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加入后,继续搅拌 15 min,即得 Cur-SLN 混悬液(以 Cur 10 min以热修复抗原;冷却后以PBS冲洗5 min×3次,滴
计,质量浓度为0.77 mg/mL,载药量为7.72%)。 加山羊血清进行封闭,室温静置 20 min;甩去多余液体,
2.2 分组、造模与给药 滴加 LC3、Beclin-1一抗(稀释度均为1∶500)50 µL,室温
将大鼠适应性喂养 7 d 后,分为假手术组、模型组、 静置 1 h;以 PBS 冲洗 5 min×3 次,滴加二抗,室温孵育
雷帕霉素组(阳性对照,2 mg/kg,剂量参考文献[10]设 15 min;以PBS缓冲液冲洗3 min×3次,滴加辣根酶标记
置)和 Cur-SLN 低、高剂量组(5、10 mg/kg,剂量参考文 的链霉卵白素-生物素免疫复合物适量,室温孵育 15
献[11-12]设置),除模型组 13 只外,其余各组均 10 只。 min;以PBS缓冲液冲洗3 min×3次,加入DAB显色液适
除假手术组外,其余各组大鼠均采用腹主动脉缩窄合并 量,室温孵育 8 min;采用光学显微镜进行观察,并拍
肾急性缺血再灌注损伤法复制心肾综合征模型。具体 照。当切片中呈现明显的棕黄色颗粒则为阳性表达,呈
造模方法如下:大鼠腹腔注射45 mg/kg戊巴比妥钠麻醉 现不着色或浅色则为阴性表达。
后,行腹部正中切开,沿腹白线进入腹腔,暴露分离左、 2.7 大鼠心脏、肾、肺组织中细胞自噬相关因子的表达
右侧肾蒂,阻断结扎 30 min 后,解除阻断,恢复血流,造 水平检测
成肾急性缺血再灌注损伤;随后,暴露分离后腹膜,沿游 采用Western blot法进行检测。取“2.4”项下各组大
离腹主动脉长轴置一折弯的 7 号针头,以 3-0 的丝线绕 鼠心脏、肾、肺组织适量,经剪碎、裂解后,以12 000 r/min
腹主动脉后与7号针头一起结扎,随后立即抽出针头,使 离心5 min;取上清液,以BCA蛋白浓度测定试剂盒测定
腹主动脉残留直径为 0.7 mm 的残腔,造成腹主动脉狭
蛋白浓度。蛋白经变性后,进行十二烷基硫酸钠-聚丙
[13]
窄 。假手术组只同法分离肌肉、血管,但不阻断。术
烯酰胺电泳(SDS-PAGE),然后转膜 70 min,以 5%牛血
后,在各组大鼠腹腔内滴入青霉素以预防感染,然后分
清白蛋白溶液室温封闭 2 h;以 TBST 洗膜 5 min×3 次,
层关闭腹腔。造模8周后,取3只模型组大鼠,剖解其心
加入 LC3、Beclin-1、β-actin 一抗(稀释度均为 1 ∶ 500),
肾组织进行观察,当出现心肌肥厚、肾肿大时,则表明造
4 ℃孵育过夜;以TBST洗膜5 min×3次,加入二抗(稀释
模成功。造模成功后,各给药组大鼠均尾静脉注射相应
度为 1 ∶ 2 000),室温孵育 1 h;以 TBST 洗膜 5 min×3 次,
药物(注射体积为 1 mL/kg),假手术组和模型组大鼠同
经ECL试剂显色后,置于凝胶成像系统中曝光成像。采
法注射等体积生理盐水,每天1次,连续4周。
用 Image J 1.8.0 软件对蛋白条带的灰度值进行分析,以
2.3 大鼠血清中ACE、FT3、AVP的含量测定
LC3、Beclin-1分别与内参β-actin灰度值的比值表示相应
末次给药 24 h 后,将大鼠麻醉,于腹主动脉取血。
蛋白的表达水平。
血样静置 30 min 后,以 3 500 r/min 离心 10 min,取上层
2.8 统计学方法
血清,按 ELISA 试剂盒说明书相关方法操作,采用酶标
采用 SPSS 21.0 对数据进行统计分析,数据以 x±s
仪于450 nm波长下测定血清中ACE、FT3、AVP的含量。
表示。多组间比较,若数据符合正态分布且方差齐性,
2.4 大鼠心脏、肾、肺指数的测定
则采用单因素方差分析;若方差不齐,则采用 Kruskal-
取血完成后,处死大鼠,取其心脏、肾、肺组织;分离
Wallis H检验。组间两两比较采用LSD检验。检验水准
心肌组织后,称定心脏湿质量、肾湿质量、肺湿质量,然
α=0.05。
后计算各脏器指数(脏器指数=脏器湿质量/体质量×
3 结果
100%)。
2.5 大鼠心脏、肾、肺组织病理学形态观察 3.1 大鼠血清中ACE、FT3、AVP含量的测定结果
取“2.4”项下各组大鼠心脏、肾、肺组织适量,置于 与假手术组比较,模型组大鼠血清中 ACE、FT3 含
4%多聚甲醛溶液中固定,经70%、80%、90%、95%乙醇 量均显著升高(P<0.01),AVP含量显著降低(P<0.01)。
和无水乙醇梯度脱水,再以二甲苯透明替换、浸蜡、包 与模型组比较,雷帕霉素组和Cur-SLN各剂量组大鼠血
埋、切片(厚度约5 μm)。各组大鼠均取2张相应脏器切 清中 ACE、FT3 含量均显著降低(P<0.05 或 P<0.01),
片进行苏木精-伊红(HE)染色(另外 3 张切片后续进行 AVP含量(雷帕霉素组除外)均显著升高(P<0.05)。结
免疫组化实验),然后于光学显微镜下观察其心脏、肾、 果见表1。
肺组织的病理学形态。 3.2 大鼠心脏、肾、肺指数的测定结果
2.6 大鼠心脏、肾、肺组织中细胞自噬相关因子的表达 与假手术组比较,模型组大鼠心脏指数、肾指数均
分布检测 显著升高(P<0.01),肺指数显著降低(P<0.01)。与模
采用免疫组化法进行检测。取“2.5”项下各组大鼠 型组比较,雷帕霉素组和Cur-SLN各剂量组大鼠心脏指
另外3张相应脏器切片,经脱蜡并复水后,以磷酸盐缓冲 数、肾指数均显著降低(P<0.01),肺指数(Cur-SLN高剂
液(PBS)冲洗 5 min×3 次,滴加 3%H2O2,室温静置 10 量组除外)均显著升高(P<0.05 或 P<0.01)。结果见
min;以 PBS 冲洗 5 min×3 次,置于枸橼酸钠溶液中煮沸 表2。
中国药房 2021年第32卷第19期 China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 19 ·2349 ·