Page 75 - 《中国药房》2021年3期
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供给池内仍有约1/2凝胶尚未溶蚀。                                  胶,均分别为 1、5、10 mg/L(以川芎嗪计)],继续培养 24

            80                                             h。弃去培养液,加入含 MTT 的 PBS 溶液后放置 4 h,弃
            70
                                                           去含MTT的培养液,每孔加入150 μL二甲基亚砜,振荡
            60
           %  50                          川芎嗪水溶液           20 min后采用酶标仪在490 nm波长处测定吸光度(A),
           累计透过量,  40                     川芎嗪眼用脂质体温敏凝胶     按下述公式计算细胞存活率:细胞存活率=(A 给 药-
                                          川芎嗪脂质体
            30
            20                                             A 调零)/(A 空白-A 调零)。式中,A 给药、A 调零、A 空白分别表示给
            10                                             药组、调零组、空白组的吸光度。试验重复5次。24 h内
             0                                             不同质量浓度的川芎嗪制剂对 HCE-T 细胞存活率的影
              0   1  2  3  4   5  6  7   8
                          时间,h                             响见图6。
        图 5  川芎嗪水溶液、脂质体及眼用脂质体温敏凝胶的                                  120
             离体角膜透过曲线(n=3)                                          90
                                                                   %                              1 mg/L
        Fig 5 Excised corneal permeation curves of solution,                                      5 mg/L
              liposome and opthalmic liposome thermosensi-         细胞存活率,  60                     10 mg/L
              tive gel of ligustrazine(n=3)                         30
        2.8.4  角膜水化值考察         取“2.8.3”项下川芎嗪水溶液                      0
                                                                         川芎嗪脂质体   川芎嗪眼用脂质体温敏凝胶
        组、川芎嗪脂质体组和川芎嗪眼用脂质体温敏凝胶组离
                                                           图 6 24 h 内不同质量浓度的川芎嗪制剂对 HCE-T 细
        体角膜,剪去未暴露于GBR溶液的角膜区域。称取暴露
                                                                 胞存活率的影响(n=5)
        于 GBR 溶液的角膜区域质量,记为 Wb;将其于 65 ℃干
                                                           Fig 6 Effect of different concentration of ligustrazine
        燥12 h后再次称质量,记为W a,计算角膜水化值[角膜水
                                                                  preparation on the survival rate of HCE-T cells
        化值=(Wb-W a )/Wb],结果见表5。
                                                                  within 24 hours(n=5)
               表5   角膜水化值测定结果(x±±s,n=3)
                                                               由图6可知,低、中、高质量浓度(1、5、10 mg/L)的川
            Tab 5 Corneal hydration values(x±±s,n=3)
                                                           芎嗪脂质体和低、中质量浓度(1、5 mg/L)的川芎嗪眼用
        考察对象                                   角膜水化值
        川芎嗪水溶液                                 90.10±2.63  脂质体温敏凝胶对HCE-T细胞无明显的增殖毒性(细胞
        川芎嗪脂质体                                 74.04±1.19  存活率>85%);高质量浓度(10 mg/L)的川芎嗪眼用脂
        川芎嗪眼用脂质体温敏凝胶                           72.98±1.13
                                                           质体温敏凝胶对HCE-T细胞显示出了一定的毒性,可能
            角膜水化值是体外评价物质对角膜组织刺激性的                          是由于高质量浓度脂质体温敏凝胶基质材料较多,改变
        重要指标,若大于83%即可判定角膜受到一定程度的损                          了培养基的状态,影响了细胞的正常生长。
        伤 。由表 5 可知,川芎嗪脂质体和川芎嗪眼用脂质体                         2.10  川芎嗪眼用脂质体温敏凝胶的眼部刺激性考察
          [23]
        温敏凝胶的角膜水化值都小于 83%,对角膜刺激性小;                             取家兔6只,将其右眼作为实验眼,给予适量川芎嗪
        但川芎嗪水溶液的角膜水化值大于83%,表明其对角膜                          眼用脂质体温敏凝胶;左眼作为对照眼,给予等量生理
        的刺激性大,究其原因,可能是因为未包封的川芎嗪原                           盐水。分别记录单次给药后 2、6、12、24、72、96、120、
        型药物直接与角膜上皮细胞接触,破坏了角膜上皮和内                           144、168 h时兔眼的角膜、结膜、虹膜及其他前节组织情
        皮细胞的紧密连接,进而使得角膜的水通透性增加。                            况,按照 Draize 眼刺激实验评分标准           [24-25] 进行眼部刺激
        2.9  不同川芎嗪制剂对HCE-T细胞增殖的影响                          性考察,详见表6、表7。结果显示,实验眼的结膜多数在
            将 HCE-T 细胞采用 DMEM 高糖培养基于 37 ℃、                 第1次给药后产生少量分泌物,平均评分为(0.83±0.75)
        5% CO2条件下培养。当HCE-T细胞培养到70%~80%                     分,其余时间点两组兔眼前节组织评分均为 0 分,均在
        融合程度后用PBS清洗2次,加入1 mL胰蛋白酶消化2                        0~3分的无刺激性范围内。
        min。当细胞变圆并开始脱落时加入 DMEM 高糖培养                        2.11  川芎嗪眼用脂质体温敏凝胶对兔眼角膜组织学的
        基5 mL终止消化且吹打均匀,采用15 mL的离心管收集                       影响
        混悬的细胞液,以 1 000 r/min 离心 5 min,弃去上清液,                   取“2.10”项下实验家兔,于最后一次实验眼的眼表
        加入DMEM高糖培养基2 mL,轻轻吹打混匀,制得细胞                        滴入川芎嗪眼用脂质体温敏凝胶后 12 h 分离出角膜组
        悬液。将细胞悬液以5×10 个/孔接种于96孔板中,分为                       织,以10%中性福尔马林固定、梯度乙醇脱水、二甲苯清
                              3
        给药组(不同浓度药物+细胞)、空白组(含细胞不含药                          洗、石蜡固定、切片(厚度为3 μm),再以HE染色,用显微
        物)和调零组(只含培养基),放入培养箱中培养 16 h 使                      镜观察兔眼角膜及视网膜组织学改变;取另一只滴入生
        细胞贴壁后弃去培养液,再分别加入低、中、高质量浓度                          理盐水的对照眼同法操作,作为对照,结果见图7。由图
        的药物溶液[川芎嗪脂质体和川芎嗪眼用脂质体温敏凝                           7 可知,滴入川芎嗪眼用脂质体温敏凝胶的兔眼角膜上


        中国药房    2021年第32卷第3期                                               China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 3  ·325 ·
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