Page 33 - 《中国药房》2024年12期
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2.2 动物分组干预及取材                                                  表1 引物序列和产物大小
              30 只 ApoE -/- 小鼠采用随机数字表法分为模型组、                  基因名称        序列(5′-3′)                  产物大小/bp
                                                              IκB         正向引物TACGCCCCAGCATCTCCACTCCG  123
          化瘀祛痰方组、瑞舒伐他汀组,每组 10 只;10 只 C57BL/
                                                                          反向引物CTCCACGATGCCCAGGTAGCCAT
          6J 小鼠作为正常对照组。参照文献方法                [10―11] 给予 30 只  NF-κB       正向引物GCGCATCCAGACCAACAATAAC   108
          ApoE -/-  小 鼠 高 脂 饲 料 喂 养 12 周 以 复 制 AS 模 型 ,                   反向引物GCCGAAGCTGCATGGACACT
                                                              NLRP3       正向引物CATCAATGCTGCTTCGACAT     126
          ApoE -/- 小鼠主动脉经 HE 染色后在显微镜下可观察到                                 反向引物TCAGTCCCACACACAGCAAT
          根部内膜有斑块形成,即AS造模成功;正常对照组的小                           Caspase-1   正向引物CACAGCTCTGGAGATGGTGA     136
                                                                          反向引物GGTCCCACATATTCCCTCCT
          鼠用普通饲料喂养。根据人与动物体表面积折算系数                             IL-1β       正向引物GCTGCTTCCAAACCTTTGAC     152
          和临床常用剂量换算,化瘀祛痰方组及瑞舒伐他汀组小                                        反向引物AGCTTCTCCACAGCCACAAT
                                                              IL-18       正向引物GACTCTTGCGTCAACTTCAAGG   163
          鼠给药剂量分别为20 g/(kg·d)及1.55 mg/(kg·d),模型组
                                                                          反向引物CAGGCTGTCTTTTGTCAACGA
          及正常对照组小鼠给予等体积生理盐水。造模成功后,                            GAPDH       正向引物GTCAAGAAAGTGGGGCCTGA     132
          各组小鼠每日灌胃1次,每次0.5 mL,连续4周。在给药                                    反向引物TGAGTGGAATCTGGGATTGTG
          期间,各组小鼠喂养饲料不变。各组小鼠在末次灌胃结                           2.7 小鼠主动脉组织中IκB、NF-κB、NLRP3、ASC、Cas‐
          束后,禁食不禁水12 h后,腹腔注射0.3%戊巴比妥钠0.2                     pase-1、GSDMD、IL-1β、IL-18蛋白表达水平检测
          mL 进行麻醉,随后眼眶取血 200~300 μL,离心(4 000                     采用 Western blot 法检测。取各组 3 只小鼠冻存的
          r/min,15 min),取血清置于干净的离心管,冻存于-80 ℃                 主动脉组织 100 mg,加入 RIPA 裂解液 1 mL,在冰上裂

          冰箱中,备用。取血后处死小鼠,固定于解剖板上,剖离                          解28 min,离心(4 ℃,12 000 r/min,10 min)。取上清液,
                                                             应用BCA蛋白定量试剂盒检测蛋白浓度,变性后电泳、
          小鼠主动脉组织,每组取 3 只小鼠的主动脉组织用 4%
                                                             转膜,加入5%脱脂奶粉室温下封闭1 h,再加入IκB、NF-
          多聚甲醛固定,其余小鼠的主动脉组织冻存于-80 ℃冰
                                                             κB、NLRP3、ASC、Caspase-1、GSDMD、IL-1β、IL-18、
          箱中,备用(部分小鼠用于其他实验)。
                                                             β-actin 一抗(稀释比例分别为1∶5 000、1∶5 000、1∶1 000、
          2.3 小鼠血脂水平检测
                                                             1∶1 000、1∶2 000、1∶2 000、1∶1 000、1∶2 000、1∶1 000),
              取各组小鼠血清,参照试剂盒说明书进行操作,采
                                                             4 ℃封闭过夜;用 TBST 缓冲液洗涤 3~4 次,加入二抗
          用 全 自 动 生 化 分 析 仪 检 测 TC、TG、LDL-C、HDL-C
                                                            (稀释比例为 1∶10 000),室温孵育 1 h;用 TBST 缓冲液
          水平。
                                                             洗涤3次,ECL发光液显色曝光,于化学发光成像系统下
          2.4 小鼠主动脉组织形态学变化观察
                                                             成像。利用Alpha View软件对条带进行分析,以目的蛋
              取各组小鼠固定于 4% 多聚甲醛中的主动脉组织,
                                                             白和内参蛋白(β-actin)的灰度值比值表示目的蛋白的表
          梯度乙醇脱水、透明、浸蜡、包埋,制备石蜡切片(4 μm),
                                                             达水平。
          脱蜡后进行HE染色,脱水封片,在光学显微镜下观察各
                                                             2.8 统计学方法
          组小鼠主动脉组织形态学变化,并拍照。
                                                                 采用SPSS 22.0软件进行统计分析,计量资料以x±
          2.5 小鼠血清中EETs、IL-1β、IL-18水平检测
                                                             s 表示。多组数据比较采用单因素方差分析,组间两两
              取各组小鼠血清,参照ELISA检测试剂盒说明书进
                                                             比较用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
          行操作,用酶标仪检测其中 5,6-EET、8,9-EET、11,12-
                                                             3 结果
          EET、14,15-EET、IL-1β、IL-18水平。
                                                             3.1 各组小鼠血脂水平比较
          2.6 小鼠主动脉组织中IκB、NF-κB、NLRP3、Caspase-
                                                                 与正常对照组比较,模型组小鼠血清中 TC、TG、
          1、IL-1β、IL-18 mRNA表达水平检测
                                                             LDL-C 水平均显著升高(P<0.05),HDL-C 水平显著降
              采用实时荧光定量 PCR 法检测。取各组 3 只小鼠
                                                             低(P<0.05);与模型组比较,化瘀祛痰方组及瑞舒伐他
          冻存的主动脉组织200 mg,提取总RNA,检测总RNA浓
                                                             汀组小鼠血清中 TC、TG、LDL-C 水平均显著降低(P<
          度,反转录为 cDNA。PCR 条件为 95 ℃预变性 30 s;
                                                             0.05)。结果见表2。
          95 ℃变性 10 s,60 ℃退火 30 s,72 ℃延伸 30 s,共 40 个
                                                             表2 各组小鼠的血脂水平比较(x±s,n=10,mmol/L)
          循环;最后72 ℃再延伸5 min。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶
                                                              组别         TC        TG       LDL-C     HDL-C
         (GAPDH)为内参,应用2        -ΔΔCt 法计算主动脉组织中IκB、            正常对照组     3.14±0.80  1.46±0.15  0.56±0.08  1.14±0.12
          NF-κB、NLRP3、Caspase-1、IL-1β、IL-18 mRNA 表达水          模型组      16.13±1.51 a  3.69±0.20 a  3.10±0.39 a  0.77±0.08 a
                                                              化瘀祛痰方组   11.32±1.05 b  2.67±0.19 b  1.42±0.11 b  0.82±0.05
          平,并以正常对照组为参照进行归一化处理。引物序列                            瑞舒伐他汀    9.52±1.22 b  2.19±0.32 b  1.23±0.09 b  0.83±0.04
          和产物大小见表1。                                             a:与正常对照组比较,P<0.05;b:与模型组比较,P<0.05。


          中国药房  2024年第35卷第12期                                              China Pharmacy  2024 Vol. 35  No. 12    · 1439 ·
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