Page 42 - 《中国药房》2021年第1期
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滤除菌,于-20 ℃保存,备用。 12 h时收集对照组、模型组和小续命汤高浓度组的大鼠
2.2.2 分离培养星形胶质细胞 取新生 SD 大鼠 10 只, 星形胶质细胞接种至 6 孔板,悬浮于 DCFH-DA 稀释液
于无菌条件下断头取脑,将脑组织放入 4 ℃预冷的 (1 ∶ 1 000)中,在 37 ℃的细胞培养箱内孵育 20 min;以
D-PBS 培养皿内并置于冰盒上,漂洗 3 次后转入 2 mL PBS洗涤3次,去除未进入细胞内的DCFH-DA 后,于荧
4 ℃预冷的D-PBS液中。去除大鼠的脑膜及大血管,分 光显微镜下观察并拍照。阴性对照采用 PBS 替代
离其大脑皮质并剪成 1 mm 大小的碎块,加入 0.25%胰 DCFH-DA,其余同法操作。采用Image Pro Plus 6.0软件
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蛋白酶,于 37 ℃条件下消化 30 min,随后加入 DMEM/ 计算细胞的平均光密度用来表示细胞中ROS水平,该值
F12完全培养基内终止消化;在4 ℃、1 000 r/min条件下 越高,则ROS水平越高。试验重复3次。
离心10 min,弃上清液,加入适量DNA酶消化至肉眼不 2.5 大鼠星形胶质细胞中MnSOD水平的检测
见胶丝状物,以乙二胺四乙酸(EDTA)终止消化;以 采用免疫荧光双染法检测。于 OGD 2.5 h 后复氧
4 ℃、1 000 r/min再次离心10 min,弃上清液,收集沉淀, 12 h时收集对照组、模型组和小续命汤高浓度组的大鼠
加入适量 DMEM/F12 完全培养基,吹打成单细胞悬液, 星形胶质细胞接种至6孔板,PBS洗涤3次,经40 g/L的
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调整细胞密度至 1.5×10 个/mL,接种于 75 cm 的培养瓶 多聚甲醛固定 10 min;清洗后,用 3%正常羊血清封闭 1
中。采用差速贴壁法 1 h 去除成纤维细胞后,将细胞悬 h;加入 GFAP 一抗(1 ∶ 100)和 MnSOD 一抗(1 ∶ 100),于
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液转移至新的 75 cm 培养瓶继续培养,每 3 天换液 1 4 ℃下过夜孵育;PBS 洗涤后,加入 Cy3 标记的二抗
次。培养 7 d 后,将培养瓶放入水平摇床(260 r/min,
(1 ∶ 500)和 FITC 标记的二抗(1 ∶ 500),室温避光孵育 2
37 ℃)2 h,换液弃除小胶质细胞,放入培养箱中平衡 1
h;PBS 洗涤后,加入 DAPI 染液(1 ∶ 100),室温避光孵育
h,重新置于水平摇床(260 r/min,37 ℃)2 h,换液弃除少
30 min;PBS 充分洗涤后于荧光显微镜下观察并拍照。
突胶质细胞;剩下的即为星形胶质细胞,再用 DMEM/
阴性对照采用 PBS 替代一抗,其余同法操作。采用
F12 完 全 培 养 基 清 洗 2 次 ,加 入 0.25% 胰 蛋 白 酶 与
Image Pro Plus 6.0软件计算细胞的平均光密度用来表示
0.02% EDTA混合液(1∶1)消化、传代。每3天换液1次,
细胞中 MnSOD 水平,该值越高,则 MnSOD 水平越高。
取用稳定生长的第3代细胞用于试验。
试验重复3次。
2.2.3 分组与给药处理 将“2.2.2”项下培养的大鼠星
2.6 统计学方法
形胶质细胞接种至6孔板,随机分为对照组、模型组和小
采用 SPSS13.0 统计学软件进行分析。计量资料以
续命汤低、中、高浓度组。模型组和小续命汤各含药血
x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,两组间比
清组采用 OGD 法(参照文献[16])模拟体内脑缺血损伤
较采用t检验。P<0.05为差异有统计学意义。
以建立体外细胞损伤模型:将大鼠星形胶质细胞转移至
含 5% CO2、95% N2 的特制缺氧箱内,并给予低糖(0.5 3 结果
3.1 小续命汤含药血清对OGD后复氧不同时间的大鼠
mmol/L)DMEM/F12 培养基,于 37 ℃培养 2.5 h,随后将
星形胶质细胞中LDH含量的影响
其移出缺氧培养箱,转入含有0(即模型组不加药)和低、
OGD后复氧不同时间的对照组细胞中LDH含量始
中、高浓度的小续命汤含药血清(2.5%、5%、10%,以含
终保持在较低水平;模型组细胞分别在OGD后复氧0~
药血清在培养基中的体积分数计算)的DMEM/F12完全
培养基内继续培养(即复氧)一定时间。对照组细胞不 12 h时,其LDH含量从(110.99±17.06)U/L逐渐上升至
作任何处理。小续命汤含药血清的给药浓度设置参考 (436.64±55.29)U/L,均显著高于对照组(P<0.05),表
文献[17]。 明细胞损伤程度逐渐加重;与 OGD 后复氧相同时间点
2.3 大鼠星形胶质细胞中LDH含量的检测 的模型组比较,小续命汤含药血清低、中、高浓度组细胞
采用比色法进行检测。分别于OGD 2.5 h后复氧0、 中LDH含量均不同程度地降低,并表现出时间和剂量依
3、6、12 h时取对照组、模型组和小续命汤低、中、高浓度 赖趋势,其中小续命汤含药血清各浓度组细胞在 OGD
组的大鼠星形胶质细胞上清液置于 96 孔板,根据 LDH 后复氧6、12 h时其LDH含量均较模型组显著降低(P<
检测试剂盒说明书将空白孔、标准孔、测定孔、对照孔分 0.05),详见表 1。根据上述结果,本研究选取小续命汤
别加入相应工作液,在37 ℃下避光孵育,再采用全自动 含药血清的高浓度组和复氧12 h进行后续研究。
酶标仪检测450 nm波长处的光密度(OD)值。根据公式 3.2 小续命汤含药血清对OGD损伤模型大鼠星形胶质
计算 LDH 含量:LDH 含量(U/L)=[(测定孔 OD 值-对 细胞中ROS水平的影响
照孔OD值)/(标准孔OD值-空白孔OD值)]×标准品浓 对照组大鼠细胞中平均光密度为10.79±5.37;模型
度(0.2 mmol/L)×1 000。细胞上清液中 LDH 含量越高, 组细胞中平均光密度为 44.94±10.29,显著高于对照组
则表明OGD导致的细胞损伤程度越高。试验重复8次。 (P<0.05);小续命汤含药血清高浓度组细胞中平均光
2.4 大鼠星形胶质细胞中ROS水平的检测 密度为 19.23±5.27,显著低于模型组(P<0.05),详见
采用荧光探针法进行检测。于 OGD 2.5 h 后复氧 图1。
·36 · China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 1 中国药房 2021年第32卷第1期