列为 5′-AGTTCACCTTGATGCCGTTC-
[12]
伏期的比值大于20%,表明造模成功 。造模过程中大 3′,扩增长度为 527 bp;ERK 上游引物序列为 5′-TCAA-
鼠无死亡。造模成功后,空白对照组和模型组大鼠灌胃 GCCTTCCAACCTCCT-3′,下游引物序列为 5′-TGTTC-
等体积水,给药组大鼠灌胃相应药物(以水为溶剂),每 CACGGCACCTTATTT-3′,扩增长度为 1 082 bp;CREB
天1次,连续28天,然后进行后续观察和检测。 上游引物序列为 5′-CAGATTGCCACATTAGCCC-3′,下
2.2 大鼠行为学观察 游引物序列为 5′-TTCCCTGTTCTTCATTAGACG-3′,扩
2.2.1 Morris 水迷宫实验 参考文献[13]方法,将无光 增长度为 1 767 bp;GADPH 上游引物序列为 5′-GAT-
线直射进入的水池分为4个象限,在目标象限中放置圆 GCTGGTGCTGAGTATGCG-3′,下游引物序列为5′-GT-
形平台。实验前5天,每天将各组大鼠置于目标象限的 GGTGCAGGATGCATTGCTCTGA-3′,扩增长度为 200
圆形平台上适应30 s,再将大鼠随机从任一向象限内放 bp。PCR 反应体系(20 μL)为:cDNA 模板 1 μL,SYBR
入,记录大鼠登上圆形平台的时间,即为逃避潜伏期;5 FAST qPCR Master Mix 10 μL,上下游引物各 1 μL,
天后,撤去目标象限的圆形平台,将大鼠放入水池内,测 ddH2O 7 μL。PCR反应条件为:94 ℃预变性2 min;94 ℃
试大鼠在目标象限内的穿越平台的次数(即穿台次数), 变性30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,循环40次。采
以评价大鼠学习记忆能力。 用2 -ΔΔCt 法,以GADPH为内参,计算BDNF、ERK、CREB
2.2.2 旷场实验 参考文献[14]方法,将各组大鼠放入 mRNA的表达水平。以上实验重复5次。
观察箱内,通过 Smart 系统记录 30 min 内大鼠自由活动 2.6 大鼠脑组织中BDNF/ERK/CREB通路相关蛋白和
的运动轨迹、路程,以前 10 min(T1 时段)活动路程长度 凋亡相关蛋白表达水平检测
表示大鼠探究行为,以 11~20 min(T2 时段)、21~30 各组取 3 只大鼠,腹腔注射 10%水合氯醛进行麻
min(T3时段)活动路程长度表示大鼠自主活动行为,评 醉,迅速取出脑组织,加入蛋白裂解液提取蛋白;以
价大鼠探究行为和自主活动行为。 12 000 r/min离心10 min,分离上层蛋白液,采用BCA法
2.2.3 强迫游泳实验 参考文献[15]方法,将各组大鼠 检测蛋白浓度。蛋白经变性后进行SDS-PAGE电泳,转
放入温水中强行游泳5 min,记录大鼠累积不动时间(可 膜,以5%脱脂奶粉溶液中封闭1.5 h;TBST缓冲液清洗
漂浮在水中且不挣扎),以评价大鼠绝望行为。 5 min×3 次后,加入 BDNF、ERK1/2、p-ERK1/2、CREB、
2.2.4 Y 迷宫实验 参考文献[16]方法,随机标记 Y 迷 p-CREB、Bcl-2、Bax、Caspase-3、GADPH 一抗(稀释度均
宫的 3 个臂支,先将大鼠放入迷宫中自由探索 2 min,再 为1 ∶ 1 000),孵育过夜;TBST缓冲液清洗5 min×3次后,
记录8 min内大鼠进入各个臂支的情况,计算交替率[交 加入二抗(稀释度为1 ∶ 5 000)孵育1 h;加入ECL发光剂
替率=交替总次数/(入臂总次数-2)×100%,其中大鼠 显色,经全自动凝胶成像系统成像。采用 Image J 1.8.0
连续进入3个不同的臂支则为交替],以评价大鼠空间识 软件进行分析,以p-ERK1/2与ERK1/2、p-CREB与CREB
别能力。 灰度值比值分别表示ERK1/2、CREB 的磷酸化水平,以
2.3 大鼠海马组织病理形态学观察 Bcl-2与Bax的灰度值比值表示凋亡水平,以Caspase-3、
在行为学观察实验结束后,各组取2只大鼠,腹腔注 BDNF 蛋白与内参 GADPH 的灰度值比值表示其表达
射 10%水合氯醛进行麻醉,迅速取出脑组织,在冠状位 水平。
切取海马组织,制备石蜡切片,进行常规Nissl染色,于显 2.7 统计学方法
微镜下观察海马组织的神经元形态,随机挑选5个视野, 采用 SPSS 18.0 软件进行数据分析与处理,计量资
计数Nissl染色阳性神经元。 料以 x±s 表示,多组比较采用单因素方差分析,组间两
2.4 大鼠脑组织中胆碱能相关指标的检测 两比较采用 LSD-t 检验,以 P<0.05 表示差异有统计学
各组取 3 只大鼠,腹腔注射 10%水合氯醛进行麻 意义。
·814 · China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 7 中国药房 2021年第32卷第7期