Page 89 - 《中国药房》2022年13期
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验结果设置 ,以生药量计),模型组与空白组大鼠均灌 其中火麻仁具有润肠、滑肠的功效,枳壳行气消积,生地
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胃等体积生理盐水,每天 1 次,连续 2 周,给药期间所有 泄肠道实火、泻下攻积,三者相辅相成 。为研究麻元通
大鼠自由饮食。 便止痛汤中活性成分与AMPK/eNOS信号通路的关联,笔
2.2 大鼠粪便数量及含水率的检测 者首先通过中药系统药理学数据库与分析平台(TCMSP,
收集各组大鼠治疗前(制备 STC 模型前 14 d)和治 网址为 http://lsp.nwsuaf.edu.cn/tcmsp.php)检索麻元通
疗后(药物治疗期间14 d)每天的全部粪便,计算粪便总 便止痛汤中火麻仁、枳壳、生地的活性成分,以口服生物
数量,并称质量(即湿粪质量)。然后将全部粪便置于恒 利用度(oral bioavailability,OB)≥30%和药物相似性
温箱中烘烤,烘烤温度为90 ℃,时间为3 h,烘干后再次 (drug likeness,DL)≥0.18作为筛选条件,筛选麻元通便
称粪便质量(即干粪质量),计算粪便含水率[粪便含水 止痛汤中活性较高的成分,并参考文献[11]进行补充,即
率=(湿粪质量-干粪质量)/湿粪质量×100%]。 得麻元通便止痛汤的活性成分。
2.3 大鼠炭末推进率的检测 2.8 麻元通便止痛汤中活性成分与AMPK、eNOS的分
大鼠治疗结束 0.5 h 后,将 2 mL 质量浓度为 50 g/L 子对接分析
的炭末悬浊液灌入大鼠胃中,25 min 后处死大鼠,将小 选择麻元通便止痛汤君药各药材 Degree 值最高的
肠(幽门至回盲部)取出,自然平铺于桌面上,自由伸展 活性成分进行分子对接 。检索并下载TCMSP数据库
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后测量小肠总长度及炭末混悬液在小肠内推进的距离,
中活性成分的2D结构和3D结构,采用YASARA分子模
然后计算炭末推进率(炭末推进率=炭末推进距离/小肠
拟软件经去 H2O、加 H 质子化和添加缺失原子后,运用
总长度×100%)。
PyMOL、AutoDockVina等软件进行分子对接。
2.4 大鼠结肠组织的病理观察
2.9 统计学方法
采用苏木精-伊红(HE)染色法观察。各组大鼠取结
采用 SPSS 21.0 软件对数据进行统计学分析,计量
肠组织3块,用生理盐水冲洗肠内容物后,将其中2块组
资料以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,组
织置于10%甲醛溶液中保存;另外1块组织装入冻存管
间两两比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
中,置于-80 ℃冰箱中保存,用于后续实验。将于10%
甲醛溶液中保存的结肠组织以流水冲洗并用乙醇脱水, 3 结果
3.1 大鼠粪便数量、含水率及炭末推进率的检测结果
再将该组织置于既溶于乙醇、又溶于石蜡的透明剂中,
治疗前后,与空白组比较,模型组大鼠粪便数量、含
放入保温箱中;待石蜡完全浸入组织后进行包埋、切片
水率及炭末推进率均显著减少或降低(P<0.05)。治疗
(5 μm)、染色,然后采用显微镜观察各组大鼠结肠组织
后,与模型组比较,麻元通便止痛汤各剂量组大鼠粪便数
的病理学变化。
2.5 大鼠结肠组织中NO、NOS水平的检测 量、含水率及炭末推进率均显著增加或升高(P<0.05)。
采用 ELISA 法检测。取各组大鼠冻存的结肠组织 与治疗前比较,麻元通便止痛汤各剂量组大鼠粪便数量
适量,置于液氮中,然后将其剪碎倒入匀浆管中匀浆,离 及含水率均显著增加或升高(P<0.05)。结果见表1。
心收集上清液,根据试剂盒说明书相关方法检测大鼠结 表 1 各组大鼠粪便数量、含水率及炭末推进率的检测
肠组织中NO、NOS的水平。 结果(x±±s,n=10)
2.6 大鼠结肠组织中 AMPK/eNOS 信号通路相关蛋白 组别 粪便数量/粒 粪便含水率/% 炭末推进率/%
表达水平的检测 治疗前 治疗后 治疗前 治疗后
空白组 65.50±5.68 65.40±5.74 38.98±5.34 39.85±5.49 68.58±3.52
采用 Western blot 法检测。取各组大鼠冻存的结肠 模型组 45.60±3.57 45.60±3.05 a 21.28±3.69 21.44±3.47 a 42.15±3.18 a
a
a
组织适量,加入裂解液裂解,以 14 000 r/min 离心 15 麻元通便止痛汤低剂量组 46.30±2.06 55.30±3.02 bc 20.69±3.57 32.59±2.58 bc 50.27±2.59 b
麻元通便止痛汤中剂量组 46.10±2.18 59.30±3.53 bc 20.54±3.77 35.17±2.14 bc 55.67±2.45 b
min,取上清液,以 BCA 法测定蛋白含量。蛋白经煮沸
麻元通便止痛汤高剂量组 46.10±2.08 63.60±3.27 bc 20.97±3.48 38.09±2.26 bc 64.08±3.54 b
变性后,进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,然 F 65.101 41.678 40.469 44.948 117.388
后转膜,以5%脱脂奶粉封闭1 h;以TBST洗膜10 min×4 P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001
次,加入AMPK、eNOS、mTOR、Tsc-1、Tsc-2、4ebp、GAPDH a:与空白组比较,P<0.05;b:与模型组比较,P<0.05;c:与同组治
一抗(稀释度均为 1 ∶ 1 000),4 ℃孵育过夜;以 TBST 洗 疗前比较,P<0.05
膜10 min×4次,加入二抗(稀释度为1 ∶ 2 500),室温孵育 3.2 大鼠结肠组织病理观察结果
2 h;以TBST洗膜10 min×4次,加入ECL试剂显色5 min, HE染色结果显示,空白组大鼠结肠组织结构清晰,
采用全自动凝胶成像仪显影曝光。采用 Image J v1.8.0 黏膜上皮结构较好,细胞排列整齐均匀;模型组大鼠结肠
软件对条带灰度值进行分析,以目的蛋白与内参GAPDH 组织结构紊乱,肌层较薄,黏膜下层见大量炎症细胞浸润;
灰度值的比值表示目的蛋白的表达水平。 麻元通便止痛汤各剂量组大鼠结肠组织结构逐渐清晰,
2.7 麻元通便止痛汤中活性成分的筛选 黏膜下层炎症细胞浸润明显减少,且随剂量的增加,黏膜
麻元通便止痛汤中的君药包括火麻仁、枳壳、生地, 排列结构和肌层厚度与空白组差异不大。结果见图1。
中国药房 2022年第33卷第13期 China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 13 ·1619 ·