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再按“2.2”项下方法计算 LP 提取率。结果,随着醇沉浓 度(IC50)。抑制率=[OD 空白对照-(OD 检测样品-OD 检测背景)/
度的提高,LP 提取率也随之升高;当醇沉至 80%时,再 OD 空白对照]×100%。结果,LP 的 IC50为 0.056 mg/mL,阿卡
提高醇沉浓度,LP 提取率基本没有变化详见图 3B。故 波糖(阳性对照)的IC50为0.196 mg/mL,详见表4。
为了节约溶剂,本研究最终选择醇沉至含醇量的80%。 表 4 LP 和阿卡波糖对α-葡萄糖苷酶抑制作用的检测
2.5 Sevage除蛋白 结果(x±±s,n=3)
[20]
参照刘子健等 报道的除蛋白方法,取荔枝核药材 Tab 4 Detection results of inhibitory effects of LP and
适量,按“2.3”“2.4”项下最优条件水提醇沉后,干燥至恒 acarbose on α-glucosidase(x±±s,n=3)
定质量,用水稀释制成质量浓度为 5 mg/mL 的水溶液, 待测物 质量浓度,mg/mL 抑制率,% IC50,mg/mL
阿卡波糖(阳性对照) 1 74.11±2.83 0.196
与 Sevage 试剂(氯仿-正丁醇=4 ∶ 1,V/V)混合(LP 水溶
0.5 69.03±2.18
液 -Sevage 试 剂 =5 ∶ 1,V/V),振 荡 ,静 置 ,回 收 下 层 0.25 55.82±2.66
Sevage试剂,将剩余的药液和析出物以5 000 r/min离心 0.1 48.80±2.21
0.01 34.23±2.98
10 min,再加入上清液体积1/5的Sevage试剂,重复上述
LP 1 88.82±2.01 0.056
操作3次,收集上清液,冻干,即得除蛋白后的粗多糖。 0.5 78.33±2.89
2.6 工艺验证 0.25 62.71±2.10
0.1 50.65±2.99
取荔枝核药材 1 000 g,共 3 份,按“2.3”项下最优工 0.01 42.36±2.12
艺用水提取,将水提液浓缩至原体积的 40%后,用乙醇 3 讨论
进行80%醇沉,再按“2.5”项下方法除蛋白后,按“2.1.2” 本研究采用响应面法优化了LP的水提工艺。响应
项下方法制备供试品溶液,再按“2.2”项下方法计算 LP 面法是工艺优化的常用方法之一,相比于传统的正交设
提 取 率 。 结 果 ,3 次 验 证 试 验 的 LP 提 取 率 分 别 为 计,前者得到的回归方程精度更高,并可评价各因素的
7.61%、7.89%、7.99%,平均提取率为 7.83%(RSD= 交互作用 。为此,本研究采用响应面法,以料液比、提
[21]
2.52%,n=3);3 次验证试验的 LP 含量分别为 55.57%、 取时间、提取次数为考察因素,以 LP 提取率为评价指
55.83%、56.66%,平均含量为 56.02%(RSD=1.81%, 标,对LP水提工艺进行优化。结果显示,响应面试验所
n=3),提示该工艺稳定、可行。 得回归方程模型拟合良好。在所选的各因素水平范围
2.7 LP对α-葡萄糖苷酶的抑制活性 内,提取时间对LP提取率的影响最大,提取次数的影响
采用PNPG法进行考察。 次之,料液比的影响最小;料液比、提取时间和提取次数
2.7.1 溶液的制备 (1)磷酸盐缓冲溶液(PBS):取一定 有显著的交互作用。优化后的最优LP水提取条件为料
量磷酸氢二钾、磷酸二氢钾,用水制成 pH 为 6.8 的缓冲 液比 1 ∶ 19(g/mL)、提取时间 1 h、提取 3 次,预测多糖提
溶液。(2)样品测定溶液:取一定量粗多糖固体粉末,用 取率为 7.57%。水提取工艺的 3 次验证试验结果显示,
PBS制成质量浓度分别为 1.0、0.5、0.25、0.1、0.01 mg/mL 平均LP提取率为7.61%,与预测值接近,提示该水提取
的溶液(以葡萄糖计)。(3)阳性测定溶液:取一定量阿卡 工艺可行。
波糖,用 PBS 制成质量浓度分别为 1.0、0.5、0.25、0.1、 本研究进一步采用单因素试验法考察了LP的醇沉
0.01 mg/mL 的溶液。(4)α-葡萄糖苷酶溶液:取一定量α- 工艺,以水提液浓缩体积、醇沉浓度为考察因素,以 LP
葡萄糖苷酶,用 PBS 制成浓度为 0.04 U/mL 的溶液。(5) 提取率为评价指标,对LP醇沉工艺进行优化。结果,浓
PNPG 溶液:取一定量 PNPG,用 PBS 制成浓度为 0.5 缩至原体积的40%、乙醇醇沉至含醇量的80%为最优醇
mmol/L的溶液。(6)碳酸氢钠溶液:取一定量碳酸氢钠, 沉工艺。
用水制成pH为9.8的水溶液。 本研究采用 Sevage 法沉淀蛋白纯化 LP。虽然,水
2.7.2 测定方法与结果 取“2.7.1”项下样品测定溶液、 提醇沉可以获得较多的 LP,但是纯化粗多糖的效果不
阳性测定溶液各 40 μL 至 96 孔板中,加入 0.04 U/mL 的 佳;Sevage 法可以进一步纯化多糖,且条件比较温和,可
α-葡萄糖苷酶溶液40 μL,混匀,于37 ℃孵育5 min;加入 较好地避免多糖降解 。由于本法实为萃取,在操作中
[22]
0.5 mmol/L 的 PNPG 溶液 20 μL,混匀,于 37 ℃孵育 30 有可能会出现乳化现象,造成多糖损失、含量偏低,故后
min;加入0.1 mol/L的碳酸氢钠溶液100 μL终止反应(此 续还需考察蛋白的除去率等。
时反应总体积达200 μL)。以PBS 40 μL为空白对照,以 本研究对所得最优水提醇沉工艺进行了验证。3次
PBS 40 μL代替α-葡萄糖苷酶溶液作为检测背景以消除 验证试验结果显示,平均 LP 提取率为 7.83%(RSD=
检测误差,使用酶标仪于405 nm波长处检测各孔的光密 2.52% ,n=3);所 得 平 均 LP 含 量 为 56.02%(RSD=
度(OD),每个样品重复 3 次,计算抑制率和半数抑制浓 1.81%,n=3),表明该水提醇沉工艺稳定、可行。
中国药房 2020年第31卷第16期 China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 16 ·1999 ·