Page 53 - 《中国药房》2024年13期
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2.4.2 线性关系与定量下限考察 白血浆50 μL,涡旋混匀,以氮气吹干,加入200 μL甲醇
取“2.2.2”项下血浆/脑脊液混合对照品溶液适量,梯 复溶后进样分析,将各成分峰面积记作B;计算提取回收
度稀释后,按“2.3”项下方法处理,按“2.1”项下条件进样 率(提取回收率=A/B×100%)。另外以水代替空白血
分析,记录色谱图。以麻黄碱、伪麻黄碱、甲基麻黄碱、 浆,按上述方法处理,将各成分峰面积记作C,计算基质
苦杏仁苷的质量浓度为横坐标(X),峰面积为纵坐标 效应(基质效应=B/C×100%)。同法考察脑脊液的提
(Y),采用加权最小二乘法进行线性回归。结果显示,各 取回收率与基质效应。结果显示,血浆的提取回收率为
2
成分在相应范围内线性关系良好(R >0.99),符合生物 77.48%~86.94%、基 质 效 应 为 87.37%~103.26%(n=
样本分析方法的要求。结果见表2和表3。 6),脑脊液的提取回收率为 75.26%~94.87%、基质效应
表2 各成分在血浆中的线性范围和定量下限 为 89.12%~108.45%(n=6),表明该分析方法符合生物
化合物 标准曲线 R 2 线性范围/(ng/mL) 定量下限/(ng/mL) 样品分析要求。
-2
麻黄碱/伪麻黄碱 Y=1.57×10 X+7.31×10 -3 0.992 9 0.1~6 400 0.1 2.5 药动学实验
-2
甲基麻黄碱 Y=2.50×10 X-1.05×10 -3 0.993 0 0.2~480 0.2 2.5.1 药物制备
苦杏仁苷 Y=3.09×10 X+5.91×10 -3 0.998 4 0.4~600 0.4
-3
麻黄、杏仁以 2∶1(m/m,两者总量为 100 g)进行配
表3 各成分在脑脊液中的线性范围和定量下限
[7]
伍,然后参照杨丽等 方法制备麻黄-杏仁药对水煎液。
化合物 标准曲线 R 2 线性范围/(ng/mL) 定量下限/(ng/mL)
-4
麻黄碱/伪麻黄碱 Y=2.52×10 X+7.19×10 -3 0.994 5 0.1~800 0.1 同法制备麻黄、杏仁单煎液,备用。
甲基麻黄碱 Y=6.25×10 X+6.56×10 -4 0.999 2 0.2~50 0.2 2.5.2 分组、造模与给药
-4
苦杏仁苷 Y=8.01×10 X+1.41×10 -4 0.993 1 0.4~300 0.4
-5
将 SD 雄性大鼠随机分为空白组、模型组、麻黄组
2.4.3 准确度与精密度考察 (12 g/kg,以生药量计,下同),杏仁组(6 g/kg)和麻黄-杏
取“2.2.3”项下各成分的血浆/脑脊液 QC 样品及各 仁药对组(麻黄 12 g/kg+杏仁 6 g/kg),每组 6 只,各给药
[8]
成分的定量下限样品(按“2.2.3”项下方法同法制备)适 组剂量根据人与大鼠体表面积比计算而得 。除空白组
量,按“2.3”项下方法处理,再按“2.1”项下条件进样分 外,其余各组大鼠置于超声雾化器的密闭玻璃罩内,用
析,每个浓度平行6份。日内连续进样,计算日内精密度 2%氯化乙酰胆碱和0.4%磷酸组胺的等体积混合液喷雾
[以相对标准偏差(RSD)表示];连续进样 3 d,计算日间 诱发哮喘模型,每天 1 次,连续 7 d。当大鼠出现呼吸加
精密度(以RSD表示);并将峰面积比值代入当日标准曲 快、口唇发绀、腹肌痉挛、点头呼吸、站立不稳等特征时,
[9]
线,计算实测浓度,考察准确度[以相对误差(RE)表示]。 表明造模成功 。在每次造模前1 h,空白组和模型组大
结果显示,血浆 3 个浓度 QC 样品及各成分定量下限样 鼠灌胃等体积生理盐水,其余各组大鼠灌胃相应药物,
品的日内 RSD<14.3%、RE 为-11.76%~14.58%(n= 每天1次,连续7 d。
6),日间 RSD<12.6%、RE 为-5.38%~9.46%(n=18); 2.5.3 样品采集及药动学参数分析
脑脊液3个浓度QC样品及各成分定量下限样品的日内 末次给药并激发哮喘后,分别于给药前(0 h)和末次
RSD<12.9%、RE 为 -9.47%~12.3%(n=6),日 间 给 药 后 0.08、0.17、0.33、0.67、1.00、1.33、2.67、5.33、
RSD<11.72%、RE 为-10.36%~12.57%(n=18),均符 10.67、21.33 h眼眶采血0.5 mL,并置于肝素处理过的离
合生物样品分析要求。 心管中,以3 500 r/min离心10 min,取上清液置于-80 ℃
2.4.4 稳定性考察 冰箱保存待测;另外,采用小脑延髓池穿刺法于给药前
取“2.2.3”项下各成分的血浆/脑脊液QC样品适量, (0 h)和末次给药后 0.17、0.33、0.67、1.33、2.67、5.33、
按“2.3”项下方法处理,再按“2.1”项下条件进样分析,每 10.67 h 收集脑脊液(具体操作方法参考文献[10―11])
个浓度平行6份;分别考察各样品在处理前室温放置2 h、 80 μL于0.5 mL离心管中,备用。取上述血浆样品和脑
处理后自助进样器放置12 h以及反复冻融(-20 ℃至室 脊液样品,按“2.3”项下方法处理,再按“2.1”项下条件进
温冻融循环)3次条件下的稳定性。结果显示,各样品在 样分析,然后代入当日建立的标准曲线中计算各样品中
不同条件下所得峰面积的 RSD 为 5.98%~14.27%(n= 各成分的质量浓度。采用DAS 2.0药动学软件通过非房
6),表明各样品稳定性良好。 室模型确定主要药动学参数,包括脑脊液和血浆中的达
2.4.5 提取回收率与基质效应考察 峰浓度(cmax )、达峰时间(tmax )、消除半衰期(t1/2 )、药时曲
取“2.2.3”项下各成分的血浆QC样品适量,按“2.3” 线下面积(AUC)、平均驻留时间(MRT)、清除率(CLZ/F)、
项下方法处理,再按“2.1”项下条件进样分析,每个浓度 表观分布容积(VZ/F)。
平行 6 份,将各成分峰面积记作 A;取各成分 QC 工作溶 2.5.4 统计学方法
液①100 μL 于不同离心管中,以氮气吹干,分别加入空 采用SPSS 21.0软件进行统计分析。多组间比较采
中国药房 2024年第35卷第13期 China Pharmacy 2024 Vol. 35 No. 13 · 1591 ·