Page 46 - 《中国药房》2026年2期
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2.2 大鼠CRF模型构建 μmol/L DCFH-DA 探针工作液于黑色 96 孔板中充分混
大鼠适应性喂养 1 周后,选取 55 只进行模型构建。 合,于37 ℃避光孵育30 min后,立即加入4 ℃预冷磷酸
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参考相关文献 和预实验结果确定,用含0.5%腺嘌呤的 盐缓冲液终止反应,使用酶标仪在激发波长530 nm条件
饲料喂养21 d建立CRF大鼠模型。喂养结束后,若大鼠 下立即检测荧光强度。荧光强度越高,代表ROS表达水
血肌酐(Serum creatinine,Scr)和尿素氮(blood urea ni‐ 平越高。
trogen,BUN)含量均显著升高,则初步判断 CRF 模型构 2.8 大鼠血清中氧化应激标志物和炎症因子水平检测
建成功。随后,随机选取2只造模大鼠安乐死后,镜下观 取“2.4.1”项下血清样本,按照试剂盒的操作方法分
察其肾脏出现肾间质纤维化和大量炎性细胞浸润等严 别检测各组大鼠血清中 SOD 和 MDA 水平,按照 ELISA
重病理改变,由此确认CRF大鼠模型造模成功。 试剂盒说明书操作检测TNF-α、IL-6、IL-1β水平。
2.3 分组及处理 2.9 大鼠肾组织中肾纤维化标志蛋白检测
将 50 只 CRF 大鼠随机分为模型组、益肾排毒方低 采用免疫组化法进行检测。取“2.6”项下肾组织石
剂量(益肾排毒方-L)组、益肾排毒方高剂量(益肾排毒 蜡切片,经脱蜡、水化、抗原修复、内源性过氧化物酶阻
方-H)组、益肾排毒方-H+pcDNA-NC组、益肾排毒方-H+ 断后,用 5% 牛血清白蛋白室温孵育 30 min,再于 37 ℃
pcDNA-TXNIP组,每组10只。另取10只正常大鼠作为 下用 Collagen Ⅲ、α-SMA、TGF-β1抗体(稀释比例均为
对照组,采用常规饲料喂养21 d。CRF大鼠模型构建成 1∶500)孵育 2 h,滴加二氨基联苯胺染色 5 min,水洗终
功次日,开始给药处理。益肾排毒方-L 组、益肾排毒 止,苏木精复染 1 min 后,脱水、透明、封片,使用显微镜
方-H 组大鼠分别灌胃 1.89、7.56 g/kg 益肾排毒方药液 观察阳性信号。阳性信号判定依据如下:在显微镜图像
(以生药量计,依据临床等效剂量换算),益肾排毒方-H+ 中,于目标组织结构的正确解剖部位(如肾间质、肌成纤
pcDNA-NC组、益肾排毒方-H+pcDNA-TXNIP组大鼠在 维细胞细胞质、肾小管上皮细胞细胞质)出现棕黄色或
灌胃 7.56 g/kg 益肾排毒方药液的基础上分别尾静脉注 褐色特异性染色颗粒。
射2.5 µL pcDNA-NC或pcDNA-TXNIP慢病毒质粒(1× 2.10 大鼠肾组织中TXNIP、NLRP3蛋白表达检测
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10 TU/mL) ,对照组和模型组大鼠分别灌胃等体积的 采用 Western blot 进行检测。取“2.4.2”项下冻存的
生理盐水,每日1次,连续8周。 各组大鼠右肾组织,使用含有蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑
2.4 样本采集 制剂的RIPA缓冲液裂解,提取蛋白质,使用BCA蛋白测
2.4.1 血清标本 定试剂盒测定蛋白浓度,加热变性。取变性后样品,电
末次给药 24 h 后,麻醉大鼠,抽取股动脉血于普通 泳分离后,转膜、封闭,加入 TXNIP、NLRP3、GAPDH 抗
生化管中,静置后离心分离血清,分别用于 ELISA 和生 体(稀释比例均为1∶1 000),于4 ℃下孵育过夜;次日,加
化检测。 入二抗(稀释比例为 1∶2 000),室温孵育 2 h。使用
2.4.2 组织标本 Amersham Biosciences ECL检测系统对蛋白条带进行可
大鼠取血后,于无菌操作台上取出双侧肾脏,剥离 视 化 ,并 通 过 Image J 软 件 分 析 目 的 蛋 白 与 内 参
被膜后将左侧肾脏置于 4% 多聚甲醛中固定,用于苏木 (GAPDH)的灰度值比值以表示目的蛋白的表达水平。
精-伊红(HE)、Masson 染色和免疫组化检测;右侧肾脏 2.11 统计分析
放入 20 mL 冻存管中,存入液氮罐,用于 Western blot 采用GraphPad Prism 9软件进行统计分析。计量资
检测。 料以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,进一
2.5 大鼠肾功能指标检测 步两两比较采用SNK-q检验。检验水准α=0.05。
取“2.4.1”项下血清样本,通过全自动生化分析仪检 3 结果
测各组大鼠血清中Scr和BUN水平。 3.1 益肾排毒方对CRF大鼠肾功能的影响
2.6 大鼠肾组织病理学观察 与对照组比较,模型组大鼠血清中Scr、BUN水平均
取“2.4.2”项下固定过夜的肾组织,经乙醇脱水、二 显著升高(P<0.05);与模型组比较,益肾排毒方-L组和
甲苯透明、石蜡包埋、浸蜡后,制成石蜡切片。取部分石 益肾排毒方-H组大鼠血清中Scr、BUN水平均显著降低
蜡切片脱蜡后分别进行常规HE和Masson染色,在显微 (P<0.05),且益肾排毒方-H 组降低更显著(P<0.05);
镜下观察各组大鼠肾组织的病理形态变化及纤维化 与益肾排毒方-H 组比较,益肾排毒方-H+pcDNA-NC 组
程度。 大鼠血清中上述指标差异无统计学意义(P>0.05);与
2.7 大鼠血清中ROS表达水平检测 益肾排毒方-H+pcDNA-NC 组比较,益肾排毒方-H+
取“2.4.1”项下血清样本,按1∶20比例用无菌磷酸盐 pcDNA-TXNIP组大鼠血清中Scr、BUN水平均显著升高
缓冲液进行稀释。取100 μL稀释后血清与等体积的10 (P<0.05)。结果见表1。
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