Page 32 - 《中国药房》2026年10期
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公司;卵清蛋白(ovalbumin,OVA;货号A5503)购自美国 除 Normal 组外,其余各组参照 OVA 双重致敏联合雾化
Sigma公司;氢氧化铝(批号E-50531)购自天津市化学试 激发的经典方法构建BA模型 [16―17] :分别于实验第0、7天
剂三厂;大鼠免疫球蛋白E(immunoglobulin E,IgE)、IL- 腹腔注射含 OVA 和氢氧化铝各 100 mg 的混悬液(以生
4、IL-5、IL-13、TNF-α 酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂 理盐水为溶剂)1 mL;于实验的第14天起,将大鼠置于4
盒(货号分别为241224355R、241224309R、241224311R、 L 有机玻璃雾化箱内,使其持续雾化吸入 2%OVA 生理
241224317R、241224305R)均购自江苏酶免实业有限公 盐水溶液,每天 30 min(雾化气流速为 0.3 mL/min,维持
司;Wright-Giemsa 染液、苏木精染液、伊红染液、改良 箱内 OVA 浓度为 20 mg/m),连续 21 d。以连续 2 次
3
Masson 三色染色试剂盒、过碘酸希夫(periodic acid- OVA 滴鼻激发实验阳性为造模成功 。Normal 组大鼠
[18]
Schiff,PAS)染色试剂盒(货号分别为 G1015、H8070、 以磷酸盐缓冲液(PBS)进行相同操作。于实验的第
G1100、G1346、G1280)均购自北京索莱宝科技有限公 14~34 天,YQWY-L、YQWY-M、YQWY-H 组大鼠分别
司;TransZol Up Plus RNA 试剂盒(货号 ER501)购自北 灌胃低、中、高剂量的“2.1”项下相应药液,灌胃体积均为
TM
京全式金生物技术股份有限公司;PrimeScript RT Mas‐ 5 mL/kg[剂量按成人(体重 60 kg)与大鼠体表面积换算
ter Mix 试剂(货号 RR036B)购自日本 TaKaRa 公司; 系数计算而得;YQWY 低、中、高剂量分别为 5、10、20
Magic SYBR Mixture 试剂(货号 CW3008S)购自江苏康 g/kg(按生药量计),分别相当于临床等效剂量的 0.4、
为世纪生物科技股份有限公司;兔抗甘油醛-3-磷酸脱氢 0.8、1.6倍];DEX组大鼠灌胃0.5 mg/kg的地塞米松药液
酶(GAPDH)抗体、辣根过氧化物酶(HRP)标记的山羊
(以生理盐水为溶剂制成2 g/L的药液,剂量根据前期预
抗兔 IgG 二抗、全蛋白提取试剂盒、BCA 蛋白含量检测
实验结果设置);Normal 组和 Model 组大鼠灌胃等体积
试 剂 盒( 货 号 分 别 为 KGC6102-1、KGC6202-0.1、
生理盐水。上述药液/生理盐水干预均于每天雾化激发
KGB5303-100、KGP902)均购自江苏凯基生物技术股份
前1 h完成。
有限公司;兔抗 TLR4、MyD88、NF-κB p65 抗体(货号分
2.3 哮喘体征评分
别为 19811-1-AP、29946-1-AP、10745-1-AP)均购自武汉
[19]
末次雾化后 24 h,采用改良 Hessel 评分法 对各组
三鹰生物技术有限公司;兔抗磷酸化 NF-κB p65(phos‐
大鼠进行哮喘体征评分。该评分法以呼吸频率、节律、
phorylated NF-κB p65,p-NF-κB p65)抗体(货号AF2006)
辅助呼吸肌动用、哮鸣音、立毛、搔鼻、活动度及激惹反
购自美国 Affinity 公司;3-3′-二氨基联苯胺(DAB)染色
应 8 项指标为基准,每项 0~3 分、总分 0~24 分,得分越
试剂盒(货号 ZLI-9017)购自北京中杉金桥生物技术有
高提示气道高反应性及全身应激越显著。由2名受过一
限公司;PCR所用引物由生工生物工程(上海)股份有限
致性培训的实验员独立完成评估。
公司设计、合成。
2.4 样本收集与处理
1.3 实验动物
评分结束后,使大鼠禁食、不禁水24 h,经腹腔注射
SPF级雄性SD大鼠48只,体重180~220 g,购自浙
2% 戊巴比妥钠实施麻醉,随后从腹主动脉采集血液 5
江维通利华实验动物技术有限公司,动物生产许可编号
mL,在4 ℃下以1 500 r/min离心10 min,分离上层血清,
为 SCXK(浙)2024-0001。所有大鼠均饲养于恒温恒湿
环境(室温 22~25 ℃、相对湿度 40%~60%,每 12 h 光 于-80 ℃下保存,备用。采血结束后,将各组大鼠以颈
照/黑暗循环)中,经7 d适应性饲养后启动正式实验。本 椎脱臼法处死,结扎其左支气管并作钝性分离处理,将
研究方案已通过江西中医药大学实验动物伦理委员会 注射针插入气管约 1 cm 处,向肺内缓慢推注 2.5 mL 预
审批(批准文号 JZLLSC20250561),且实验全过程严格 冷生理盐水,推注时长控制在 1 min,反复抽吸 3 次后收
遵循实验动物3R原则。 集灌洗液(上述操作重复 3 次);将所得灌洗液以 1 500
2 方法 r/min 离心 10 min,留取上层支气管肺泡灌洗液(bron‐
2.1 YQWY药液的制备 choalveolar lavage fluid,BALF)于-20 ℃下保存,备用。
取生黄芪、白术、防风、桂枝、白芍、生姜、大枣、炙甘 随后,摘取各组大鼠左肺组织,放入4%多聚甲醛溶液中
草、仙茅、淫羊藿饮片,按质量比2∶1.5∶1.5∶1∶1∶1∶1∶0.5∶ 固定,后续行石蜡包埋处理;同时,剪取其右肺组织碎
1∶1.5 混合,加 8 倍量水,浸泡 30 min 后,煎煮(待沸腾后 块,于液氮中速冻后再于-80 ℃下保存,备用。
再持续煎煮1 h),过滤;药渣加6倍量的水,煎煮40 min, 2.5 血清IgE水平和BALF中炎症因子水平检测
过滤。合并两次滤液,浓缩,分别制成质量浓度为 1、2、 取“2.4”项下各组大鼠的血清和BALF各适量,按相
4 g/mL(以生药量计)的药液,备用。 应ELISA试剂盒说明书操作,使用酶标仪检测其血清中
2.2 分组、造模与给药 IgE水平和BALF中IL-4、IL-5、IL-13、TNF-α水平。
选取48只大鼠,随机分为正常组(Normal组)、模型 2.6 BALF中炎症细胞计数
组(Model组)、地塞米松组(DEX组)和YQWY低、中、高 取“2.4”项下各组大鼠的 BALF 适量,以 PBS 重悬,
剂量组(YQWY-L、YQWY-M、YQWY-H 组),每组 8 只。 并用Wright-Giemsa染料染色,使用生物显微镜,按形态
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