Page 63 - 《中国药房》2022年21期
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2.1.3 时间-杀菌曲线的绘制 选择对黄绵马酸 BB 敏 匹罗星软膏组和 0.5%、1%、2% 黄绵马酸 BB 乳膏组,每
感且稳定性好的MRSA11和MSSA23作为受试菌,并将 组12只。每天早晚各涂药1次,每次涂药量为0.1 g/只,
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受试菌菌液浓度调整至 1.0×10 CFU/mL,然后设置黄 连续给药10 d。
绵马酸BB中、高浓度组(浓度分别为MIC、2MIC),同时 2.2.3 小鼠皮肤脓肿体积的测定 各组小鼠给药后,每
设置对照组和莫匹罗星中、高浓度组(浓度分别为MIC、 隔1天测量1次皮肤脓肿的长径(L)与宽径(W),并计算
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2MIC)。在试管中加入各组药液 1.0 mL 后再加入等量 脓肿体积(V),具体公式为V=(π/6)·L·W 。
菌液(对照组仅含菌液不含药液),于 35 ℃振荡培养。 2.2.4 小鼠皮肤脓肿部位细菌含量的检测 实验第 11
分别在培养0、1、2、4、6、8、12、16、20、24、36 h时取样,采 天脱臼处死小鼠,取脓肿部位皮肤 0.1 g(剩余部分用于
用平板法计算活菌数并绘制时间-杀菌曲线。杀菌作 病理切片的制备),加入9倍量无菌生理盐水后,用组织
用的判定标准:细菌存活数从初始接种数量下降≥3 捣碎机研磨制成皮肤匀浆液。将皮肤匀浆液稀释 100
lg CFU/mL时,则认为杀菌率达99.9%,药物在该浓度下 倍,取 20 μL 均匀涂于营养琼脂培养基上,于 35 ℃培养
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对受试菌有杀菌作用 。 24 h后,肉眼观察培养基上的菌落数。
2.1.4 黄绵马酸BB与莫匹罗星的联合抑菌实验 根据 2.2.5 小鼠皮肤脓肿部位的病理形态学观察 取各组
“2.1.2”项下的测定结果,选择抑菌效果较好的黄绵马酸 小鼠脓肿部位皮肤,按常规方法制备病理切片,以苏木
BB 和莫匹罗星进行联合抑菌实验,采用棋盘微量稀释 精伊红染色,采用光学显微镜观察小鼠的皮肤病理形态
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法 进行检测。根据药物单用时对受试菌的MIC值,将 学变化。
黄绵马酸 BB(A 药)和莫匹罗星(B 药)的最大给药浓度 2.3 黄绵马酸BB对MRSA及MSSA的作用机制考察
设定为 2MIC,分别在 96 孔板的横向和纵向进行一系列 2.3.1 黄绵马酸BB对两种细菌形态的影响考察 参考
二倍稀释,然后各孔加入等量菌液(菌液浓度为 1.0× 文献[18]方法,将MRSA11、MSSA23菌株培养至对数生
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10 CFU/mL),于 35 ℃培养 18~24 h,根据“2.1.2”项下 长期后,调整菌液浓度为1.0×10 CFU/mL,再分别接种
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方法测定各药物联合后的 MIC。以上操作重复 3 次。 于不同的6孔板上(每孔1 mL),然后分为对照组和黄绵
以联合抑菌指数(fractional inhibitory concentration in‐ 马酸 BB 低、中、高浓度组(浓度分别为 1/2MIC、MIC 和
dex,FICI)作为联合抑菌结果的判断依据:FICI≤0.5 为 2MIC)。除对照组不加药物外,其余各组均加入1 mL相
协同作用,0.5<FICI≤1为相加作用,1<FICI≤2为无关 应药液,于 35 ℃培养 4 h 后,以 5 000 r/min 离心 10 min;
作用,FICI>2 为拮抗作用 。FICI 的计算方式如下: 收集菌体,加入 2.5% 戊二醛溶液 1 mL,置于 4 ℃固定 4
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FICI=FICA药+FICB药,FICA药=MICA药联合/MICA药单用,FICB药= h,然后采用扫描电镜观察MRSA11和MSSA23的形态。
MICB药联合/MICB药单用。 2.3.2 黄绵马酸BB对两种细菌核酸外渗含量的影响考
2.2 黄绵马酸 BB 乳膏对皮肤脓肿模型小鼠的改善作 察 参考文献[19]方法,将MRSA11、MSSA23菌株培养
用考察 至对数生长期后,调整菌液浓度为 1.0×10 CFU/mL,再
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2.2.1 黄绵马酸 BB 乳膏的制备 参考文献[17]方法制 按“2.3.1”项下方法分组、加药、培养、离心后,取上清液,
备黄绵马酸 BB 乳膏:称取凡士林 6 g、液体石蜡 8 g、十 采用酶标仪于260 nm处测定吸光度值,吸光度值越大,
八醇5 g、单硬脂酸甘油酯7 g、脂肪醇聚氧乙烯醚4 g、月 表明细菌核酸外渗含量越高。
桂氮酮1 g、对羟基苯甲酸甲酯0.3 g、对羟基苯甲酸丙酯 2.3.3 黄绵马酸BB对两种细菌胞外蛋白含量的影响考
0.2 g、2,6-二叔丁基对甲酚 0.5 g,加热至 80 ℃溶解,搅 察 参考文献[20]方法,取0、5、10、20、30、40、50、60、70、
匀;降温至 65 ℃时,加入黄绵马酸 BB 粉末 0.5 g 搅拌溶 80、90、100 μg/mL 的牛血清蛋白标准溶液各 200 μL,加
解,作为油相,备用。另外称取甘油12 g、乙二胺四乙酸 入 5 mL 考马斯亮蓝溶液,室温放置 5 min;采用酶标仪
二钠 0.02 g,加适量纯化水(乳膏总量为 100 g),加热至 于595 nm波长处测定吸光度值,以牛血清蛋白质量浓度
65 ℃溶解,作为水相,备用。将油相缓缓倒入水相中,边 为 横 坐 标 、吸 光 度 值 为 纵 坐 标 绘 制 标 准 曲 线 。 将
加边搅拌至室温,即得0.5%黄绵马酸BB乳膏。同法制 MRSA11、MSSA23菌株培养至对数生长期后,调整菌液
备1%、2%黄绵马酸BB乳膏及不含药物的基质,于4 ℃ 浓度为1.0×10 CFU/mL,再按“2.3.1”项下方法分组、加
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保存,备用。 药、培养、离心后,取上清液200 μL,加入5 mL考马斯亮
2.2.2 造模、分组及给药 分别建立以 MRSA11 或 蓝溶液,室温放置 5 min;采用酶标仪于 595 nm 波长处
MSSA23 感染的小鼠皮肤脓肿模型:将小鼠背部脱毛、 测定吸光度值,然后将吸光度值代入标准曲线计算,即
消毒后,取 60 只皮下注射 MRSA11(菌液浓度为 1.0× 得蛋白含量。
10 CFU/mL),另外60只皮下注射MSSA23(菌液浓度为 2.4 统计学方法
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5.0×10 CFU/mL),注射体积均为 0.1 mL。造模次日, 采用SPSS 25.0软件进行统计学分析,数据均用x±s
观察小鼠背部皮肤,若出现脓包、红肿,则表明造模成 表示,多组间比较采用单因素方差分析。检验水准
功。将造模成功的两种感染小鼠均随机分为基质组、莫 α=0.05。
中国药房 2022年第33卷第21期 China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 21 ·2617·