Page 46 - 《中国药房》2024年13期
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DMEM 培养基,接种于 Transwell 小室的下层。将上室                    值表示目的蛋白的表达水平,并计算 cleaved-caspase-3
          细胞按“2.2”项下方法分组、干预。培养 24 h,收集穿膜                      与 caspase-3 蛋白的表达水平比值(cleaved-caspase-3/
          细胞,用多聚甲醛固定,再以结晶紫染液染色,冲洗、晾                           caspase-3)。
          干后,使用显微镜观察侵袭细胞(呈紫色)并计数。                             2.8 统计学方法
          2.6 HeLa/DDP细胞中YAP、TAZ mRNA表达水平检测                       采用GraphPad Prism 7.0软件对数据进行统计分析。
              采用定量实时聚合酶链式反应(quantitative real-
                                                              数据以x±s表示。多组间比较采用单因素方差分析,进
          time PCR,qRT-PCR)法检测。取对数生长期的 HeLa/
                                                              一步两两比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
          DDP 细胞,接种于 96 孔板中,按“2.2”项下方法分组、干
                                                              3 结果
          预。培养24 h,收集细胞,以PBS清洗后加入Trizol试剂
                                                              3.1 藁本内酯对HeLa/DDP细胞增殖抑制率的影响
          提取 RNA;将所得 RNA 反转录为 cDNA 后进行 PCR 扩
                                                                  与对照组比较,顺铂组细胞的增殖抑制率显著升高
          增。PCR反应体系包括正、反向引物各0.4 μL,cDNA模
                                                             (P<0.05);与顺铂组比较,顺铂+低、中、高浓度藁本内
          板 5 μL,mix 10 μL,ddH2O 4.2 μL。PCR 反应条件为
          95 ℃预变性 30 s;95 ℃变性 30 s,60 ℃退火 5 s,循环 38           酯组细胞的增殖抑制率亦显著升高,且呈浓度依赖性
          次;72 ℃延伸 15 s。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)                  (P<0.05)。结果见图1A。
          为内参,使用 2     -ΔΔCt 法分析 YAP、TAZ mRNA 的表达水                80                      50
                                                                                                         bcd
                                                                                          40
          平,结果以对照组作为参照进行归一化处理。PCR引物                               60            bcd                   bc
          序列及产物长度见表1。                                           增殖抑制率/%  40   bc         凋亡率/%  30  b
                    表1 PCR引物序列及产物长度                               20    a  b              20     a
           目的基因                  引物序列              产物长度/bp                                10
           YAP           正向:5′-CGCTCTTCAACGCCGTCA-3′  167         0                        0
                                                                     Ⅰ   Ⅱ   Ⅲ   Ⅳ   Ⅴ        Ⅰ   Ⅱ   Ⅲ   Ⅳ   Ⅴ
                         反向:5′-AGTACTGGCCTGTCGGGAGT-3′                 A.增殖抑制率                   B.凋亡率
           TAZ           正向:5′-CAGCAATGTGGATGAGATGG-3′  118      Ⅰ:对照组;Ⅱ:顺铂组;Ⅲ:顺铂+低浓度藁本内酯组;Ⅳ:顺铂+中
                         反向:5′-TCATTGAAGAGGGGGATCAG-3′
           GAPDH         正向:5′-TCAAGAAGGTGGTGAAGCAGG-3′  123  浓度藁本内酯组;Ⅴ:顺铂+高浓度藁本内酯组;a:与对照组比较,P<
                                                              0.05;b:与顺铂组比较,P<0.05;c:与顺铂+低浓度藁本内酯组比较,
                         反向:5′-TCAAAGGTGGAGGAGTGGGT-3′
                                                              P<0.05;d:与顺铂+中浓度藁本内酯组比较,P<0.05。
          2.7 HeLa/DDP细胞中相关蛋白表达水平检测
                                                              图1 藁本内酯对 HeLa/DDP 细胞增殖抑制率、凋亡率
              采用 Western blot 法检测。取对数生长期的 HeLa/                    的影响(x±s,n=6)
          DDP 细胞,接种于 96 孔板中,按“2.2”项下方法分组、干
                                                              3.2 藁本内酯对HeLa/DDP细胞凋亡率的影响
          预。培养24 h,收集细胞,用PBS清洗后加入RIPA裂解
                                                                  与对照组比较,顺铂组细胞的凋亡率显著升高(P<
          液提取总蛋白,蛋白经定量后进行变性处理。取变性蛋
                                                              0.05);与顺铂组比较,顺铂+低、中、高浓度藁本内酯组
          白适量,进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分
                                                              细胞的凋亡率亦显著升高,且呈浓度依赖性(P<0.05)。
          离并转移至聚偏二氟乙烯膜上,用脱脂奶粉于4 ℃下封
                                                              结果见图1B、图2。
          闭过夜;洗膜后,加入 YAP、TAZ、MMP2、Ki67、cleaved-
          caspase-3、caspase-3、β-actin一抗(稀释度均为1︰1 000),        3.3 藁本内酯对HeLa/DDP细胞迁移能力的影响
          4 ℃下孵育过夜;洗膜后,加入相应二抗(稀释度为                                与对照组比较,顺铂组细胞的划痕愈合率显著降低
          1︰5 000),室温下孵育1 h;洗膜后,以ECL试剂显色,再                   (P<0.05);与顺铂组比较,顺铂+低、中、高浓度藁本内
          用凝胶成像系统成像。使用Image J软件分析各蛋白条                         酯组细胞的划痕愈合率亦显著降低,且呈剂量依赖性
          带灰度值,以目的蛋白与内参蛋白(β-actin)的灰度值比                      (P<0.05)。结果见图3、图4A。
            10 4                10 4                10 4                 10 4                10 4
            10 3                10 3                10 3                 10 3                10 3
           PI  10 2            PI  10 2             PI  10 2            PI  10 2            PI  10 2
            10 1                10 1                10 1                 10 1                10 1
            10 0                10 0                10 0                 10 0                10 0
              10   0  10   1  10   2  10   3  10 4  10   0  10   1  10   2  10   3  10 4  10   0  10   1  10   2  10   3  10 4  10   0  10   1  10   2  10   3  10 4  10   0  10   1  10   2  10   3  10 4
                 Annexin Ⅴ-FITC      Annexin Ⅴ-FITC      Annexin Ⅴ-FITC      Annexin Ⅴ-FITC       Annexin Ⅴ-FITC
                  A.对照组               B.顺铂组         C.顺铂+低浓度藁本内酯组       D.顺铂+中浓度藁本内酯组        E.顺铂+高浓度藁本内酯组
                                   图2 藁本内酯对HeLa/DDP细胞凋亡影响的流式细胞图


          · 1584 ·    China Pharmacy  2024 Vol. 35  No. 13                            中国药房  2024年第35卷第13期
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