Page 72 - 《中国药房》2025年16期
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到聚偏二氟乙烯膜上,用 5% 脱脂牛奶封闭膜 2 h,然后 3 结果
与PCNA、p53、B7H1、PD-1、cGAS、STING、GAPDH抗体 3.1 柚皮苷调控 cGAS-STING 信号通路对 MDA-MB-
(稀释比例分别为 1∶3 000、1∶5 000、1∶7 000、1∶5 000、 231细胞增殖、凋亡的影响
1∶6 000、1∶3 000、1∶4 000)在4 ℃下孵育过夜。次日,用 3.1.1 细胞增殖变化
TBST缓冲液清洗3次后,加入二抗(稀释比例1∶4 000), 与空白组比较,柚皮苷低、中、高剂量组 MDA-MB-
在室温下孵育1 h;以ECL试剂曝光、显影后,使用Image 231细胞的EdU阳性率和OD450值均显著降低,且呈剂量
J 软件分析蛋白条带灰度值。以目的蛋白与内参蛋白 依赖性(P<0.05);而RU.521组的EdU阳性率和OD450值
均显著升高(P<0.05)。与柚皮苷高剂量组比较,柚皮
(GAPDH)的灰度值比值表示目的蛋白的表达水平。
苷高剂量+RU.521 组 MDA-MB-231 细胞的 EdU 阳性率
2.2 柚皮苷调控 cGAS-STING 信号通路对 MDA-MB-
231细胞免疫逃逸的影响 和OD450值均显著升高(P<0.05),结果见图1和表1。
2.2.1 细胞分组与干预
利用 Transwell 小室将“2.1.1”项下各组 MDA-MB-
231 细胞分别与 NK 细胞共孵育 48 h(MDA-MB-231 细
胞和 NK 细胞分别置于 Transwell 小室的上、下室,细胞
A.空白组 B.柚皮苷低剂量组 C.柚皮苷中剂量组
4
密度分别为 5×10 、5×10 个/小室),并依次命名为空
5
白+NK 组、柚皮苷低剂量+NK 组、柚皮苷中剂量+NK
组、柚皮苷高剂量+NK 组、RU.521+NK 组、柚皮苷高剂
量+RU.521+NK 组。除空白+NK 组的 MDA-MB-231 细
胞直接与 NK 细胞共孵育 48 h 外,其他各组的 MDA- D.柚皮苷高剂量组 E.RU.521组 F.柚皮苷高剂量+RU.521组
红色荧光:活跃增殖的细胞;蓝色荧光:总细胞核。
MB-231 细胞需要先经过药物预处理 48 h 后再与 NK 细
图1 各组MDA-MB-231细胞的增殖检测荧光图(EdU
胞共孵育 48 h。每组设置 6 个复孔,处理结束后检测相
染色)
应指标。
表1 各组 MDA-MB-231 细胞的 EdU 阳性率、OD450值
2.2.2 共孵育体系上清液中颗粒酶 B、TNF-α、IFN-γ 水
和细胞凋亡率比较(x±s,n=6)
平的检测
组别 EdU阳性率/% OD 450值 细胞凋亡率/%
收集“2.2.1”项下各组共孵育体系中的上清液,按照
空白组 32.89±1.56 1.16±0.09 5.88±0.15
ELISA 试剂盒说明书操作,检测其中颗粒酶 B、TNF-α、 柚皮苷低剂量组 27.73±1.25 a 1.01±0.08 a 9.23±0.41 a
IFN-γ的水平。 柚皮苷中剂量组 20.55±0.97 ab 0.84±0.08 ab 17.63±0.82 ab
柚皮苷高剂量组 12.68±0.71 abc 0.46±0.04 abc 29.65±1.43 abc
2.2.3 共孵育体系中NK细胞杀伤力的检测
RU.521组 38.44±1.71 a 1.39±0.12 a 2.11±0.10 a
按“2.2.1”项下方法将各组 MDA-MB-231 细胞、NK 柚皮苷高剂量+RU.521组 21.22±0.98 d 0.81±0.07 d 14.56±0.69 d
细胞共孵育 48 h 后,离心收集 50 μL 上清液,置于新的 a:与空白组比较,P<0.05;b:与柚皮苷低剂量组比较,P<0.05;c:
96 孔板中,每孔加入 50 μL 乳酸脱氢酶孵育 30 min,再 与柚皮苷中剂量组比较,P<0.05;d:与柚皮苷高剂量组比较,P<0.05。
加入50 μL终止液终止反应1 h,使用酶标仪检测450 nm 3.1.2 细胞凋亡变化
波长处的光密度(OD450 )值。此外,分别将 MDA-MB- 与空白组比较,柚皮苷低、中、高剂量组 MDA-MB-
4
5
231 细胞(5×10 个)、NK 细胞(5×10 个)、MDA-MB- 231 细胞凋亡率均显著升高(P<0.05),而 RU.521 组细
4
231 细胞(5×10 个,用 10 μL 30%Triton X-100 干预处 胞凋亡率显著降低(P<0.05);与柚皮苷高剂量组比较,
理)接种于96孔板中孵育48 h,离心收集50 μL上清液, 柚皮苷高剂量+RU.521 组 MDA-MB-231 细胞凋亡率显
著降低(P<0.05),结果见图2和表1。
置于新的 96 孔板中,每孔加入 50 μL 乳酸脱氢酶孵育
3.1.3 细胞中 PCNA、p53、B7H1、PD-1、cGAS、STING
30 min,再加入 50 μL 终止液终止反应 1 h 后,检测其
蛋白表达变化
OD450值。按下式计算 NK 细胞杀伤力,NK 细胞杀伤力
与空白组比较,柚皮苷低、中、高剂量组 MDA-MB-
(%)=(实验组 OD450值-MDA-MB-231 细胞单独培养 231 细胞中 PCNA、B7H1、PD-1 蛋白表达水平均显著降
的 OD450值-NK 细胞单独培养的 OD450值)/(MDA-MB-
低,p53、cGAS、STING 蛋白表达水平均显著升高,且上
231 细胞在 10 μL 30%Triton X-100 中孵育时的 OD450
述变化呈剂量依赖性(P<0.05);而 RU.521 组细胞中
值-MDA-MB-231细胞单独培养的OD450值)×100%。 PCNA、B7H1、PD-1 蛋白表达水平均显著升高,p53、
2.3 统计学分析 cGAS、STING 蛋白表达水平均显著降低(P<0.05)。与
采用 GraphPad Prism 8.0 软件进行统计分析。计量 柚皮苷高剂量组比较,柚皮苷高剂量+RU.521 组 MDA-
数据以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,进 MB-231 细胞中 PCNA、B7H1、PD-1 蛋白表达水平均显
一步两两比较采用 SNK-q 多重比较检验。检验水准 著升高,p53、cGAS、STING 蛋白表达水平均显著降低
α=0.05。 (P<0.05)。结果见图3和表2。
· 2014 · China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 16 中国药房 2025年第36卷第16期

