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入终浓度为 10、20、30 μmol/L 的木香烃内酯培养液,每                   2.6 统计学分析
        组设 5 个复孔,然后培养 48 h 后,弃去培养基,于 4 ℃下                       采用 GraphPad Prism 6.0 软件对数据进行统计分
        用4%多聚甲醛溶液固定30 min;用PBS洗涤细胞2次,                       析。计量资料以 x±s 表示,组间比较采用 t 检验。P<
        每次 3~5 min;加入 500 μL Hoechst 33258 染色液,室温           0.05 表示差异有统计学意义。
        避光染色 10 min,吸除染色液,用 PBS 洗涤 2 次,每次                   3 结果
        3~5 min;然后置于倒置荧光显微镜下观察,每孔随机选                        3.1 木香烃内酯对SK-BR-3细胞增殖的影响
        择5个视野拍照。镜下可见,凋亡细胞的荧光强度比正                                与空白对照组比较,木香烃内酯作用 24、48、72 h
        常细胞要高,且细胞核会出现致密的浓染或呈碎块状致                            时,各药物浓度组细胞的增殖抑制率均显著升高(P<
        密浓染。利用图像分析软件 Image-Pro Plus 6.0 计数凋                 0.05或P<0.01),且呈明显的浓度和时间依赖趋势。木
        亡细胞数和细胞总数,并计算细胞凋亡率[细胞凋亡率                            香烃内酯在 10、20、30 μmol/L 浓度下作用 48 h 后,表现
        (%)=凋亡细胞数/细胞总数×100%]。                               出较为明显的细胞增殖抑制作用,故选择 10、20、30
                                                            μmol/L 作用 48 h 进行后续试验。各组细胞增殖抑制率
        2.4 木香烃内酯对SK-BR-3细胞迁移的影响考察
                                                            测定结果见表1。
            取对数生长期的 SK-BR-3 细胞,以 5×10 个/孔的密
                                               5
                                                               表1 各组细胞增殖抑制率测定结果(x±±s,n=5)
        度接种于 6 孔板中,每孔加入 2 mL 完全培养基,于细胞
                                                            Tab 1 Inhibitory rate of proliferation of cells in each
        培养箱中培养至细胞完全铺满,然后用200 μL移液枪枪
                                                                   group(x±±s,n=5)
        头在单层细胞上作“一”字划痕。随后用PBS洗涤2次,
                                                                                        细胞增殖抑制率,%
        对漂浮细胞和损伤细胞进行清洗和去除,之后将细胞分                            组别
                                                                               24 h       48 h       72 h
        为空白对照组和木香烃内酯 10、20、30 μmol/L 浓度组。                   空白对照组               0          0          0
        空白对照组加入无血清培养液2 mL,木香烃内酯给药组                          木香烃内酯10 μmol/L浓度组  10.228±4.357 *  16.219±3.262 *  36.046±5.605 **
                                                            木香烃内酯20 μmol/L浓度组  54.543±3.190 **  65.205±3.171 **  86.416±4.085 **
        分别加入终浓度为 10、20、30 μmol/L的木香烃内酯培养
                                                            木香烃内酯30 μmol/L浓度组  65.146±3.051 **  81.473±3.725 **  88.903±2.707 **
        液,每组设3个复孔。细胞在培养0、24、48 h后用倒置显                       木香烃内酯40 μmol/L浓度组  71.685±5.012 **  86.975±1.912 **  90.995±2.677 **
        微镜观察其愈合情况并拍照。利用Image J V1.8.0软件                     木香烃内酯50 μmol/L浓度组  87.579±2.487 **  92.409±1.989 **  93.650±2.710 **
                                                                                      **
                                                                               *
        分析并计算细胞的迁移率[细胞迁移率(%)=(0 h 划痕                           注:与空白对照组比较,P<0.05, P<0.01
                                                                                   *
                                                               Note:vs. blank control group,P<0.05, P<0.01
                                                                                          **
        面积-培养后划痕面积)/0 h划痕面积×100%]。
                                                            3.2  木香烃内酯对SK-BR-3细胞凋亡的影响
        2.5  木香烃内酯对 SK-BR-3 细胞中 Bcl-2、Bax、Cas-
                                                                空白对照组细胞轮廓清晰、形态规则、细胞质饱满、
        pase-3、Cleaved Caspase-3蛋白表达的影响考察
                                                            贴壁较好。与空白对照组比较,木香烃内酯 10、20、30
            采用 Western blotting 法进行检测。取对数生长期
                                                            μmol/L浓度组细胞数量明显减少、结构松散、体积缩小、
                              7
        的SK-BR-3细胞,以 1×10 个/瓶的密度接种于细胞培养
                                                            间隙变大,且多数细胞轮廓消失、皱缩变圆,贴壁不良;
        瓶中,待细胞贴壁后,将细胞分为空白对照组和木香烃
                                                            随木香烃内酯浓度的增加,细胞凋亡率显著升高(P<
        内酯 10、20、30、40 μmol/L 浓度组(增加 40 μmol/L 浓度
                                                            0.05 或 P<0.01)。各组细胞形态学显微图见图 1,细胞
        组以反映凋亡相关蛋白表达水平的变化趋势)。空白对
                                                            凋亡率测定结果见图2。
        照组加入 3 mL 完全培养基,试验组分别加入终浓度为
        10、20、30、40 μmol/L 的木香烃内酯培养液,每组设 3 个
        复瓶,分别培养 48 h。收集各组细胞,加入预先配制的
        RIPA 细胞裂解液(内含 1%的 PMSF 及 1%磷酸酶抑制
        剂)100 μL,于冰上裂解 30 min 后,于 4 ℃下以 13 500
        r/min离心10 min,提取总蛋白,用BCA蛋白检测试剂盒
        测定蛋白浓度。取蛋白变性后,进行十二烷基硫酸钠-                                   A.空白对照组             B.木香烃内酯10 μmol/L浓度组
        聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)电泳,然后转膜,以 5%脱脂奶
        粉在 4 ℃封闭 12 h;TBST 缓冲液清洗,然后加入兔抗
        Caspase-3、Bax、Bcl-2 、Cleaved Caspase-3、GAPDH 一抗
        (1 ∶ 1 000),于4 ℃下孵育过夜;TBST 缓冲液清洗,加入
        HRP 标记的羊抗兔 IgG 二抗(1 ∶ 2 000),室温孵育 3 h;
        TBST 缓冲液清洗,用 ECL 显色剂显色,利用化学发光                         C.木香烃内酯20 μmol/L浓度组      D.木香烃内酯30 μmol/L浓度组
        成像系统曝光并拍照。运用 Quantity One V4.6.6图像分                 图1 各组细胞形态学显微图(Hoechst 33258染色,×200)
        析软件检测条带的灰度值,以GAPDH为内参,计算各目                          Fig 1 Morphological micrographs of cells in each
        的蛋白相对表达水平。                                                 group(Hoechst 33258 staining,×200)


        ·1344  ·  China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 11                                中国药房    2020年第31卷第11期
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