Page 24 - 《中国药房》2024年9期
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鼠灌胃相应剂量双蒸水。实验第 30 天取 1 只模型组小 2.2.2 马里苷对乙醇诱导的肝细胞损伤的影响
鼠,采用苏木素-伊红(HE)染色后观察其肝组织病理改 取对数生长期的细胞,接种于6孔板中(铺板密度为
变,以肝细胞出现脂滴沉积、脂肪空泡变性为造模成功 1×10 个/mL)。实验分为正常对照组、模型组、模型+
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判定标准。 1‰DMSO 组和马里苷 3、6、12 μmol/L组,每组设 3 个复
2.1.2 取材及肝组织中TG、MDA和SOD水平测定 孔。参考文献[13]方法并进行改良后建立酒精性肝细胞
末次给药后,小鼠禁食不禁水 12 h,称重。经眼球 损伤模型:用 0.5% 乙醇、0.01% 硫酸亚铁和 0.1 μmol/L
取血后,脱颈处死小鼠。取出小鼠肝脏,用冷生理盐水 油酸刺激大鼠BRL肝细胞24 h致脂质堆积(采用油红O
冲洗,滤纸吸干后,取大约 0.3 g 肝组织,加 2.7 mL 生理 染色法观察肝细胞内脂滴的分布,观察到脂滴提示造模
盐水制成 10% 肝组织匀浆,以 4 000 r/min 离心 10 min; 成功)。马里苷各浓度组在造模同时给予不同浓度的马
取上清,按照试剂盒说明书操作,测定肝组织中 TG、 里苷作用 24 h。收集细胞,按照试剂盒说明书操作,测
MDA和SOD水平。另取部分肝组织置于10%甲醛溶液 定肝细胞中 TG、MDA 和 SOD 水平,并参照“2.1.4”项下
中固定,剩余肝组织置于-80 ℃冰箱中保存备用。 方法测定细胞中 PPARα、CPT-1 和 DGAT 的蛋白表达。
2.1.3 肝组织病理形态学观察 实验重复3次。
采用HE染色法进行观察。取“2.1.2”项下经10%甲
2.2.3 MK886 干 预 后 马 里 苷 对 乙 醇 损 伤 肝 细 胞 中
醛溶液固定的肝组织(每只小鼠取的部位相同),常规操 PPARα、CPT-1和DGAT蛋白表达的影响
作制备石蜡切片(厚度4 μm)后行HE染色,在显微镜下
为进一步验证马里苷是否通过调控 PPARα 发挥作
观察肝组织脂肪浸润情况。
用,采用MK886处理细胞。取对数生长期的细胞,接种
2.1.4 肝组织中PPARα、CPT-1和DGAT蛋白表达检测
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于6孔板中(铺板密度为1×10 个/mL)。实验分为正常
采用 Western blot 法进行检测。取“2.1.2”项下冻存
对照组、模型组、模型+MK886组、模型+MK886+马里苷
的肝组织(每组取3只小鼠样本),采用RIPA裂解液超声
12 μmol/L 组,每组设 3 个复孔。MK886 的给药浓度参
提取组织中总蛋白,测定总蛋白浓度后,调整样品体积,
考文献[14]设定为 10 μmol/L,马里苷给药浓度根据
使各组上样量保持一致。将蛋白高温变性后,配制10% “2.2.2”项下结果设定。正常对照组不处理,模型组按
分离胶,进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(电
“2.2.2”项下方法建立酒精性肝细胞损伤模型,模型+
压 80 V、电泳时间 20 min,电压 120 V、电泳时间 40
MK886 组造模的同时加入 MK886,模型+MK886+马里
min),之后按 90 V、90 min 的转膜条件转移至 NC 膜,用
苷 12 μmol/L 组造模的同时加入 MK886 和马里苷。培
5% 脱脂奶粉封闭 90 min;加入 PPARα、CPT-1、DGAT 和
养24 h后收集各组细胞,按照“2.1.4”项下方法测定细胞
β-actin 一抗(PPARα 的稀释度为 1∶500,CPT-1 的稀释度
中PPARα、CPT-1和DGAT的蛋白表达。实验重复3次。
为1∶300,DGAT和β-actin的稀释度为1∶1 000),4 ℃孵育
2.3 统计学方法
过夜。洗膜后,加入对应二抗,室温孵育1 h。ECL 化学
发光显影,采用 ChemiDoc XRS 凝胶成像系统进行信号 采用 GraphPad Prism 软件作图和进行数据统计分
扫描,利用 Image J 软件进行图像分析获取蛋白条带灰 析。符合正态分布的计量资料以x±s表示,采用单因素
度值,以目的蛋白与内参蛋白(β-actin)条带灰度值的比 方差分析和LSD-t法进行组间比较。检验水准α=0.05。
值表示目的蛋白的表达水平。 3 结果
2.2 细胞实验 3.1 动物实验结果
2.2.1 马里苷对大鼠BRL肝细胞活力的影响 3.1.1 马里苷对小鼠肝组织中TG、MDA和SOD水平的
为筛选马里苷后续实验干预的浓度和时间,采用 影响
MTT法测定马里苷对正常BRL肝细胞活力的影响。取 与正常对照组比较,模型组小鼠肝组织中TG、MDA
对数生长期的细胞,接种于 96 孔板中(铺板密度为 1× 水 平 显 著 升 高(P<0.01),SOD 水 平 显 著 降 低(P<
10 个/mL),置于CO2培养箱内培养 24 h 后,将细胞分为 0.01)。与模型组比较,马里苷75、150 mg/kg组小鼠肝组
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正常对照组、1‰ 二甲基亚砜(DMSO)组和马里苷 3、6、 织中 TG、MDA 水平显著降低(P<0.05 或 P<0.01),
12 μmol/L 组(浓度参考文献[9]设置,以 1‰DMSO 为溶 SOD水平显著升高(P<0.05或P<0.01)。结果见表1。
剂进行药液配制),每组设置3个复孔。各组细胞分别经 表1 各组小鼠肝组织中TG、MDA和SOD水平测定结
空白培养基、含 1‰DMSO 的培养基、含药培养基处理 果(x±s,n=9)
24 h后,每个细胞培养孔加入20 μL MTT溶液作用4 h, 组别 TG/(mg/g) MDA/(nmol/mg prot) SOD/(U/mg prot)
吸取上清液,加入100 μL DMSO作用15 min后,利用全 正常对照组 7.33±2.72 1.72±0.57 220.73±45.13
波长酶标仪测定490 nm波长下吸光度值,计算细胞相对 模型组 20.31±3.17 a 2.58±0.28 a 163.49±8.91 a
马里苷75 mg/kg组 14.95±3.26 b 1.99±0.40 b 178.47±17.12 b
活力:细胞相对活力=(实验孔吸光度值-空白孔吸光
马里苷150 mg/kg组 10.73±1.71 c 1.75±0.39 c 193.30±26.88 c
度值)/(对照孔吸光度值-空白孔吸光度值)×100%。 a:与正常对照组比较,P<0.01;b:与模型组比较,P<0.05;c:与模
实验重复3次。 型组比较,P<0.01。
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