Page 59 - 《中国药房》2021年第1期
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2.5  紫草素对 HCT116 细胞中自噬相关蛋白表达的影
        响考察                                                   10 5                    10 5
             采用 Western blotting 法检测。取对数生长期的                  10 4                    10 4
        HCT116 细胞,接种、分组、给药方法均同“2.4”项下,每                      Comp-PE-A  10 3         Comp-PE-A  10 3
        组均设置3个复孔。培养48 h后,用RIPA裂解液充分裂
                                                              10 2                    10 2
        解细胞并提取细胞中总蛋白,采用 BCA 法进行蛋白定
        量,然后行变性处理后取蛋白50 μg在80 V电压下行十                          10 1  10 2  10 3  10 4  10 5  10 1  10 2  10 3  10 4  10 5
        二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)150                                Comp-FITC-A             Comp-FITC-A
                                                                    A.空白对照组               B.紫草素低质量浓度组
        min,再以电流 200 mA 湿法转膜 80 min 至 PVDF 膜上,
        以 5%脱脂奶粉进行常温封闭 1 h;加入β-actin、LC3Ⅱ/                    10 5                    10 5
        LC3Ⅰ、Beclin-1、p62 一抗(稀释度均为 1 ∶ 1 000),4 ℃
                                                              10 4                    10 4
        下孵育过夜;以PBST缓冲液洗膜3次,然后加入相应二
        抗(稀释度均为1∶10 000),室温孵育1 h;以PBST缓冲液                    Comp-PE-A  10 3         Comp-PE-A  10 3
        洗膜3次,然后在凝胶成像系统中采用ECL化学发光液显                            10 2                    10 2
        色。采用 Image J 1.52a 软件对蛋白条带进行分析,以                      10 1                    10 1
                                                                  10 2  10 3  10 4  10 5  10 2  10 3  10 4  10 5
        Beclin-1、p62蛋白条带与内参β-actin蛋白条带的灰度值                           Comp-FITC-A            Comp-FITC-A
                                                                  C.紫草素中质量浓度组             D.紫草素高质量浓度组
        之比表示Beclin-1、p62蛋白的表达水平,以LC3Ⅱ/LC3Ⅰ
                                                                   图1 各组细胞凋亡情况的流式细胞图
        的灰度值之比表示LC3蛋白的表达水平。试验重复3次。
                                                            Fig 1  Flow cytometry of cell apoptosis in each group
        2.6  统计学方法
            采用 SPSS 13.0 统计软件对试验数据进行统计分                         表2   各组细胞凋亡率测定结果(x±±s,n=3)
        析。计量资料以x±s表示,多组间比较采用单因素方差                          Tab 2   Apoptosis rate of cells in each group(x ±± s,
        分析,两组间比较采用 LSD 检验。P<0.05 表示差异具                             n=3)
        有统计学意义。                                            组别                                凋亡率,%
        3 结果                                               空白对照组                             8.34±3.57
                                                           紫草素低质量浓度组                         22.46±5.23 *
        3.1  紫草素对HCT116细胞增殖的影响                             紫草素中质量浓度组                         28.78±4.85 *
            与空白对照组(细胞增殖抑制率计为 0)比较,紫草                       紫草素高质量浓度组                         41.39±7.90 **
                                                                               *
                                                                                      **
        素低、中、高质量浓度组细胞的增殖抑制率[依次为                                注:与空白对照组比较,P<0.05, P<0.01
                                                                                          **
                                                                                   *
       (30.76±5.57)%、(43.02±7.11)%、(68.18±9.29)%]均             Note:vs. blank control group,P<0.05, P<0.01
        显著升高(P<0.05),并具有一定的浓度依赖性趋势。                        表 3   各组细胞中 LC3、Beclin-1、p62 mRNA 表达水平
        3.2  紫草素对HCT116细胞凋亡的影响                                   测定结果(x±±s,n=3)
            与空白对照组比较,紫草素低、中、高质量浓度组细                        Tab 3 mRNA expression of LC3,Beclin-1 and p62 in
        胞的凋亡率均显著升高(P<0.05或P<0.01),并具有一                            cells of each group(x±±s,n=3)
        定的浓度依赖性趋势。各组细胞凋亡情况的流式细胞                            组别            LC3 mRNA     Beclin-1 mRNA  p62 mRNA
                                                           空白对照组        1.098 5±0.098 0  1.645 8±0.107 5  2.379 6±0.157 9
        图见图1,凋亡率测定结果见表2。
                                                           紫草素低质量浓度组    1.249 6±0.239 4  1.938 9±0.094 8 *  1.975 9±0.189 5 *
        3.3  紫草素对HCT116细胞中自噬相关基因mRNA 表                     紫草素中质量浓度组    1.579 4±0.264 8 *  2.158 9±0.265 1 *  1.176 0±0.085 8 *
        达的影响                                               紫草素高质量浓度组    2.083 5±0.335 2 *  2.565 9±0.315 9 **  1.075 1±0.076 4 **
                                                                                      **
                                                                               *
            与空白对照组比较,紫草素中、高质量浓度组细胞                             注:与空白对照组比较,P<0.05, P<0.01
                                                                                   *
                                                                                          **
        中 LC3 mRNA 表达水平和紫草素低、中、高质量浓度组                          Note:vs. blank control group,P<0.05, P<0.01
        细胞中 Beclin-1 mRNA 表达水平均显著升高(P<0.05                 胞中LC3和Beclin-1蛋白表达水平均显著升高(P<0.05
        或 P<0.01),紫草素低、中、高质量浓度组细胞中 p62                     或 P<0.01),p62 蛋白表达水平均显著降低(P<0.05 或
        mRNA 表达水平均显著降低(P<0.05 或 P<0.01)。各                  P<0.01)。各组细胞中LC3、Beclin-1和p62蛋白表达的
        组细胞中 LC3、Beclin-1 和 p62 mRNA 表达水平测定结               电泳图见图2,表达水平测定结果见表4。
        果见表3。                                              4 讨论
        3.4  紫草素对 HCT116 细胞中自噬相关蛋白表达的                          结肠癌是严重威胁人类健康的恶性肿瘤之一,据
        影响                                                 2018年全球癌症数据统计,结肠癌是导致癌症死亡的第
                                                                    [12]
            与空白对照组比较,紫草素低、中、高质量浓度组细                        四大原因 。目前认为癌症的发生与肿瘤细胞凋亡及

        中国药房    2021年第32卷第1期                                                China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 1  ·53 ·
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