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离子源(ESI);采集模式:正离子;毛细管电压:1.5 kV;离 2.4.4 血浆样品处理
子源温度:120 ℃;溶剂气温度:400 ℃;脱溶剂气流量: 取“2.4.2”项下样品200 μL,加入质量浓度为5 μg/mL
800 L/h;锥孔气流量:50 L/h;扫描方式:MS Continuum 的 内 标 溶 液 400 μL,涡 旋 5 min 混 匀 ,于 4 ℃ 下 以
E
模式;扫描范围:m/z 50~1 200。 20 000×g离心 10 min,取上清液于 37 ℃下以氮气流吹
2.3 溶液的制备 干,残渣加甲醇 100 μL 复溶,涡旋 5 min 混匀,于 4 ℃
2.3.1 Gedatolisib对照品贮备液及对照品溶液 下以 20 000×g离心10 min,取上清液备测。
精密称取 Gedatolisib 原料药适量,以甲醇溶解并定 2.4.5 人工胃/肠液样品处理
容至 5 mL 量瓶中,制成质量浓度为 1 mg/mL 的对照品 取“2.4.3”项下样品200 μL,加入质量浓度为5 μg/mL
贮备液,于4 ℃贮存。使用前用甲醇稀释得到相应质量 的 内 标 溶 液 400 μL,涡 旋 5 min 混 匀 ,于 4 ℃ 下 以
浓度的对照品溶液。 20 000×g离心10 min,取上清液备测。
2.3.2 内标贮备液及内标溶液 2.5 生物样品定量分析方法学考察
精密称取内标对照品适量,以甲醇溶解并定容至 5 2.5.1 专属性考察
mL量瓶中,制成质量浓度为1 mg/mL的内标贮备液,于 分别取空白血浆、空白血浆+Gedatolisib 对照品
4 ℃贮存。使用前用甲醇稀释得到相应质量浓度的内标 (100 μg/mL)、血浆样品(10 μg/mL Gedatolisib 孵育 0.5
溶液。 h),除空白血浆不加入内标外其余均按“2.4.4”项下方法
2.3.3 空白人工胃液的制备 处理,再按“2.1”项下色谱条件进样分析,记录色谱图;另
按文献方法 ,取稀盐酸 16.4 mL,加水 800 mL,用 取空白人工胃液、空白人工肠液、人工胃液、人工肠液、
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0.1 mol/L 盐酸溶液调 pH 至 1.3,再加水稀释并定容至 人工胃液+Gedatolisib 对照品(100 μg/mL)、人工肠液+
1 000 mL,即得空白人工胃液。 Gedatolisib 对 照 品(100 μg/mL)、人 工 胃 液 样 品(10
2.3.4 人工胃液的制备 μg/mL Gedatolisib 孵育 0.5 h)、人工肠液样品(10 μg/mL
[6]
按文献方法 ,取稀盐酸 16.4 mL,加水 800 mL、胃 Gedatolisib 孵育 0.5 h),除空白人工胃肠液和人工胃肠
蛋白酶10 g,摇匀使其溶解,用0.1 mol/L 盐酸溶液调pH 液不加入内标外其余均按“2.4.5”项下方法处理,再按
至1.3,再加水稀释并定容至1 000 mL,即得人工胃液。 “2.1”项下色谱条件进样分析,记录色谱图。结果,在该
2.3.5 空白人工肠液的制备 色谱条件下,Gedatolisib和内标均能同时被检出,保留时
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按文献方法 ,取磷酸二氢钾6.8 g,加水500 mL,摇 间分别为 6.94、9.42 min,分离度良好,不受内源性物质
匀使其溶解,用 0.1 mol/L 氢氧化钠溶液调 pH 至 6.8,再 干扰,详见图2。
加水稀释并定容至1 000 mL,即得空白人工肠液。 2.5.2 线性关系考察
2.3.6 人工肠液的制备 取大鼠空白血浆、空白人工胃液、空白人工肠液、人
按文献方法 ,取磷酸二氢钾6.8 g,加水500 mL,摇 工胃液和人工肠液各198 μL,分别精密加入不同质量浓
[6]
匀使其溶解,用 0.1 mol/L 氢氧化钠溶液调 pH 至 6.8;另 度的 Gedatolisib 对照品溶液 2 μL,制成 Gedatolisib 质量
称取胰蛋白酶 10 g,加适量水溶解;将上述两种溶液混 浓度依次为0.5、1、2、5、10、20、40 μg/mL的样品溶液(含
合后,再加水稀释并定容至1 000 mL,即得人工肠液。 醇量为1%),涡旋5 min混匀,分别按“2.4.4”“2.4.5”项下
2.4 样品采集、配制与处理 方法处理,记录峰面积。以Gedatolisib峰面积与内标峰
2.4.1 空白血浆采集 面积的比值为纵坐标(y)、Gedatolisib的质量浓度为横坐
取清洁级大鼠6只,于股动脉采血,分别置于含肝素 标(x)进行回归分析,得 Gedatolisib 在空白血浆中的回
2
钠的离心管中,于4 ℃下以3 000×g离心10 min,取上层 归方程为 y=0.034 5x-0.008 9(R =0.999 6),在空白人
2
血浆于-80 ℃贮存,备用。 工 胃 液 中 的 回 归 方 程 为 y=0.035 1x - 0.004 3(R =
2.4.2 血浆样品配制 0.999 1)、在空白人工肠液中的回归方程为y=0.033 4x-
按文献方法 ,取大鼠空白血浆 198 μL,分别加入 0.005 2(R =0.999 5)、在人工胃液中的回归方程为 y=
2
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低、中、高质量浓度(2、10、30 μg/mL)的 Gedatolisib 对照 0.034 4 x-0.008 6(R =0.999 3)、在人工肠液中的回归
2
2
品溶液(含醇量为 1%)2 μL,振荡混匀,在 37 ℃水浴中 方程为 y=0.033 8x-0.001 8(R =0.999 4)。结果表明,
孵育0、0.5、1.0、1.5、2.0、3.0 h。 Gedatolisib检测质量浓度的线性范围均为1~40 μg/mL,
2.4.3 人工胃/肠液样品配制 定量下限均为1 μg/mL。
精密量取质量浓度为 1 mg/mL 的 Gedatolisib 对照 2.5.3 准确度、精密度、稳定性试验
品溶液4份,每份50 μL,分别置于5 mL EP管中,分别用 取大鼠空白血浆、空白人工胃液、空白人工肠液、人
空白人工胃液、空白人工肠液、人工胃液、人工肠液稀释 工胃液和人工肠液各198 μL,分别精密加入不同质量浓
至刻度(含醇量均为 1%);再用 EP 管分装 200 μL,振荡 度的 Gedatolisib 对照品溶液 2 μL,制成定量下限质量
混匀,于37 ℃水浴中孵育0、0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、6.0 h。 浓度(1 μg/mL)样品溶液和低、中、高质量浓度(2、10、30
·1454 · China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 12 中国药房 2020年第31卷第12期