Page 50 - 《中国药房》2024年24期

表5 各组大鼠骨微结构参数比较（x±s，n＝4）
组别 BMD/（mg/cm） （BV/TV）/% Tb.N/mm -1 Tb.Sp/mm Tb.Th/mm
3
假手术组 9.74±0.48 25.59±4.12 3.21±0.67 0.20±0.09 0.09±0.02
模型组 12.35±0.61 a 31.64±1.85 0.84±0.13 a 1.27±0.15 a 0.20±0.01 a
中华跌打丸组 16.61±1.57 b 38.86±2.49 b 1.24±0.14 0.66±0.19 b 0.33±0.06 b
野生接骨木组 15.94±0.96 b 34.38±3.10 1.14±0.17 0.67±0.19 b 0.29±0.03
盐丹低剂量组 13.39±0.59 33.37±1.84 1.09±0.16 0.98±0.16 0.28±0.04
盐丹中剂量组 15.17±0.75 b 34.08±2.82 1.18±0.19 0.71±0.30 b 0.30±0.05 A.模型组 B.中华跌打丸组
盐丹高剂量组 16.77±1.18 b 43.73±3.47 b 1.75±0.28 b 0.56±0.09 b 0.33±0.06 b
a：与假手术组比较，P＜0.05；b：与模型组比较，P＜0.05。

C.野生接骨木组 D.盐丹低剂量组
b
A.模型组 B.中华跌打丸组

E.盐丹中剂量组 F.盐丹高剂量组
fb：成纤维细胞；cf：胶原纤维；lym：淋巴细胞；bp：出血点；ob：成骨
C.野生接骨木组 D.盐丹低剂量组 细胞；os：骨细胞。
图6 各组大鼠给药4周的骨折端显微镜图（HE染色）

E.盐丹中剂量组 F.盐丹高剂量组
fb：成纤维细胞；cf：胶原纤维；lym：淋巴细胞；bp：出血点；ob：成骨
A.模型组 B.中华跌打丸组
细胞；os：骨细胞。
图5 各组大鼠给药2周的骨折端显微镜图（HE染色）
给药4周，与假手术组比较，模型组和盐丹低剂量组
大鼠骨组织骨折处局部有轻度出血，可见大量排列不规
则且不成熟的骨小梁，有小面积透明软骨生成；中华跌
打丸组和盐丹中、高剂量组以及野生接骨木组大鼠骨组
织骨折处可见大量排列不规则且逐渐成熟的骨小梁，骨 C.野生接骨木组 D.盐丹低剂量组
小梁表面可见单行排列的立方柱状的成骨细胞和大面
积透明软骨、大量骨细胞及少量新生的骨板（图6）。
给药8周，与假手术组比较，模型组和盐丹低剂量组
大鼠骨组织骨折处可见边缘结缔组织增生，软骨的骨化
尚在进行，骨小梁排列规则且逐渐成熟，有少量骨细胞
和骨板形成；中华跌打丸组和盐丹中、高剂量组以及野
生接骨木组大鼠骨组织骨折处可见皮质骨断裂修复，大 E.盐丹中剂量组 F.盐丹高剂量组
量致密结缔组织增生，软骨的骨化完成，部分骨性愈合， fb：成纤维细胞；cf：胶原纤维；lym：淋巴细胞；bp：出血点；ob：成骨
骨小梁成熟，有大量骨细胞和骨板形成（图7）。 细胞；os：骨细胞。
图7 各组大鼠给药8周的骨折端显微镜图（HE染色）
4 讨论
骨折模型的制备主要包括两个过程，即破坏骨骼连 闭合性破坏，固定骨骼分为髓内固定和髓外固定。本实
[8]
续性和固定骨骼 。破坏骨骼连续性分为开放性破坏和 验采用开放性破坏、髓外固定的方法制备大鼠股骨骨折

· 3008 · China Pharmacy 2024 Vol. 35 No. 24 中国药房 2024年第35卷第24期