Page 66 - 《中国药房》2023年20期
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功的大鼠随机分为模型组、虾青素低剂量组(20 mg/kg)、                      2.6 大鼠脑组织中 Nrf2、HO-1、NQO1 mRNA 表达水
          虾青素高剂量组(40 mg/kg)、虾青素+ML385组(40 mg/kg               平检测
          虾青素+30 mg/kg ML385),每组 14 只。虾青素用二甲                      采用实时 PCR(real-time PCR,RT-PCR)法进行检
          基亚砜溶解并用生理盐水稀释,配制成2、4 g/L的药液,                        测。取“2.5”项下各大鼠损伤区脑组织(假手术组取相同
          以10 mL/kg灌胃;ML385用二甲基亚砜溶解并用生理盐                      位置脑组织)适量,采用Trizol法提取总RNA,检测RNA
                                                              浓度后将其反转录为 cDNA。以上述 cDNA 为模板,进
          水稀释,配制成3 g/L的药液,以10 mL/kg腹腔注射。虾
                                                              行PCR扩增,严格按照相应试剂盒说明书操作。反应体
          青素低、高剂量组大鼠分别灌胃20、40 mg/kg的虾青素;
                                                              系包括:10×PCR缓冲液2.5 μL,dNTP混合液3 μL,上、
          虾青素+ML385组大鼠在灌胃40 mg/kg虾青素的同时腹
                                                              下游引物各 0.5 μL,cDNA 模板 1 μL,TaqDNA 聚合酶 1
          腔注射30 mg/kg的ML385;假手术组和模型组大鼠灌胃
                                                              μL,Mg  1.5 μL,加水(经焦碳酸二乙酯处理)至25 μL。
                                                                    2+
          等体积的生理盐水(含二甲基亚砜);每天1次,连续7 d。
                                                              反应条件如下:94 ℃预变性1 min;95 ℃变性30 s,55 ℃
                                             [11]
          虾青素的成人日推荐摄取量为4~50 mg ,按人与大鼠                         退火30 s,72 ℃延伸30 s,40个循环;最后72 ℃再延伸5
          体表面积比换算得大鼠等效剂量为20 mg/kg,以此作为                        min。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)为内参,采用
          低剂量,其2倍作为高剂量。ML385的剂量参考相关文                          2 -ΔΔCt 法计算 Nrf2、HO-1、NQO1 mRNA 的相对表达水
            [12]
          献 设置。                                               平。Nrf2 的上、下游引物分别为 5′-TCAGCGACTGTC-
          2.2 大鼠神经功能评估                                        ACTCGATGA-3′、5′-CCACTGGTCGTGGAGTGGATG-

              分别于药物干预后第 1、3、7 天,应用 Garcia 评分对                 3′;HO-1 的上、下游引物分别为 5′-GGGTCGTCAGTA-
          各组大鼠的神经功能缺损程度进行评估。最高分为 18                           CCAGTTTC-3′、5′-CCAGGCATCGGCAGCAATTC-3′;
                                           [13]
          分,评分越低表示神经功能缺损越严重 。                                 NQO1 的上、下游引物分别为 5′-ATCCTGCGCTACT-
          2.3 大鼠脑组织形态学变化观察及炎症浸润评分                             GCGACTT-3′、5′-GCATGCTAGAGTGTTCTCTCCT-3′;
                                                              GAPDH的上、下游引物分别为5′-CTCGCTTCTGAAG-
              药物干预后第7天,各组取4只大鼠处死,提取其脑
                                                              CACA-3′,5′-AACGCTGCTCGAATTTGCGT-3′。
          组织并保存于-80 ℃冰箱中,待用。取上述大鼠的损伤
                                                              2.7 大鼠Nrf2/HO-1信号通路相关蛋白表达水平检测
          区脑组织(假手术组取相同位置脑组织)适量,用 4% 多
                                                                  采用Western blot法进行检测。取“2.5”项下各大鼠
          聚甲醛溶液固定后,行常规石蜡包埋、切片,经苏木精-
                                                              损伤区脑组织(假手术组取相同位置脑组织)适量,加入
          伊红(HE)染色后使用显微镜观察其脑组织形态学变化
                                                              RIPA裂解液提取总蛋白,于沸水中加热10 min变性;取
          情况,并进行炎症浸润评分,具体标准如下:无炎症细胞
                                                              变性蛋白适量,经电泳分离后转移至聚偏二氟乙烯膜
          浸润,记0分;有少量散在炎症细胞浸润,记1分;小血管                          上,以 5% 脱脂奶粉封闭 1 h;用 TBST 缓冲液清洗 2
          周围可见“血管套”结构,记2分;可见大面积广泛炎症细                          min×3次,加入Nrf2、HO-1、NQO1、β-actin一抗(稀释比
                       [14]
          胞浸润,记3分 。                                           例均为 1∶1 000),4 ℃孵育过夜;用 TBST 缓冲液清洗 2
          2.4 大鼠脑组织神经细胞超微结构观察                                 min×3次,加入相应二抗(稀释比例为1∶2 000),室温孵
              取“2.3”项下各大鼠余下缺损区脑组织(假手术组取                       育1 h;用TBST缓冲液清洗2 min×3次,加入ECL显色,
          相同位置脑组织),切成2 mm厚的组织块,于2.5%戊二                        置于多功能成像仪下成像,并采用Image J 5.0软件进行
          醛电镜固定液中静置6 h,然后用磷酸盐缓冲溶液冲洗,                          分析,以目的蛋白与内参蛋白(β-actin)的灰度值比值表
                                                              示各目的蛋白的相对表达水平。
          再用1%四氧化锇磷酸缓冲液固定,行丙酮脱水、环氧树
                                                              2.8 统计学方法
          脂618原位包埋、切片,经枸橼酸铅和醋酸双氧铀染色后
                                                                  采用SPSS 21.0软件对数据进行统计分析。计量资
          使用透射电镜观察并拍照,记录其脑组织神经细胞超微
                                                              料用 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间
          结构改变情况。
                                                              两两比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
          2.5 大鼠脑组织氧化应激和炎症反应相关指标检测
                                                              3 结果
              末次给药1 h后,处死各组剩余10只大鼠,取其损伤
                                                              3.1 各组大鼠的神经功能评分
          区脑组织(假手术组取相同位置脑组织)适量,制备脑组
                                                                  与假手术组比较,模型组大鼠第 1、3、7 天时的神经
          织匀浆,通过化学比色法检测大鼠脑组织中氧化应激指                            功能评分均显著降低(P<0.05)。与模型组比较,虾青
          标(SOD、CAT、GSH-Px、MDA、NO)的含量,通过ELISA                 素高剂量组大鼠在药物干预第1天时和虾青素低、高剂
          法检测其脑组织中炎症反应指标(TNF-α、IL-1β、IL-6、                    量组大鼠在药物干预第3、7天时的神经功能评分均显著
          iNOS)的含量。上述操作均严格按照相应试剂盒说明书                          升高(P<0.05),且随着虾青素干预时间的延长,大鼠神
          执行。                                                 经功能评分有升高的趋势。与同期虾青素高剂量组比


          · 2492 ·    China Pharmacy  2023 Vol. 34  No. 20                            中国药房  2023年第34卷第20期
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