Page 83 - 《中国药房》2023年15期
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孔,每孔加入含1%PBS的DMEM培养基,继续培养。各                        2.8 统计学方法
          组细胞分别于给药 0、24、36 h 时在同一位置拍照,记录                         采用SPSS 24.0软件进行数据的统计分析。计量资
          划痕宽度,并计算细胞迁移率。细胞迁移率(%)=(给                          料以x±s表示,组间比较用单因素方差分析和LSD-t检
          药0 h时划痕宽度-给药24 h或36 h时划痕宽度)/给药                     验。采用 GraphPad Prism 8.0 作图工具作图。检验水准

          0 h时划痕宽度×100%。                                     α=0.05。
          2.5 BER对细胞侵袭能力的影响                                  3 结果
              采用Transwell实验进行检测。按“2.3”项下方法进                  3.1 BER对OSRC-2细胞增殖的影响结果
          行细胞接种、分组(每组设置3个复孔)、给药及培养,常
                                                                 与对照组比较,干预24、48 h后,不同浓度BER组细
          规消化离心细胞。提前将基质胶于4 ℃解冻,基质胶与
                                                             胞的增殖抑制率均显著升高(P<0.01),并呈时间和浓
          无血清培养基以 1∶8 的体积比混合均匀后取 100 µL 加
                                                             度依赖性趋势。结果见图1。
          入小室,于孵育箱中放置 2 h。用无血清培养基稀释制
                                                                      100              a   a  a  a
          成密度为 1×10 个/mL 的细胞悬液,将各组细胞悬液吸                                       a  a  a  a  a  a  a
                       5
                                                                      80     a  a  a
          取200 μL滴加在预先铺好基质胶的细胞小室上,将小室                                 60  a  a                      24 h
          置于 24 孔板中,小室外添加含 10%PBS 的 DMEM 培养                          增殖抑制率/%  40                    48 h
          基500 μL。各组细胞于37 ℃继续孵育24 h,采用4%多
                                                                      20
          聚甲醛固定 20 min,用棉签拭去小室内的细胞,充分晾
                                                                       0
          干后用中性树胶封片,在显微镜下随机选取4个视野,观                                       Ⅰ   Ⅱ   Ⅲ   Ⅳ   Ⅴ   Ⅵ   Ⅶ  Ⅷ
                                                                Ⅰ:25 μmol/L BER组;Ⅱ:50 μmol/L BER组;Ⅲ:75 μmol/L BER
          察并计数侵袭细胞数量,最后计算4个视野下的平均细
                                                             组;Ⅳ:100 μmol/L BER组;Ⅴ:125 μmol/L BER组;Ⅵ:150 μmol/L
          胞侵袭数。                                              BER组;Ⅶ:175 μmol/L BER组;Ⅷ:200 μmol/L BER组;a:与对照组比
          2.6 BER对细胞中METTL3蛋白表达的影响                           较,P<0.01。
                                                             图1 不同浓度BER干预24、48 h后对细胞增殖的影响
              采用Western blot法进行检测。按“2.3”项下方法进
                                                                  (x±s,n=6)
          行细胞接种、分组、给药及培养。收集细胞,加入 RIPA
          裂解液,冰上裂解 30 min,以 12 000 r/min 离心 5 min,取          3.2 BER对OSRC-2细胞周期的影响结果
          上清液,采用BCA法测定上清液中总蛋白浓度,根据实                              与对照组比较,干预48 h后,50、100 μmol/L BER组
          验需要的蛋白上样量(30~50 ng)计算目标蛋白的体积,                      G0/G1期细胞的比例均显著升高(P<0.01),S 期和 G2/M
          与上样缓冲液按照合适的比例混匀,100 ℃水浴加热 6                        期细胞的比例均显著降低(P<0.05 或 P<0.01)。结果
          min 进行蛋白变性。各组取 5 µL 变性蛋白样品进行十                      见图2、图3。
          二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,起始浓缩胶电压                             600  P3(57.07%)               P3(75.57%)
                                                                        P4(20.82%)              P4(9.17%)
          调至70 V,待样本基本平齐后电压转至130 V,待溴酚蓝                                    P5(22.75%)              P5(15.45%)
          抵达凝胶底部时终止电泳。将分离后的蛋白电转移(电                             400                     500
          流 200 mA,2 h)至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜,用封闭液                    数量
                                                               200                     数量
         (5% 脱脂牛奶)封闭 1 h,加入 METTL3、β-actin 抗体(稀
          释比例均为1∶1 000),4 ℃孵育过夜;次日用TBST清洗                       0                       0
                                                                 0                           50                        100  0                               50                        100
          4次后加入羊抗兔/鼠IgG二抗(稀释比例均为1∶3 000),                                 PI                      PI
                                                                        A.对照组                B. 50 μmol/L BER组
          室温孵育 1 h;TBST 洗涤 3 次,使用 ECL 化学发光液对
          蛋白进行显色成像。用Image J 1.53t软件进行灰度值分                                       P3(72.29%) P4(9.92%)

          析,以目的蛋白条带与内参蛋白(β-actin)条带灰度值的                                               P5(17.55%)
                                                                          500
          比值作为目的蛋白的相对表达量。实验重复3次。
          2.7 BER对细胞内RNA的m6A水平的影响                                         数量
              按“2.3”项下方法进行细胞接种、分组(每组设置 3
                                                                           0
          个复孔)、给药及培养。用预冷的 PBS 冲洗 2 遍,用                                       0                               50                        100
                                                                                      PI
          Trizol 法提取细胞中总 RNA,按照试剂盒说明书方法操                                        C. 100 μmol/L BER组
          作检测各组细胞内RNA的m6A水平。                                        图2 各组细胞周期检测的流式细胞图


          中国药房  2023年第34卷第15期                                              China Pharmacy  2023 Vol. 34  No. 15    · 1865 ·
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