Page 61 - 《中国药房》2021年3期
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理)。自实验第29天开始,各药物组大鼠灌胃相应药物, 夜;用 TBST 溶液缓慢清洗 5 min×3 次,分别加入二抗
空白对照组和模型组大鼠灌胃等体积生理盐水;给药体 (稀释度为 1 ∶ 10 000),于室温下孵育 2 h;用 TBST 溶液
积均为10 mL/kg,每日1次,连续28 d。 缓慢清洗5 min×3次,经ECL显影液显影后,置于化学发
2.2 肺功能检测 光凝胶成像仪下成像。使用 Image J v1.8.0 软件进行分
参照文献[9-10],于末次给药后,腹腔注射 10%水 析,以目标蛋白与内参(β-actin)条带的灰度值比值表示
合氯醛溶液(3 mL/kg)对大鼠进行麻醉,将其以仰卧位 目标蛋白的相对表达量。
固定,切开颈部皮肤、肌肉后暴露气管,朝心方向剪一小 2.5 统计学方法
口,行气管插管约 2 cm,结扎固定。气管插管另一端与 采用SPSS 17.0软件对数据进行统计分析。计量资
动物肺功能分析系统连接,检测大鼠的用力肺活量 料以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间
(FVC)和第0.3秒用力呼气容积(FEV0.3 ),并以两者比值 两两比较采用 LSD 法(方差齐)或 Games-Howell 法(方
(FEV0.3/FVC)作为评价大鼠肺功能的指标。 差不齐)。P<0.05为差异有统计学意义。
2.3 标本制备 3 结果
肺功能检测结束后,在大鼠处于麻醉状态下于其腹 3.1 清肺保元胶囊对模型大鼠肺功能的影响
主动脉取血后,切开胸部,结扎右肺门,于颈部气管下端 因造模损伤,除空白对照组外,其余各组均有动物
作一 T 形切口,行气管插管,以磷酸盐缓冲液(PBS,pH 死亡,其中模型组、地塞米松组和清肺保元胶囊高、中、
7.4)进行肺泡灌洗。收集支气管肺泡灌洗液,以 2 000 低剂量组分别死亡3、2、1、1、2只,药物组动物死亡较模
r/min 离心 10 min,取上清液,置于-80 ℃冰箱中保存, 型组少。
用于IL-1β含量、白细胞计数的检测。处死大鼠,取右肺 与空白对照组比较,模型组大鼠FEV0.3/FVC显著降
组织适量,立即置于液氮中冷冻,随后转移至-80 ℃冰 低(P<0.01);与模型组比较,各给药组大鼠 FEV0.3/FVC
箱中保存,用于NLRP3通路相关蛋白表达的检测;取左 均显著升高(P<0.05或P<0.01),详见表1。
肺组织适量,于4%多聚甲醛溶液中固定,用于肺组织形 表1 清肺保元胶囊对模型大鼠肺功能的影响(x±±s)
态学观察。 Tab 1 Effects of Qingfei baoyuan capsule on lung
2.4 指标检测 function in model rats(x±±s)
2.4.1 肺组织病理观察 采用 HE 染色法。取“2.3”项 组别 剂量,mg/kg n FEV0.3/FVC,%
下固定于 4%多聚甲醛溶液中的大鼠左肺组织适量,经 空白对照组 10 93.75±5.68
模型组 7 85.46±4.89 **
常规乙醇梯度洗脱、石蜡包埋后,切片(厚度约5 μm),再
地塞米松组 0.2 8 93.92±6.39 ##
经HE染色后,于显微镜下观察大鼠肺组织病理改变。 清肺保元胶囊高剂量组 1 232.0 9 92.48±6.11 #
2.4.2 支气管肺泡灌洗液中 IL-1β含量 采用 ELISA 清肺保元胶囊中剂量组 616.0 9 95.19±7.19 ##
清肺保元胶囊低剂量组 308.0 8 90.12±4.63 #
法。取“2.3”项下大鼠支气管肺泡灌洗液适量,使用全功
##
**
#
注:与空白对照组比较, P<0.01;与模型组比较,P<0.05,P<
能酶标仪检测其中 IL-1β的含量,严格按照相应试剂盒
0.01
说明书方法操作。 Note:vs. blank control group, * * P<0.01;vs. model group,P<
#
2.4.3 支气管肺泡灌洗液中白细胞计数 采用吉姆萨 0.05,P<0.01
##
染色法检测。取“2.3”项下支气管肺泡灌洗液 10 μL,涂 3.2 清肺保元胶囊对模型大鼠肺组织病理改变的影响
抹于玻片上,晾干后滴加少量甲醇固定,将玻片置于吉 空白对照组大鼠肺泡腔内未见炎性渗出物,肺泡腔
姆萨染色液中浸染,用水冲洗后自然干燥,于显微镜下 结构正常、无病理性扩大;模型组大鼠肺泡壁增厚、过度
观察被染成紫色或蓝紫色的白细胞并计数,严格按照相 膨胀,肺泡数目减少,可见大量炎性细胞浸润,部分可见
应试剂盒说明书方法操作。 肺泡融合;地塞米松组和清肺保元胶囊高、中剂量组大
2.4.4 肺组织中 NLRP3、Cleaved caspase-1 蛋白的表达 鼠肺泡结构基本恢复正常;清肺保元胶囊低剂量组大鼠
情况 采用 Western blotting 法检测。取“2.3”项下大鼠 肺组织可见少量炎性细胞浸润,详见图1。
右肺组织适量,置于 EP 管内,于冰上捣碎后匀浆,以 3.3 清肺保元胶囊对模型大鼠支气管肺泡灌洗液中
13 000 r/min 离心 5 min,取上清液,采用 BCA 法测定蛋 IL-1β含量和白细胞计数的影响
白含量后,煮沸变性。取变性蛋白适量,行 SDS-PAGE 与空白对照组比较,模型组大鼠支气管肺泡灌洗液
分离并转移至 PVDF 膜上,在室温下以 5%脱脂奶粉封 中 IL-1β含量和白细胞计数均显著升高(P<0.01);与模
闭1 h,分别加入NLRP3、Cleaved Caspase-1、β-actin一抗 型组比较,各给药组大鼠支气管肺泡灌洗液中上述指标
(稀释度分别为 1 ∶ 300、1 ∶ 2 500、1 ∶ 6 000),4 ℃孵育过 均显著降低(P<0.05或P<0.01),详见表2。
中国药房 2021年第32卷第3期 China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 3 ·311 ·