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2.2 齐墩果酸药液配制 Transwell小室上层中,小室下层加入DMEM培养基(含
精密称取齐墩果酸对照品适量,溶于二甲基亚砜 1 10%FBS)800 μL,培养 24 h。按“2.4.1”项下方法分组、
mL 中,配成浓度为 1×10 µmol/L 的母液,于-20 ℃保 给药,培养24 h后,取出小室,用棉签擦去小室内侧底部
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存;用时取上述母液适量,加完全培养基稀释,经 0.22 未穿膜的细胞,经多聚甲醛固定、结晶紫染色液染色后,
µm微孔滤膜滤过后,即得,备用。 在显微镜下选取5个不同视野观察,计算各组细胞迁移
2.3 细胞毒性检测 数目(迁移细胞被染成紫色)。上述试验重复3次。
采用 CCK-8 法检测。取对数生长期的 SKOV3 细 2.6 Transwell侵袭实验
胞,以 4 000 个/孔接种于 96 孔板中,培养 24 h 时将细胞 Matrigel胶融化后均匀铺于Transwell小室底部上层
随机分为对照组及不同浓度药物组,另设不含细胞只含 中,37 ℃放置致凝固。其余操作同“2.5”项下方法,选取
培养基的空白组,每组设6个复孔。各给药组分别加入 5 个不同视野在显微镜下观察,计算各组细胞侵袭数
齐墩果酸终浓度为 10、20、40、60、80、100 μmol/L(浓度 目。上述试验重复3次。
2.7 相关基因mRNA表达检测
设置参考文献[19])的含药完全培养基100 μL,对照组和
采用实时荧光定量 PCR 法检测。SKOV3 细胞按
空白组加入完全培养基 100 μL,分别于培养 12、24、36、
“2.4.1”“2.4.2”项下方法分组、给药、培养后,收集细胞,
48 h时,加入CCK-8试剂10 μL ,继续培养2 h后,使用酶
运用 TRIzol TM RNA 提取试剂提取细胞 RNA,将其逆转
标仪于450 nm波长处测定各孔吸光度(A),计算细胞存活
录为 cDNA 后,采用实时荧光定量 PCR 仪检测 NF-κB
率:细胞存活率(%)=(A 试验组-A 空白组)/(A 对照组-A 空白组)×
p65、PRL-3、TNF-α、IL-6、E-cadherin 等编码基因 mRNA
100%。上述试验重复3次。
的表达水平。PCR 反应体系(共 20 µL):cDNA 模板 2
2.4 分组、造模与给药
µL,上、下游引物各 1 µL,荧光定量 PCR 试剂 10 µL,无
2.4.1 齐墩果酸对 SKOV3 细胞的作用 取 SKOV3 细
酶水 6 µL。PCR 扩增条件:95 ℃预变性 2 min;95 ℃变
胞,以5×10 个/皿接种于细胞培养皿中培养;待细胞生长
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性 10 s,60 ℃退火 30 s,72 ℃延伸 15 s,共 40 个循环(引
融合至 80%时,将其随机分为对照组和齐墩果酸低、高
物序列见表1)。以GAPDH为内参,采用2 -ΔΔCt 法计算相
剂量药物组(剂量设置参考“2.3”项下结果),每组设3个
关基因mRNA的相对表达量。上述试验重复3次。
复孔。药物组分别加入低、高剂量齐墩果酸含药完全培
表1 引物序列
养基5 mL,对照组加入完全培养基5 mL,培养24 h。
Tab 1 Primer sequence
2.4.2 齐墩果酸对 LPS 诱导 SKOV3 细胞的作用 取
基因名称 引物序列 产物长度,bp
SKOV3 细胞,以 5×10 个/皿接种于细胞培养皿中培养; GAPDH 正向:5′-TGTTCGTCATGGGTGTGAAC-3′ 154
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待细胞生长融合至 80%时,将其随机分为对照组、LPS 反向:5′-ATGGCATGGACTGTGGTCAT-3′
NF-κB p65 正向:5′-GCGAGAGGAGCACAGATACC-3′ 120
模型组和齐墩果酸低、高剂量药物组(剂量设置参考
反向:5′-GCACAGCATTCAGGTCGTAG-3′
“2.3”项下结果),每组设 3 个复孔。对照组加入完全培 PRL-3 正向:5′-GGGACTTCTCAGGTCGTGTC-3′ 130
养基5 mL,模型组加入LPS终浓度为100 µg/L 的含药完 反向:5′-AGCCCCGTACTTCTTCAGGT-3′
TNF-α 正向:5′-CCATGTCTTTCTACCCTAATC-3′ 98
全培养基 5 mL ,药物组加入为 100 µg/L LPS 和低、高 反向:5′-AGCTGCTCTGTCGGATG-3′
[20]
剂量齐墩果酸含药完全培养基5 mL,培养24 h。 IL-6 正向:5′-AAGCAGAGCTGTGCAGATGAGTA-3′ 280
2.4.3 齐墩果酸对 NF-κB p65 转染的 SKOV3 细胞的作 反向:5′-TGTCCTGCAGCCACTGGTTC-3′
E-cadherin 正向:5′-GAACGCATTGCCACATACAC-3′ 120
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用 取SKOV3细胞,以5×10 个/皿接种于细胞培养皿中 反向:5′-GAATTCGGGC TTGTTGTCAT-3′
培养;待细胞生长融合至80%时,将其随机分为对照组、 2.8 相关蛋白表达检测
NF-κB p65 过表达模型组和齐墩果酸低、高剂量药物组 采 用 Western blotting 法 检 测 。 SKOV3 细 胞 按
(剂量设置参考“2.3”项下结果),模型组及药物组加入 “2.4.1”~“2.4.3”项下方法分组、给药、培养后,收集细
NF-κB p65 过表达载体(Lipofectamine 2000 转染试剂 胞,运用 M-PER 哺乳动物蛋白提取试剂提取蛋白,后
TM
TM
10 µL 与 NF-κB p65 质粒 10 µg 于室温下孵育 20 min 即 用BCA试剂盒测定蛋白浓度。随后将蛋白于95 ℃水浴
得)转染12 h后,药物组分别加入低、高剂量齐墩果酸含 中变性 5 min 后即得蛋白样品。取蛋白样品 40 µg 在
药完全培养基5 mL,对照组及模型组给予完全培养基5 100 V、80 mA 的电泳条件下进行 SDS-PAGE,在 25 V、
mL,培养24 h。 1.0 A条件下转膜至PVDF膜(0.45 µm)上,以5%脱脂牛
2.5 Transwell迁移实验 奶封闭 1 h 后,加入 NF-κB p65、PRL-3、TNF-α、IL-6、
将 SKOV3 细胞用不含 FBS 的 DMEM 培养基培养 E-cadherin、β-actin等一抗(稀释度均为1 ∶ 1 000),在4 ℃
24 h,使其处于饥饿状态。SKOV3细胞经胰蛋白酶消化 条件下孵育过夜,TBST 溶液清洗 10 min×3 次,加入
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后用DMEM培养基制成细胞悬液,以1×10 个/孔加入到 辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔 IgG 二抗(稀释度
·1192 · China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 10 中国药房 2020年第31卷第10期