Page 27 - 《中国药房》2026年2期
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2.2 分组、造模与给药 2.8 肺组织中NF-κB、NLRP3、caspase-1蛋白表达检测
将大鼠随机分为正常组,模型组,蠲哮汤低、中、高 2.8.1 免疫组化实验
剂量组,阳性对照组,每组10只。除正常组外,其余各组 取“2.7”项下各组大鼠的肺组织切片,进行抗原修
[9]
大鼠均参考相关文献 方法造模:将大鼠置于气雾装置 复后再进行内源性过氧化物酶清除,以 PBS(含 10% 驴
内,在实验的第 1 天和第 8 天通过腹腔注射的方式给予 血清)封闭;加入 NF-κB、NLRP3、caspase-1 一抗(稀释
鸡卵清白蛋白10 mg和氢氧化铝溶液100 mg;从实验的 比例均为 1∶1 000),于 4 ℃下孵育过夜;加入相应二抗
第 14 天起,用 2% 鸡卵清白蛋白雾化吸入激发哮喘,每 (稀释比例为 1∶5 000),于室温下孵育;经 3,3′-二氨基
天 1 次,每次 0.5 h,连续 7 d。在雾化吸入同时,蠲哮汤 联苯胺显影、苏木精复染后漂洗,再经干燥、密封后,使
低、中、高剂量组大鼠分别按0.36、0.72、1.44 g/kg的剂量 用显微镜观察并采集图像,运用 Image J 图像分析软件
灌胃蠲哮汤药液(以生药量计。60 kg 成人的生药使用 对蛋白表达阳性区域(呈棕色)的平均光密度进行定量
量为 1.25 g/kg,根据剂量换算系数估算,大鼠等效剂量 分析。
约为成人的 6 倍;本文所设低、中、高 3 个剂量分别相当
2.8.2 Western blot实验
于临床等效剂量的 0.048、0.096、0.192 倍 ),阳性对照
[10]
取各组大鼠冻存的肺组织适量,研磨后加入裂解
组大鼠按 0.2 mg/kg 的剂量灌胃地塞米松(以生理盐水 液,匀浆,离心后分离上层蛋白;采用 BCA 法测定蛋白
[11]
为溶剂) ,正常组和模型组大鼠灌胃等体积生理盐 浓度后,以沸水浴加热使蛋白变性。取变性蛋白适量,
水,每天1次,连续7 d。
经凝胶电泳分离后转膜、封闭1 h;洗膜后,加入NF-κB、
2.3 肺功能指标检测 NLRP3、caspase-1、GAPDH一抗(稀释比例均为1∶1 000);
末次给药后,待各组大鼠适应 30 min,采用肺功能
洗膜后,加入相应二抗(稀释比例为1∶5 000),于室温下
检测仪记录其在呼吸稳定状态下的关键肺功能指标,包
孵育;洗膜后,进行显影、成像。采用 Image J 图像分析
括用力肺活量(forced vital capacity,FVC)、第0.3秒用力
软件对各蛋白的条带灰度值进行分析,以各目的蛋白与
呼气容积(forced expiratory volume in 0.3 second,FEV0.3 )
内参蛋白(GAPDH)的灰度值比值表示各目的蛋白的表
和呼气流量峰值(peak expiratory flow,PEF)。
2.4 取材 达水平。
2.9 肺组织中 NF-κB、NLRP3、caspase-1 mRNA 表达
检测肺功能指标后,以1%戊巴比妥钠(4 mL/kg)腹
腔注射麻醉各组大鼠,然后采集其腹主动脉血4 mL,离 检测
取各组大鼠冻存的肺组织适量,加入TRIzol试剂提
心后分离上层血清,备用。随后,将各组大鼠处死,切开
其颈气管,向气管内注射生理盐水1 mL,再慢慢抽出,重 取总RNA,经测定浓度、纯度后,按反转录试剂盒说明书
复 3 次,取抽出液 2.4 mL,即支气管肺泡灌洗液(bron‐ 方法将总 RNA 反转录成 cDNA,然后以此为模板,进行
choalveolar lavage fluid,BALF),离心,收集上清液,于 PCR 扩增。PCR 体系(25 μL)包括 cDNA 模板 2.0 μL,
-80 ℃下保存,备用。最后,剖取、分离各组大鼠肺脏, 2×SanTaqPCR Mix 12.5 μL,正、反向引物各 1.0 μL,去
取一部分置于4%多聚甲醛溶液中固定,用于HE染色观 离子水 8.5 μL。PCR 反应条件:95 ℃预变性 5 min;
察及免疫组化染色检测;余下部分经液氮快速冷冻后, 94 ℃变性1 min,55 ℃退火1 min,72 ℃延伸1.5 min,共
于-80 ℃下保存,备用。 30 个循环;最后,72 ℃终延伸 5 min。以 GAPDH 为内
2.5 血清炎症指标检测 参,采用 2 -ΔΔCt 法计算 NF-κB、NLRP3、caspase-1 mRNA
取各组大鼠血清样品适量,采用ELISA法检测其血 的相对表达量,结果以正常组为参照进行归一化处理。
清中 IL-1β、IL-18 水平,严格按照相应试剂盒说明书 PCR引物序列及产物大小见表1。
操作。 表1 PCR引物序列及产物大小
2.6 BALF中炎症细胞百分比检测 目的基因 方向 序列 产物大小/bp
取各组大鼠 BALF 适量,用磷酸盐缓冲液(PBS)重 NF-κB 正向 5′-ACCTGCCTCCTATGTCTTCCATCC-3′ 239
悬;取上述悬液0.1 μL,置于载玻片上,经晾干、涂片、固 反向 5′-CACTGAGTACACGTCGTCCACAC-3′
NLRP3 正向 5′-CTCGTCACCATGGGTTCTGGT-3′ 146
定后,进行瑞氏-吉姆萨染色,使用显微镜观察并计算淋
反向 5′-AACGGACACTCGTCATCTTCA-3′
巴细胞百分比、嗜酸性粒细胞百分比、中性粒细胞百分 caspase-1 正向 5′-CGTCTTGCCCTCATTATC-3′ 127
比(某细胞百分比=该细胞数/细胞总数×100%)。 反向 5′-CACCTCTTTCACCATCTC-3′
2.7 肺组织病理观察 GAPDH 正向 5′-TCATGACCACAGTCCATGCC-3′ 250
收集各组大鼠经 4% 多聚甲醛溶液固定好的肺组 反向 5′-TTCTAGA CGGCAGGTCAGGT-3′
织,用乙二胺四乙酸(EDTA)脱钙,再经乙醇梯度脱水、 2.10 统计学方法
石蜡包埋后切片(厚约 5 μm);取上述切片,进行 HE 染 采用SPSS 22.0软件对数据进行统计分析。计量资
色,再以中性树胶封片,使用显微镜观察其肺组织病理 料以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,进一
变化。 步两两比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
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