Page 53 - 《中国药房》2026年8期
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入蒸馏水 600 mL,按相同方法煮沸后用文火煎煮 20                       assessment  of  insulin  resistance,HOMA-IR):HOMA-
                                                                                               [5]
          min,滤出煎液;合并两次煎液,浓缩至生药含量为 1.11                      IR=FBG(mmol/L)×FINS(mU/L)/22.5 。另每组随机
          g/mL,置于4 ℃冷藏保存。                                    选取“2.4”项下 6 只大鼠的卵巢组织,制备成匀浆液,以
          2.2 来曲唑药液制备                                        4 000 r/min离心10 min后收集上清液,按照ELISA试剂
              称取羧甲基纤维素钠对照品1.0 g,加入蒸馏水搅拌                      盒说明书进行操作,检测卵巢组织中TNF-α、IL-18和IL-
          至完全溶解,定容至 100 mL,配制成 1% 羧甲基纤维素                     1β水平。
          钠溶液。取来曲唑对照品25 mg,混悬于100 mL上述溶                      2.7 卵巢组织形态观察
          液中,充分混匀,配制成质量浓度为 0.25 mg/mL 的来曲                        取“2.4”项下各组剩余 6 只大鼠的卵巢组织,置于
          唑药液。                                               4% 多聚甲醛溶液中固定 24 h,随后经磷酸盐缓冲液漂
          2.3 分组、建模与给药                                       洗、梯度乙醇脱水、二甲苯透明及浸蜡处理,最后进行石
              将大鼠按随机数字表法分为正常(Con)组、PCOS                      蜡包埋、切片(厚度 5 μm)并进行 HE 染色,于光学显微
          组、JPHTF 低剂量(JPHTF-L)组、JPHTF 高剂量(JPHTF-             镜下观察卵巢组织形态,并统计视野内囊性卵泡和黄体
          H)组、JPHTF-H+rHMGB1 组和二甲双胍组,每组 12 只。                数量,取5个视野的平均值。囊性卵泡表现为:卵泡腔异
          除Con组外,其余各组大鼠均建立PCOS模型:采用来曲                        常扩张,直径显著大于同期正常卵泡,颗粒细胞层变薄、
          唑药液(4 mL/kg)灌胃,同时喂食高脂饲料(脂肪 45%、                    排列紊乱甚至脱落,无明显卵母细胞或仅存退化卵母细
                                                  [8]
          碳水化合物 35%、蛋白质 20%),连续造模 21 d 。于造                   胞结构;黄体表现为:由排卵后的卵泡壁塌陷分化形成,
          模第 10 天开始进行阴道涂片观察,并采用 0.1% 亚甲基                     可见体积较大、胞质丰富的黄体细胞,伴有毛细血管增
          蓝染色液对阴道涂片进行染色,连续10 d观察到大鼠阴                         生及结缔组织填充。
          道上皮持续白细胞增多,无规律性动情周期或动情周期                           2.8 卵巢组织中 HMGB1/RAGE 通路相关蛋白表达
          紊乱或失去动情周期,则为造模成功。Con组大鼠灌胃                          检测
          1%羧甲基纤维素钠溶液,同时喂食普通饲料,于造模大                              取“2.6”项下各组大鼠的卵巢组织,加入 RIPA 裂解
          鼠同期(造模第 10 天)进行阴道涂片观察,选取连续 4 d                     液,研磨匀浆后于 4 ℃下以 12 000 r/min 离心 15 min,收
          的阴道涂片进行染色镜检。                                       集上清液并测定蛋白浓度,随后于 95 ℃水浴中变性 5
              造模成功后,JPHTF-L组和JPHTF-H组大鼠分别灌                   min。取变性蛋白,电泳分离后转膜,用 5% 脱脂牛奶封
                         [5]
          胃 5.54、11.07 g/kg 的 JPHTF 药液;JPHTF-H+rHMGB1        闭2 h,加入HMGB1、RAGE、p-NF-κB、NF-κB、β-actin一
          组大鼠灌胃 11.07 g/kg 的 JPHTF 药液,同时尾静脉注射                抗(稀释比例均为1∶1 500),于4 ℃孵育过夜;洗膜后加
                          [7]
          8 μg/kg 的 rHMGB1 ;二甲双胍组大鼠灌胃 0.27 g/kg 的            入相应二抗(稀释比例为 1∶4 000),室温孵育 2 h;采用
                  [9]
          二甲双胍 ;Con组和PCOS组同法给予生理盐水,每日1                       ECL 化学发光法显影,使用 Image-Pro Plus 软件分析条
          次,连续干预4周。干预期间,Con组大鼠全程喂食普通                         带的灰度值,以目的蛋白与内参蛋白(β-actin)的灰度值
          饲料,其余各组大鼠均持续喂食高脂饲料。                                比值作为目的蛋白的表达水平,以p-NF-κB与NF-κB的
          2.4 样本采集                                           比值作为NF-κB蛋白的磷酸化水平。
              干预结束24 h后,称量全部大鼠体重,然后连续5 d                     2.9 统计学方法
          对大鼠进行阴道涂片观察,以监测各组大鼠动情周期变                               采用 GraphPad Prism 8.0.1 软件对数据进行统计分
          化,选择动情间期进行取样。采用尾尖取血,直接用血                           析。计量资料以x±s表示,多组间比较采用单因素方差
          糖 仪 检 测 全 部 大 鼠 空 腹 血 糖(fasting  blood  glucose,   分析,进一步两两比较采用 SNK-q 检验。检验水准
          FBG);然后麻醉大鼠,取腹动脉血 3 mL,待测。取血结                      α=0.05。
          束后,采用颈椎脱臼法处死所有大鼠,开腹取完整卵巢                           3 结果
          组织,待检。                                             3.1 大鼠动情周期变化
          2.5 卵巢系数测定                                             通过对大鼠阴道涂片进行连续 10 d 的动态观察发
              取“2.4”项下各组大鼠卵巢组织,除去表面脂肪,称                      现,Con组大鼠呈现规律的动情周期变化,其阴道上皮细
          量卵巢湿重,计算卵巢系数:卵巢系数=双侧卵巢湿重                           胞形态随动情阶段不同而发生典型演变:动情前期以有
          之和(mg)/体重(g)。                                      核上皮细胞为主,动情期转变为大量无核角质化上皮细
          2.6 血清中激素水平及卵巢组织中炎症因子水平检测                          胞,动情后期可见有核上皮细胞、角质化上皮细胞及白
              取“2.4”项下各组大鼠血液,以 3 500 r/min 离心 10             细胞,动情间期则以白细胞为主。PCOS 大鼠的阴道涂
          min后分离血清,按照ELISA试剂盒说明书进行操作,检                       片持续呈现动情间期或动情后期的细胞学特征,未见正
          测血清中 FINS、FSH、LH、T、E2水平,并计算 LH/FSH 比               常的动情阶段演进,表明大鼠的动情周期完全紊乱。结
          值和胰岛素抵抗稳态模型评估指数(homeostasis model                  果见图1。


          中国药房  2026年第37卷第8期                                                China Pharmacy  2026 Vol. 37  No. 8    · 1011 ·
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