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入终浓度为 10、20、30 μmol/L 的木香烃内酯培养液,每 2.6 统计学分析
组设 5 个复孔,然后培养 48 h 后,弃去培养基,于 4 ℃下 采用 GraphPad Prism 6.0 软件对数据进行统计分
用4%多聚甲醛溶液固定30 min;用PBS洗涤细胞2次, 析。计量资料以 x±s 表示,组间比较采用 t 检验。P<
每次 3~5 min;加入 500 μL Hoechst 33258 染色液,室温 0.05 表示差异有统计学意义。
避光染色 10 min,吸除染色液,用 PBS 洗涤 2 次,每次 3 结果
3~5 min;然后置于倒置荧光显微镜下观察,每孔随机选 3.1 木香烃内酯对SK-BR-3细胞增殖的影响
择5个视野拍照。镜下可见,凋亡细胞的荧光强度比正 与空白对照组比较,木香烃内酯作用 24、48、72 h
常细胞要高,且细胞核会出现致密的浓染或呈碎块状致 时,各药物浓度组细胞的增殖抑制率均显著升高(P<
密浓染。利用图像分析软件 Image-Pro Plus 6.0 计数凋 0.05或P<0.01),且呈明显的浓度和时间依赖趋势。木
亡细胞数和细胞总数,并计算细胞凋亡率[细胞凋亡率 香烃内酯在 10、20、30 μmol/L 浓度下作用 48 h 后,表现
(%)=凋亡细胞数/细胞总数×100%]。 出较为明显的细胞增殖抑制作用,故选择 10、20、30
μmol/L 作用 48 h 进行后续试验。各组细胞增殖抑制率
2.4 木香烃内酯对SK-BR-3细胞迁移的影响考察
测定结果见表1。
取对数生长期的 SK-BR-3 细胞,以 5×10 个/孔的密
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表1 各组细胞增殖抑制率测定结果(x±±s,n=5)
度接种于 6 孔板中,每孔加入 2 mL 完全培养基,于细胞
Tab 1 Inhibitory rate of proliferation of cells in each
培养箱中培养至细胞完全铺满,然后用200 μL移液枪枪
group(x±±s,n=5)
头在单层细胞上作“一”字划痕。随后用PBS洗涤2次,
细胞增殖抑制率,%
对漂浮细胞和损伤细胞进行清洗和去除,之后将细胞分 组别
24 h 48 h 72 h
为空白对照组和木香烃内酯 10、20、30 μmol/L 浓度组。 空白对照组 0 0 0
空白对照组加入无血清培养液2 mL,木香烃内酯给药组 木香烃内酯10 μmol/L浓度组 10.228±4.357 * 16.219±3.262 * 36.046±5.605 **
木香烃内酯20 μmol/L浓度组 54.543±3.190 ** 65.205±3.171 ** 86.416±4.085 **
分别加入终浓度为 10、20、30 μmol/L的木香烃内酯培养
木香烃内酯30 μmol/L浓度组 65.146±3.051 ** 81.473±3.725 ** 88.903±2.707 **
液,每组设3个复孔。细胞在培养0、24、48 h后用倒置显 木香烃内酯40 μmol/L浓度组 71.685±5.012 ** 86.975±1.912 ** 90.995±2.677 **
微镜观察其愈合情况并拍照。利用Image J V1.8.0软件 木香烃内酯50 μmol/L浓度组 87.579±2.487 ** 92.409±1.989 ** 93.650±2.710 **
**
*
分析并计算细胞的迁移率[细胞迁移率(%)=(0 h 划痕 注:与空白对照组比较,P<0.05, P<0.01
*
Note:vs. blank control group,P<0.05, P<0.01
**
面积-培养后划痕面积)/0 h划痕面积×100%]。
3.2 木香烃内酯对SK-BR-3细胞凋亡的影响
2.5 木香烃内酯对 SK-BR-3 细胞中 Bcl-2、Bax、Cas-
空白对照组细胞轮廓清晰、形态规则、细胞质饱满、
pase-3、Cleaved Caspase-3蛋白表达的影响考察
贴壁较好。与空白对照组比较,木香烃内酯 10、20、30
采用 Western blotting 法进行检测。取对数生长期
μmol/L浓度组细胞数量明显减少、结构松散、体积缩小、
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的SK-BR-3细胞,以 1×10 个/瓶的密度接种于细胞培养
间隙变大,且多数细胞轮廓消失、皱缩变圆,贴壁不良;
瓶中,待细胞贴壁后,将细胞分为空白对照组和木香烃
随木香烃内酯浓度的增加,细胞凋亡率显著升高(P<
内酯 10、20、30、40 μmol/L 浓度组(增加 40 μmol/L 浓度
0.05 或 P<0.01)。各组细胞形态学显微图见图 1,细胞
组以反映凋亡相关蛋白表达水平的变化趋势)。空白对
凋亡率测定结果见图2。
照组加入 3 mL 完全培养基,试验组分别加入终浓度为
10、20、30、40 μmol/L 的木香烃内酯培养液,每组设 3 个
复瓶,分别培养 48 h。收集各组细胞,加入预先配制的
RIPA 细胞裂解液(内含 1%的 PMSF 及 1%磷酸酶抑制
剂)100 μL,于冰上裂解 30 min 后,于 4 ℃下以 13 500
r/min离心10 min,提取总蛋白,用BCA蛋白检测试剂盒
测定蛋白浓度。取蛋白变性后,进行十二烷基硫酸钠- A.空白对照组 B.木香烃内酯10 μmol/L浓度组
聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)电泳,然后转膜,以 5%脱脂奶
粉在 4 ℃封闭 12 h;TBST 缓冲液清洗,然后加入兔抗
Caspase-3、Bax、Bcl-2 、Cleaved Caspase-3、GAPDH 一抗
(1 ∶ 1 000),于4 ℃下孵育过夜;TBST 缓冲液清洗,加入
HRP 标记的羊抗兔 IgG 二抗(1 ∶ 2 000),室温孵育 3 h;
TBST 缓冲液清洗,用 ECL 显色剂显色,利用化学发光 C.木香烃内酯20 μmol/L浓度组 D.木香烃内酯30 μmol/L浓度组
成像系统曝光并拍照。运用 Quantity One V4.6.6图像分 图1 各组细胞形态学显微图(Hoechst 33258染色,×200)
析软件检测条带的灰度值,以GAPDH为内参,计算各目 Fig 1 Morphological micrographs of cells in each
的蛋白相对表达水平。 group(Hoechst 33258 staining,×200)
·1344 · China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 11 中国药房 2020年第31卷第11期