Page 82 - 《中国药房》2024年10期
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血,备用;随后,处死各组大鼠,于无菌条件下取其脾脏、 3 结果
颌下腺,称重,按下式计算各脏器指数:脏器指数=脏器 3.1 SAHA对大鼠饮水量和唾液流量的影响
质量/体重。 与对照组比较,模型组大鼠的饮水量显著升高,唾
2.4 大鼠颌下腺组织病理变化观察 液流量显著降低(P<0.05);与模型组比较,SAHA 各剂
采用 HE 法观察。取各组大鼠颌下腺组织适量,经 量组大鼠的饮水量均显著降低,唾液流量均显著升高,
4%多聚甲醛固定24 h后,行常规石蜡包埋、切片(厚度3 且有剂量依赖性(P<0.05);与 SAHA 高剂量组比较,
μm);切片经脱蜡、脱水后,进行HE染色,使用光学显微 SAHA 高剂量+重组 IL-6 组大鼠饮水量显著升高,唾液
镜观察其病理改变并根据腺体活检标准进行病理评分: 流量显著降低(P<0.05)。结果见表1。
无淋巴细胞浸润,记0分;轻度淋巴细胞浸润,记1分;中 表1 各组大鼠的饮水量和唾液流量比较(x±s,n=10)
度淋巴细胞浸润但未见明显淋巴细胞病灶,记2分;1个 组别 饮水量/(g/d) 唾液流量/mg
[10]
淋巴细胞病灶,记3分;>1个淋巴细胞病灶,记4分 。 对照组 3.82±0.43 24.85±2.93
2.5 大鼠血清中IFN-γ、IL-17、IL-10水平检测 模型组 5.74±0.52 a 8.63±0.92 a
SAHA低剂量组 4.91±0.50 b 14.73±1.63 b
采用 ELISA 法检测。取“2.3”项下各组大鼠腹主动 SAHA中剂量组 4.42±0.48 bc 18.05±1.92 bc
脉血适量,以 3 000 r/min 离心 20 min,取上层血清,按 SAHA高剂量组 4.05±0.44 bcd 21.93±2.75 bcd
照相应试剂盒说明书方法操作,以酶标仪检测其血清 SAHA高剂量+重组IL-6组 5.58±0.64 e 11.05±1.46 e
IFN-γ、IL-17、IL-10水平。 a:与对照组比较,P<0.05;b:与模型组比较,P<0.05;c:与SAHA
2.6 大鼠外周血T淋巴细胞亚群分化情况检测 低剂量组比较,P<0.05;d:与SAHA中剂量组比较,P<0.05;e:与
SAHA高剂量组比较,P<0.05。
采用流式细胞术检测。取“2.3”项下各组大鼠腹主
3.2 SAHA对大鼠脾脏指数、颌下腺指数的影响
动脉血适量,经乙二胺四乙酸抗凝后制备外周血单核细
与对照组比较,模型组大鼠的脾脏指数显著升高,
胞悬液,经固定、透化后静置过夜;使用 PE 标记的 CD4
抗体或 FITC 标记的 CD4 抗体对细胞表面蛋白染色 20 颌下腺指数显著降低(P<0.05);与模型组比较,SAHA
各剂量组大鼠的脾脏指数均显著降低,颌下腺指数均显
min(4 ℃),使用 APC 标记的 IFN-γ 抗体、FITC 标记的
著升高,且有剂量依赖性(P<0.05);与 SAHA 高剂量组
IL-17A抗体或PE标记的FoxP3抗体对细胞内细胞因子
比较,SAHA 高剂量+重组 IL-6 组大鼠的脾脏指数显著
染色 1 h(室温),使用流式细胞仪记录细胞染色情况并
进行数据分析[细胞内 IFN-γ、IL-17A、FoxP3 染色阳性 升高,颌下腺指数显著降低(P<0.05)。结果见表2。
表2 各组大鼠的脾脏指数、颌下腺指数、病理评分比较
CD4 细胞分别对应辅助性 T 细胞 1(helper T cell 1,
Th1)、Th17、调节性T细胞(regulatory T cell,Treg),分别 (x±s,n=10)
组别 脾脏指数/(mg/g) 颌下腺指数/(mg/g) 病理评分
呈红色、绿色、黄色]。
对照组 3.05±0.37 4.73±0.67 0
2.7 大鼠颌下腺组织中IL-6/STAT3信号通路相关蛋白 模型组 4.27±0.49 a 3.02±0.53 a 3.53±0.42 a
表达检测 SAHA低剂量组 3.85±0.38 b 3.61±0.46 b 2.82±0.35 b
采用 Western blot 法检测。取各组大鼠颌下腺组织 SAHA中剂量组 3.52±0.31 bc 4.16±0.51 bc 2.46±0.39 bc
SAHA高剂量组 3.20±0.24 bcd 4.58±0.56 bcd 1.83±0.22 bcd
适量,以RIPA裂解液在冰上提取总蛋白,以12 000 r/min
SAHA高剂量+重组IL-6组 4.13±0.45 e 3.47±0.41 e 3.37±0.39 e
离心 5 min,取上清液,使用 BCA 试剂盒测定蛋白含量
a:与对照组比较,P<0.05;b:与模型组比较,P<0.05;c:与SAHA
后,在沸水浴中静置 10 min 使变性。取变性蛋白(50 低剂量组比较,P<0.05;d:与SAHA中剂量组比较,P<0.05;e:与
μg)进行 10% 十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分 SAHA高剂量组比较,P<0.05。
离,随后转移至聚偏二氟乙烯膜上,以 5% 脱脂乳封闭 2 3.3 SAHA对大鼠颌下腺组织病理变化的影响
h;洗膜后,加入IL-6、STAT3、p-STAT3、β-actin一抗(稀释 对照组大鼠颌下腺组织腺泡细胞大小均匀,排列紧
比例分别为1∶1 000、1∶2 000、1∶1 000、1∶1 000),于4 ℃ 密;模型组大鼠颌下腺组织可见明显的淋巴细胞局灶性
孵育过夜;洗膜后,加入相应 IgG 二抗(稀释比例为 浸润,腺泡细胞明显减少,导管扩张,部分组织变性坏
1∶2 000),于室温孵育2 h;经化学发光法显色后,置于凝 死;SAHA各剂量组大鼠颌下腺组织淋巴细胞局灶性浸
胶成像系统下成像。使用Image J软件对目的蛋白的表 润减少,部分导管扩张,腺泡细胞少量减少,且随SAHA
达水平进行定量分析,以IL-6蛋白与内参β-actin的条带 剂量增加,改善效果越明显;SAHA高剂量+重组IL-6组
灰度值比值表示 IL-6 蛋白的表达水平,以 p-STAT3 与 大鼠颌下腺组织的淋巴细胞浸润较 SAHA 高剂量组增
STAT3 蛋白的条带灰度值比值表示 STAT3 蛋白的磷酸 加,病理损伤加重。结果见图1。
化水平。 与对照组比较,模型组大鼠的病理评分显著升高
2.8 统计学方法 (P<0.05);与模型组比较,SAHA 各剂量组大鼠的病理
采用SPSS 22.0软件对数据进行统计分析。计量资 评分均显著下降,且有剂量依赖性(P<0.05);与 SAHA
料以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,进一 高剂量组比较,SAHA 高剂量+重组 IL-6 组大鼠的病理
步两两比较采用SNK-q检验。检验水准α=0.05。 评分显著升高(P<0.05)。结果见表2。
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