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in Ⅴ-FITC/PI)凋亡检测试剂盒、RNA 酶 A(北京索莱宝 HeLa和HeLa/DDP细胞适量,以5 000个/孔接种至96孔
科技有限公司,批号分别为 C0080、R10030);CCK-8 检 培养板中,培养24 h后,将细胞随机分为对照组(即DDP
测试剂(日本 Dojindo 公司,批号:KN709);RIPA 细胞裂 组)和不同剂量药物组。对照组加入完全培养基 100
解 液(美 国 Sigma 公 司 ,批 号 :C0157);兔 抗 人 Bax、 μL,各药物组加入含DDP的完全培养基100 μL(DDP的
Bcl-2、剪切型胱天蛋白酶 3(Cleaved caspase-3)、β-肌动 最终质量浓度分别为 0.125、0.25、0.5、1、2、4、8、16、32
蛋白(β-actin)抗体(美国 ImmunoWay Biotechnology 公 mg/L,剂量设置参考前期预试验所得 DDP 对非耐药细
司,批号分别为 YM2631、YT0278、YC0002、YM2018); 胞的作用浓度 ),每组设 3 个复孔。培养 48 h 后,弃去
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蛋白上样缓冲液、辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔免疫 培养基,每孔加入CCK-8试剂10 μL;培养2.5 h后,使用
球蛋白 G 抗体(碧云天生物技术研究所,批号:P0013、 酶标仪于 450 nm 波长处检测各孔的光密度(OD)值,在
A0217);DC 蛋白定量试剂盒(美国 Bio-Rad 公司,批号 计算抑制率、半数抑制浓度(IC50 )的基础上,计算 HeLa/
1702409);Western blotting 试验显影液、定影液(天津开 DDP 细胞的耐药指数。抑制率=(1-试验组细胞 OD
发区宏丰科工贸有限公司);ECl 发光液由本实验室自 值/对照组细胞 OD 值)×100%;耐药指数=药物对耐药
制;二甲基亚砜(DMSO)等试剂均为分析纯,水为超 细胞的 IC50/药物对敏感细胞的 IC50 (当耐药指数<5 时,
纯水。 为低度耐药;当耐药指数为 5~15 时,为中度耐药;当耐
1.3 细胞 药指数>15 时,为高度耐药 )。上述试验重复 3 次(下
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人宫颈癌HeLa细胞系由天津市肿瘤医院公共实验 同)。
室提供。 2.4 L-SHK对 HeLa/DDP的增殖抑制作用及耐药逆转
2 方法 作用考察
2.1 溶液的配制 2.4.1 L-SHK 对 HeLa/DDP 的 增 殖 抑 制 作 用 采 用
称取 L-SHK 对照品 10 mg,溶于 DMSO 1 mL 中,制 CCK-8 法检测。取“2.2”项下对数生长期的 HeLa/DDP
成浓度为34.7 μmol/L的L-SHK贮备液,置于4 ℃冰箱中 细胞适量,以 5 000 个/孔接种至 96 孔培养板中,培养 24
保存;以DDP注射液作为DDP贮备液(5 g/L),于4 ℃冰 h后,将细胞随机分为对照组(即DDP组)和不同剂量药
箱中冷藏保存。 物组。对照组加入含 DDP 的完全培养基 100 μL(DDP
2.2 HeLa细胞及HeLa/DDP细胞的培养 的最终质量浓度为2 mg/L,剂量设置参考该药表观分布
2.2.1 HeLa细胞 取出冻存的HeLa细胞,在37 ℃水浴 容积及“2.3”项下试验结果,下同),各药物组加入同时含
中迅速融化,以1 000 r/min离心5 min,沉淀加入含10% L-SHK 和 DDP 的完全培养基 100 μL(DDP 最终质量浓
胎牛血清的 RPMI 1640 培养液(以下简称“完全培养 度均为 2 mg/L,L-SHK 的最终浓度分别为 0.125、0.25、
基”)1 mL,吹打均匀后接种至培养皿中,于 37 ℃、5% 0.5、1、2、4、8、16 μmol/L;剂量设置参考前期预试验所得
CO2及饱和湿度条件下培养(培养条件下同)。观察细胞 L-SHK 对非耐药细胞的作用浓度 ),每组设 3 个复孔。
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形态及数量,待细胞长满培养皿的 80%时传代 1 次,具 培养 48 h 后,弃去培养基,每孔加入 CCK-8 试剂 10 μL;
体操作如下:吸弃培养液,用磷酸盐缓冲液(PBS,pH 培养 2.5 h 后,使用酶标仪于 450 nm 波长处检测各孔的
7.5)清洗 1~2 次,加入含 EDTA 的 0.25%胰酶、PBS 各 1 OD值,按“2.3”项下方法计算抑制率。
mL,消化 2~3 min,加入不含血清的 RPMI 1640 培养液 2.4.2 L-SHK 对 HeLa/DDP 的 耐 药 逆 转 作 用 采 用
终止消化,吹打制成细胞悬液,再按细胞悬液与培养液 CCK-8 法测定。取“2.2”项下对数生长期的 HeLa/DDP
体积比1∶3进行传代,培养,即得HeLa细胞。 细胞适量,以 5 000 个/孔接种至 96 孔培养板中,培养 24
2.2.2 HeLa/DDP 细胞 取出冻存的 HeLa 细胞按照 h后,将细胞随机分为对照组(即DDP组)和不同剂量药
“2.2.1”项下方法复苏后,加入完全培养基1 mL,培养,待 物组。对照组加入含 DDP 的完全培养基 100 μL(DDP
细胞长满培养皿的80%后按“2.2.1”项下方法传代,待传 的最终质量浓度为 2 mg/L),各药物组分别加入同时含
代细胞长至对数生长期时,将培养基更换为含DDP 100 DDP 和 L-SHK 的完全培养基 100 μL(DDP 的最终质量
μg/L 的 RPMI 1640 培养液,继续培养 48 h 后,弃去原培 浓度均为2 mg/L,低、中、高剂量L-SHK的最终浓度分别
养液,更换为完全培养基继续培养。待细胞长满培养皿 为0.3、0.6、1.2 μmol/L;剂量设置参考“2.4.1”项下结果及
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的80%后同法传代,待传代细胞长至对数生长期时加入 前期试验结果 ,下同),每组设3个复孔。培养48 h后,
DDP(质量浓度为前次培养的2倍),反复换药培养,直至 弃去培养基,每孔加入CCK-8试剂10 μL;培养2.5 h后,
DDP质量浓度达100 mg/L(根据前期预试验结果确定), 使用酶标仪于450 nm波长处检测各孔的OD值,按“2.3”
即得HeLa/DDP细胞。 项下方法计算抑制率和 IC50,并计算逆转倍数。逆转倍
2.3 HeLa/DDP细胞耐药指数的检测 数=使用逆转剂前药物对细胞的 IC50/使用逆转剂后药
采用 CCK-8 法检测。取“2.2”项下对数生长期的 物对细胞的IC50。
中国药房 2020年第31卷第15期 China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 15 ·1869 ·