Page 60 - 《中国药房》2025年6期
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电图异常(频率>20 Hz或波幅>80 μV),即表示难治性 15 min),取上清,采用 BCA 法测定上清液中的蛋白浓
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癫痫大鼠造模成功 。在筛选过程中,10 只大鼠死亡,8 度。采用10%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分
只大鼠造模失败,最终获得62只难治性癫痫大鼠。 离,用 PVDF 膜转移分离的蛋白。将膜用 5% 脱脂奶粉
取60只难治性癫痫大鼠随机分为模型组、塞来昔布 封闭 2 h 后,向膜中加入 COX-2(稀释比例 1∶1 500)、
组(阳性对照)、柴胡加龙骨牡蛎汤组、柴胡加龙骨牡蛎 P-gp(稀释比例 1∶1 000)和 GAPDH(稀释比例 1∶4 000)
汤+空载组、柴胡加龙骨牡蛎汤+COX-2 过表达组,每组 抗体,4 ℃下孵育过夜;再加入辣根过氧化物酶标记的山
12 只。塞来昔布组和柴胡加龙骨牡蛎汤组大鼠分别于 羊抗兔 IgG 二抗(稀释比例 1∶4 000)。蛋白条带使用
每天同一时间灌胃20 mg/kg塞来昔布(以生理盐水为溶 ECL显影,并使用Image J软件进行定量分析,以目标蛋
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剂) 或12 g/kg柴胡加龙骨牡蛎汤1次;柴胡加龙骨牡蛎 白与内参蛋白(GAPDH)条带灰度值的比值表示目标蛋
汤+空载组和柴胡加龙骨牡蛎汤+COX-2 过表达组大鼠 白的相对表达量。上述实验重复3次。
每天灌胃12 g/kg柴胡加龙骨牡蛎汤1次,并分别通过尾 2.8 大鼠海马组织COX-2、P-gp mRNA表达检测
静脉注射慢病毒空载体或 COX-2 过表达慢病毒载体 采用 RT-qPCR 法检测。取“2.5”项下部分海马组
8
200 μL(病毒滴度均为5.0×10 TU/mL),每周1次;假手 织,采用TRIzol试剂提取总RNA,并用NanoDrop法测定
术组和模型组大鼠则给予灌胃+尾静脉注射 0.9% 生理 其浓度和纯度。之后,使用cDNA合成试剂盒合成第一
盐水。所有大鼠均连续给药/生理盐水8周。 链 cDNA,再在 RT-qPCR 仪上进行聚合酶链反应。反应
2.2 大鼠癫痫发作行为学观察 体系:SYBR Green Master Mix 10 μL,正反向引物各 0.4
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末次给药结束后,根据 Racine 分级标准 评估各组 μL,cDNA 5 μL,无菌超纯水4.2 μL。扩增条件:94 ℃预
大鼠癫痫发作行为学,具体标准为:0 级,癫痫未发作;1 变性 2 min;94 ℃变性 30 s,50 ℃退火 30 s,72 ℃延伸 1
级,面部肌肉抽搐;2级,颈部肌肉抽搐;3级,单侧前肢阵 min,共28个循环。使用2 -ΔΔCt 计算mRNA的相对表达水
挛、抽搐;4级,双侧前肢阵挛、抽搐、身体直立;5级,全身 平。COX-2正向引物为5′-CTGTATCCCGCCCTGCTG-
强直阵挛、双侧后肢和身体直立、倒地。 GTG-3′,反 向 引 物 为 5′-ACTTGCGTTGATGGTGGC-
2.3 大鼠海马组织CA3区病理形态学变化观察 TGTCTT-3′,产物长度为 211 kb;P-gp 正向引物为 5′-
Racine分级结束后,将大鼠断头并立即将脑组织取 AACACCCTGGTTGGTGAGAG-3′,反向引物为5′-CA-
出置于冰板上,迅速剖出海马体,每组随机选取6只大鼠 CCATCAAAACCAGCAATG-3′,产 物 长 度 为 185 kb;
的海马组织用4%多聚甲醛固定,石蜡包埋,切片(5 μm), GAPDH 正向引物为 5′-CCCATCTATGAGGGTTACGC-
进行 HE 染色,使用光学显微镜观察海马组织 CA3 区病 3′,反向引物为 5′-TTTAATGTCACGCACGATTTC-3′,
理学变化并拍照。 产物长度为112 kb。
2.4 大鼠海马组织细胞凋亡检测 2.9 统计学处理
取“2.3”项下制备的海马组织石蜡切片,进行脱蜡、 采用SPSS 22.0软件进行统计分析。满足正态分布
水化后,使用TUNEL反应混合液进行孵育和染色处理, 的计量资料以 x±s 表示,多组间比较采用方差分析,进
每组随机选择 5 个视野在光学显微镜下统计 TUNEL 阳 一步两两比较采用SNK-q检验。检验水准α=0.05。
性细胞(呈绿色)数量和细胞总数,计算细胞凋亡率。细胞 3 结果
凋亡率(%)=TUNEL阳性细胞数/视野总细胞数×100%。 3.1 各组大鼠癫痫发作行为学比较
2.5 大鼠海马组织COX-2、PGE2、TNF-α水平检测 假手术组、模型组、塞来昔布组、柴胡加龙骨牡蛎汤
采用 ELISA 法检测。每组取“2.3”项下剩余 6 只大 组、柴胡加龙骨牡蛎汤+空载组、柴胡加龙骨牡蛎汤+
鼠的海马组织,分成三部分,其中两部分组织冻存,剩余 COX-2过表达组大鼠癫痫Racine分级分别为0、(4.41±
一部分称重后,使用组织匀浆器在冰上匀浆,并在 4 ℃ 0.45)、(2.18±0.27)、(2.23±0.30)、(2.20±0.29)、(3.96±
下以2 500×g离心15 min。收集上清液并储存在-80 ℃ 0.38)级。与假手术组比较,模型组大鼠癫痫Racine分级
冰箱中,采用BCA法检测总蛋白浓度后,检测大鼠海马 显著升高(P<0.05);与模型组比较,塞来昔布组、柴胡
组织COX-2、PGE2、TNF-α水平。 加龙骨牡蛎汤组大鼠癫痫 Racine 分级均显著降低(P<
2.6 大鼠海马组织MDA含量和SOD活性检测 0.05);与柴胡加龙骨牡蛎汤组、柴胡加龙骨牡蛎汤+空
采用比色法检测。从冰箱中取出“2.5”项下大鼠海 载组比较,柴胡加龙骨牡蛎汤+COX-2 过表达组大鼠癫
马组织匀浆上清液,按照试剂盒说明书方法检测 MDA 痫Racine分级显著升高(P<0.05)。
含量和SOD活性。 3.2 各组大鼠海马组织CA3区病理形态学比较
2.7 大鼠海马组织COX-2、P-gp蛋白表达检测 假手术组大鼠海马神经元结构完整,排列整齐;与
采用Western blot法检测。取“2.5”项下部分海马组织 假手术组比较,模型组可见大鼠海马神经元排列疏松,
于匀浆管中,加入RIPA裂解液研磨离心(4 ℃、2 500×g、 细胞间隙增大,部分细胞坏死,出现核固缩,胞质空泡样
· 694 · China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 6 中国药房 2025年第36卷第6期