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2 方法 后,随机分为假手术组、模型组和EGCG组(5 mg/g,以生
2.1 细胞试验 理盐水为溶剂;剂量参照前期预试验结果),每组15只。
2.1.1 细胞模型构建 采用TBHP处理H9C2心肌细胞 假手术组和模型组小鼠均灌胃等体积生理盐水,EGCG
构建心肌缺血再灌注损伤细胞模型:将细胞接种于含 组小鼠灌胃相应药物,每日1次,连续7 d。末次给药12
10%胎牛血清的DMEM高糖培养基(以下简称“完全培 h 后,采用前降支结扎法复制心肌缺血再灌注损伤小鼠
养基”)中,置于 37 ℃、5%CO2、饱和湿度的培养箱中培 模型:小鼠吸入异氟烷(3 mL/kg)进行麻醉,以仰卧位固
养(培养条件下同)。取对数生长期的细胞适量,用 定,切开气管,连接小动物呼吸机辅助呼吸(呼吸频率:
0.25%胰蛋白酶消化后,以 800 r/min离心 5 min,收集细 80次/min,潮气量:100 mL,呼吸时间比:1 ∶ 1)。采用7/0
胞,用DMEM高糖培养基重悬,以5×10 个/mL的密度按 号缝合线于小鼠左侧第4肋间入胸,并以滑结结扎冠状
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2 mL/孔接种至 6 孔板中,培养 48 h。吸弃上清液,用磷 动脉左前降支,造成缺血30 min;然后解开滑结,恢复再
酸盐缓冲液(PBS,pH 为 7.2~7.4)洗涤 2 次后,加入 100 灌注 4 h,建立心肌缺血再灌注损伤模型。假手术组用
μmol/L TBHP 溶液(以完全培养基为溶剂,剂量根据本 7/0缝合线穿过左前降支而不结扎,其余操作同上。
研究前期预试验确定)500 μL,培养12 h,造成缺氧;随后 2.2.2 心肌梗死面积检测 采用伊文思蓝和 TTC 双染
换用完全培养基,继续培养,进行再灌注。 色法检测。取各组小鼠 6 只,于下腔静脉注射 2%伊文
2.1.2 细胞存活率检测 采用 MTS 法检测。取对数生 思蓝染色试剂 0.2 mL 后,脱颈处死,剖开胸腔,暴露心
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长期的细胞适量,以 2.5×10 个/mL 的密度按 200 μL/孔 脏,当心脏右侧变蓝时,迅速取出心脏,用生理盐水冲
接种至 96 孔板中,培养 48 h。将细胞随机分为对照 洗,置于-20 ℃冷冻保存。制备厚约1 mm的心脏切片
组、模型组和 EGCG 不同剂量组(参照本课题组前期预 5片,置于1%TTC染料中,于37 ℃孵育20 min。用相机
试验结果,剂量分别为 3.125、6.25、12.5、25、50、100、 拍照后,采用 Image J 1.52 软件分析[伊文思蓝染色的非
200 μmol/L),每组设 6 个复孔。吸弃各孔上清液,对照 缺血性心肌呈深蓝色,梗死区(INF)则呈苍白色;TTC染
组和模型组加入完全培养基0.5 mL,各给药组加入含相 色后呈淡红色的活组织被定义为危险区(AAR)],并计
应药物的完全培养基0.5 mL,继续培养30 min。除对照 算同一切面内心肌梗死面积占横截面积百分比(即 INF
组外,其余各组细胞均按“2.1.1”项下方法复制心肌缺血 与切片横截总面积的比值)。
再灌注损伤模型。再灌注 3 h 后,每孔加入 MTS 溶液 2.2.3 血清指标检测 取各组余下 9 只小鼠,均摘除眼
(以DMEM高糖培养基为溶剂)100 μL,培养3 h后,使用 球取血,室温放置1 h后,于4 ℃下以2 000 r/min离心10
酶标仪于490 nm波长处检测各孔的吸光度值,并计算细 min,分离血清。严格按照相应试剂盒说明书操作,采用
胞存活率(细胞存活率=试验组细胞平均吸光度值/对照 WST-1法以酶标仪检测小鼠血清中SOD的活性及MDA
组细胞平均吸光度值×100%)。上述试验重复3次。 的含量。
2.1.3 凋亡蛋白表达量检测 采用 Western blotting 法 2.2.4 心脏组织中凋亡蛋白表达量及通路相关蛋白磷
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检测。取对数生长期的细胞适量,以5×10 个/mL的密度 酸化水平检测 采用Western blotting法检测。取“2.2.3”
按2 mL/孔接种至6孔板中,培养24 h。将细胞随机分为 项下各组小鼠心脏组织适量,匀浆,以12 000 r/min离心
对照组、模型组和EGCG低、高剂量组(100、200 μmol/L, 10 min,超声(功率:250 W,频率:25 kHz)粉碎,以12 000
剂量设置参考“2.1.2”项检测结果),每组设3个复孔。吸 r/min 离心 30 min,取上清液,采用 BCA 法测定蛋白浓
取各孔上清液,对照组和模型组加入完全培养基2 mL, 度。蛋白经变性后,进行 SDS-PAGE 电泳,电泳后转移
各给药组加入含相应药物的完全培养基2 mL,继续培养 至PVDF膜上,以5%脱脂奶粉室温封闭2 h,用TBST溶
48 h。除对照组外,其余各组细胞均按“2.1.1”项下方法 液洗膜 10 min×3 次,加入相应一抗[GAPD 的稀释度为
复制心肌缺血再灌注损伤模型。再灌注 3 h 后,裂解细 1 ∶ 5 000,其余蛋白的稀释度均为 1 ∶ 1 000],4 ℃孵育
胞,采用 BCA 法测定蛋白浓度。蛋白经变性后,进行 过夜;用 TBST 溶液洗膜 10 min×3 次,加入相应二抗
SDS-PAGE 电泳,然后转移至 PVDF 膜上,以 5%脱脂奶 (1 ∶ 5 000),室温孵育 2 h;TBST 溶液洗膜 10 min×3 次,
粉室温封闭 2 h,用 TBST 溶液洗膜 10 min×3 次;加入相 以 ECL 试剂显色后,置于凝胶成像系统上成像,并使用
应一抗[GAPDH 的稀释度为 1 ∶ 5 000,Bcl-2、Bax 的稀释 Image Lab 5.2.1 软件分析。凋亡蛋白(Bcl-2、Bax)的相
度均为 1 ∶ 1 000],4 ℃孵育过夜;用 TBST 溶液洗膜 10 对表达量以其与内参(GAPDH)条带的灰度值比值来表
min×3 次,加入相应二抗(稀释度为 1 ∶ 5 000),室温孵育 示,PI3K/Akt 通路相关蛋白的磷酸化水平以 p-PI3K 与
2 h;TBST溶液洗膜10 min×3次,以ECL试剂显色后,置 PI3K、p-Akt 与 Akt 条带的灰度值比值(即 p-PI3K/PI3K、
于凝胶成像系统上成像,并使用 Image Lab 5.2.1软件分 p-Akt/Akt值)来表示。上述实验重复3次。
析。Bcl-2、Bax 的相对表达量以其与内参(GAPDH)条 2.3 统计学方法
带的灰度值比值来表示。上述试验重复3次。 采用SPSS 22.0软件对数据进行统计分析。计量资
2.2 动物实验 料 以 x ± s 表 示 ,多 组 间 比 较 采 用 单 因 素 方 差 分 析
2.2.1 分组、造模与给药 所有小鼠均适应性喂养 1 周 (One-way ANOVA),两组间比较采用Bonferroni校正的
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