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focal cerebral ischemia model,model rats were given relevant medicine or normal saline intragastrically,twice a day,for
        consecutive 3 d. The neurological deficit of rats in each group was scored;the volume of cerebral infarction was measured by 2,3,
        5-triphenyltetrazolium chloride(TTC)staining;water content of cerebral tissue and the permeability of blood-brain barrier were
        measured;HE staining was performed to observe the pathological change of cerebral tissue of rats;the expression of miR-141-3p
        in cerebral tissue of rats was measured by qRT-PCR;the protein expression of Notch and Nrf2 in cerebral tissue of rats were
        measured by Western blotting assay. RESULTS:Compared with sham operation group,the neurological deficit score,expression of
        Notch-1 and Nrf2 in model group were significantly lowered(P<0.05);infarction volume,brain water content,the permeability
        of blood-brain barrier and the expression of miR-141-3p in cerebral tissue were increased significantly(P<0.05);the distribution
        of cortical cells was disordered,and inflammatory infiltration and necrosis were observed in a large number of nerve cells.
        Compared with model group,the neurological deficit score,the protein expression of Notch-1 and Nrf2 in cerebral tissue were
        significantly increased in ICSⅡgroups(P<0.05);infarction volume,brain water content,the permeability of blood-brain barrier
        and the expression of miR-141-3p in cerebral tissue were decreased significantly(P<0.05);the arrangement of cortical cells was
        regular,and the inflammatory infiltration and necrosis of nerve cells were decreased significantly. CONCLUSIONS:ICS Ⅱ can
        promote the recovery of neurological function in focal cerebral ischemic model rats,which may be related to down-regulation of
        miR-141-3p and activation of Notch/Nrf2 axis.
        KEYWORDS    Icariside Ⅱ;miR-141-3p;Notch;Nuclear factor erythroid-2-related factor 2;Focal cerebral ischemia model;Rats

            缺血性脑卒中是一种病因复杂、危害性大的脑血管                         司);KH19 型台式高速离心机(湖南凯达科学仪器有限
        疾病,临床表现为认知功能障碍、肢体残疾等症状,而且                          公司)。
        脑组织长期缺血缺氧还可引起永久性神经元凋亡和损                            1.2  药品与试剂
        伤,严重影响患者的生命健康和生活质量                 [1-2] 。临床上治         ICSⅡ原料药(南京泽郎医药科技有限公司,批号:
        疗缺血性脑卒中常采用调节血压、调节血脂、抗血小板                           MH150601S02,纯度:98%);甲酰胺(上海麦克林生化科
        聚集、溶栓等方法,同时在该疾病早期进行神经保护也                           技有限公司,批号:F809511);RNA 提取试剂盒(北京天
        十分重要 。目前,采用中药治疗缺血性脑卒中已经成                           根生化科技有限公司,批号:DP430);逆转录试剂盒(美
                [3]
        为研究热点,其中淫羊藿的主要活性成分淫羊藿次苷Ⅱ                           国 Genecopoeia 公司,批号:C0210B);ECL 蛋白显色试
       (IcarisideⅡ,ICSⅡ)具有延缓衰老、抗疲劳、改善心脑血                   剂盒(上海生工生物工程有限公司,批号:32109);兔抗
                                [4]
        管功能、抗氧化等药理作用 。研究还发现,ICSⅡ具有                         鼠 Notch-1 单 克 隆 抗 体(美 国 Abcam 公 司 ,批 号 :
        缓解大鼠脑缺血再灌注损伤的作用                   [5-6] 。微核醣核      EP1238Y);兔抗鼠β-actin单克隆抗体(美国Sigma公司,
        酸-141-3p(miR-141-3p)是非编码微小 RNA(miRNA),             批号:A5441);兔抗鼠 Nrf2 多克隆抗体(北京博奥森生
        能够与目标mRNA的3-非编码区域碱基互补配对结合,                         物技术有限公司,批号:BS-1074R);辣根过氧化物酶
                                [7]
        导致mRNA降解或翻译抑制 。Notch信号通路(Notch)                    (HRP)标记的羊抗兔IgG二抗(批号:873703275671)、伊
        与神经系统疾病密切相关,在血管发育、血管损伤修复                           文思蓝(EB)染色液(批号:DK0001)、苏木素-伊红(HE)
        及减轻炎症反应中发挥着重要作用 。核因子 E2 相关                         染色试剂盒(批号:C200201)、2,3,5-三苯基氯化四氮
                                       [8]
        因子2(Nrf2)具有抗炎和抗氧化作用,研究发现,Notch-1                   唑(TTC)染色液(批号:181532)、二喹啉甲酸(BCA)蛋
        能够靶向调控 Nrf2 的表达,进而参与抗氧化作用 。基                       白浓度测定试剂盒(批号:20170502)均购自北京索莱宝
                                                  [9]
        于此,本研究通过构建局灶性脑缺血大鼠模型并使用                            科技有限公司;其余试剂均为分析纯或实验室常用规
        ICSⅡ进行干预,旨在从 miR-141-3p/Notch/Nrf2 轴探讨             格,水为蒸馏水(三级)。
        ICSⅡ对局灶性脑缺血模型大鼠神经功能的改善作用,                          1.3 动物
        为 ICSⅡ在临床上用于缺血性脑卒中的治疗提供理论                              SPF 级雄性 Wistar 大鼠 130 只,7~8 周龄,体质量
        依据。                                                220~250 g,购自四川大学实验动物中心[动物生产许可
        1 材料                                               证号:SCXK(川)2018-026]。大鼠饲养于山东大学实验
        1.1 仪器                                             动物中心动物房屏障环境[动物使用许可证号:SYXK
            ZF-388型全自动凝胶成像分析系统(深圳三利化学                      (鲁)2019-0005],室温为 20~25 ℃,相对湿度为 50%~
        品有限公司);CFX96 型 qRT-PCR 扩增仪、Trans-Blot              60%,通风良好。大鼠自由进食饮水,适应性饲养1周后
        Turbo TM  型Western转膜仪、DDY-10型电泳仪、JS680D型           进行实验。实验严格遵循“3R”原则给予实验动物人道
        凝胶成像仪、蛋白凝胶成像仪(美国 Bio-Rad 公司);                      关怀。
        HY704-4 型双层烘箱(上海精密仪器仪表有限公司);                       2 方法
        UV-1800紫外-可见分光光度计(上海美谱达仪器有限公                       2.1 造模、分组与给药
        司);AB204-A型电子分析天平[梅特勒-托利多国际贸易                          造模前大鼠均行神经功能评分(方法见“2.2”项),剔
                                                                                     [10]
       (上海)有限公司];SMZ645型光学显微镜(日本Nikon公                     除异常大鼠后,采用文献方法 改良后构建局灶性脑缺

        中国药房    2020年第31卷第19期                                             China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 19  ·2387 ·
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